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Es konnte für verschiedene Zellpopulationen gezeigt werden, dass sie durchaus signifikante antibakterielle Wirkungen vermitteln. Aufgrund der sehr geringen Versuchstierzahlen sind weitere Untersuchungen nötig, um die Effektivität der Zellkulturansätze, besonders der mit NK-Zellen, zu untermauern. Ebenso sollten weitere Versuche mit rekombinanten bovinen Chemokinen durchgeführt werden, die zudem in höheren Konzentrationen getestet werden sollten, damit die MHK bestimmt werden können. Anschließend sollte geprüft werden,

in-114

wieweit diese Konzentrationen in vivo zu erreichen sind und ob durch gezielte Beeinflussung von Zellen und deren Mediatoren eine erhöhte Bereitstellung und Freisetzung dieser Zellin-haltsstoffe zu erreichen wäre.

AMP weisen viele gewünschte Eigenschaften einer neuen Antibiotikaklasse auf (HANCOCK u. SAHL 2006), sind aber bislang aufgrund der hohen Produktionskosten und benötigten Konzentrationen, die zudem nahe der toxischen Dosis liegen, am ehesten als Therapeutikum für topische Anwendungen geeignet. Es besteht eine synergistische Wirkung zwischen kon-ventionellen Antibiotika und AMP, die ggf. dadurch zustande kommt, dass AMP aufgrund ihrer membranolytischen Wirkung den Antibiotika Zugang zu Bakterien ermöglichen (GIULIANI et al. 2007).

Der Einsatz von AMP birgt ebenfalls Probleme, da sie eine schlechte Stabilität in vivo haben, durch erhöhte Salzkonzentrationen inaktiviert werden und Resistenzen sich z.T. schnell ent-wickeln, wenn Bakterien durchgehend erhöhten AMP-Spiegeln ausgesetzt sind. Dieses Phä-nomen der Resistenzentstehung trifft ebenso auf Antibiotika zu, sodass eine AMP-Anwendung nicht deswegen von vornherein ausgeschlossen werden sollte, sondern ein ratio-naler Umgang mit ihnen das wichtigste ist, um eine Resistenzsituation – wie sie bei den Anti-biotika vorliegt – zu vermeiden (GIACOMETTI et al. 2000b; VAN 'T HOF et al. 2001;

GIULIANI et al. 2007).

Inwieweit die in dieser Arbeit beschriebenen Effekte auf die Wirkung der durch Kulturzellen sekretierten AMP zurückzuführen sind, bleibt leider ungeklärt. Deshalb sind weitere Versuche notwendig, um die Vermutung, dass die Vitalitätsreduktion von E. coli AMP-vermittelt ist, abschließend zu bestätigen.

115

6 Zusammenfassung

Annika Bogusch Prüfung der antibakteriellen Aktivität boviner Immunzellen und Chemokine in vitro

Der überwiegende Anteil der Immunzellen ist mit antimikrobiellen Substanzen ausgestattet oder kann sie nach Aktivierung durch inflammatorische Mediatoren bilden und sezernieren.

Im Rahmen dieser Dissertation wurden Immunzellen (mononukleäre Zellen, Monozyten, neu-trophile Granulozyten und NK-Zellen) neben drei ausgewählten rekombinanten bovinen Chemokinen (CXCL9, CXCL10 und CXCL11) auf ihre antibakteriellen Effekte gegenüber E. coli untersucht.

Dazu wurden zwei verschiedene Vitalitätsnachweise durchgeführt, um den Einfluss der Test-substanzen auf E. coli quantifizierbar zu machen. Das durchflusszytometrische Verfahren lieferte aufgrund der nicht benötigten Inkubationszeit schnelle Ergebnisse, was einen hohen Probendurchsatz und darüber hinaus eine Bestimmung der Zeitkinetik antimikrobieller Sub-stanzen ermöglichte. Die Mikrodilution, die ein Standardverfahren der Mikrobiologie dar-stellt, erwies sich – bezogen auf die Antibiotikakontrollen – als zehnmal sensitiver für den Nachweis antibakterieller Effekte.

Für die durchflusszytometrische Darstellung wurden die Bakterien nach einer 90-minütigen Wachstumsphase auf eine Konzentration von 108 E. coli/ml PBS eingestellt, wodurch das Umgebungsrauschen minimiert wurde und der membranschädigende Effekt maximal sichtbar war. Um die Abgrenzung gegenüber anderen Partikeln zu erleichtern, wurden drei verschie-dene Lebend/Tot-Färbungen mit den Fluorochromen CFSE (6-carboxyfluorescein succinimidyl Ester), TO (Thiazol Orange) und DiBAC4 (bis-(1,3-dibutylbarbituric acid)-trimethine Oxonol) in Kombination mit Propidiumjodid (PI) durchgeführt. Beim Vergleich der Doppelfärbungen mit der einfachen PI-Färbung zeigte sich jedoch, dass bei einem Groß-teil der zweifach Fluorochrom-markierten Bakterien Membranschäden verhindert wurden, weil allein PI-gefärbte E. coli in ihrer Gesamtheit nahezu vollständig membrangeschädigt (99 %) waren, wogegen sich bei den restlichen Doppelfärbungen nur ein Anteil von 20 % - 30 % PI-positiv darstellte.

116

Ferner kam es bei den Lebend/Tot-Färbungen der Bakterien zu einer sehr heterogenen Anfärbbarkeit mit den Fluorochromen, die trotz Änderung zahlreicher Parameter der Färbe-technik bestehen blieben. So wiesen zwischen 4,7 % - 96,8 % der E. coli eine CFSE-Fluoreszenz auf (Median 35,3 %, CV 61,4 %) und waren zu 2,2 % - 8,6 % PI-positiv (Median 3,7 %, CV 33,9 %). Nach TO-Färbung fluoreszierten 7,1 % - 83,5 % der Bakterien in FL1 (TO-positiv) (Median 51,6 %, CV 40,7 %) und 2,2 % - 13,6 % in FL3 (PI-positiv) (Median 3,5 %, CV 56,5 %). 0,7 % - 16,4 % der E. coli waren DiBAC4-positiv (Median 1,6 %, CV 121,5 %) und 2,5 % - 26,5 % (Median 3,6 %, CV 98,1 %) wiesen eine geschädigte Membran auf. Aufgrund dieser Ergebnisse wurden die Bakterien für die Versuche mit Zellkulturüber-ständen oder den bovinen Chemokinen nur mit PI gefärbt.

Für die Untersuchungen an bovinen NK-Zellen wurde eine Methode zur Anreicherung dieser Zellpopulation mittels magnetischer Zellseparation erarbeitet. Positive Selektionen mit drei verschiedenen CD335-Ak (Klon AKS1) erzielten Reinheiten zwischen 4,6 % - 22,0 %. Um höhere Reinheiten (43 % - 82 %) zu erzielen wurden NK-Zellen mittels Ak gegen CD3, CD4, CD14, CD21, MHCII und WC1, die mit einem sekundärem biotinylierten Ak und Streptavidin-MicroBeads gekoppelt wurden, aus dem Blutzellgemisch negativ selektiert.

Für die drei untersuchten bovinen Chemokine (CXCL9, CXCL10 und CXCL11) konnte eine signifikante Hemmung des bakteriellen Wachstums mit der Mikrodilution nachgewiesen wer-den, die bei CXCL9 und CXCL10 stärker als bei CXCL11 war. Die bakterielle Wachstums-hemmung war dabei unabhängig vom verwendeten Kulturplattenmaterial (Polystyrol versus Polypropylen).

Die Zellkulturüberstände vermittelten abhängig von der geprüften Zellpopulation antibakteri-elle Effekte, wobei eine Stimulation der Zantibakteri-ellen mit LPS oder E. coli diese nur in wenigen Fäl-len steigerte. Die antimikrobielle Aktivität der Überstände von Monozyten und mononukleä-ren Zellen erwiesen sich als stark tierindividuell. Ebenso verhielt es sich bei denen der neu-trophilen Granulozyten und deren Degranulationsprodukten. Lediglich die NK-Zellüberstände aller Versuchstiere hemmten nachweislich das Wachstum der E. coli. Die Überstände aus der

117

Co-Kultivierung von MAC-T Zellen mit mononukleären Zellen, Monozyten oder NK-Zellen zeigten bei allen Ansätzen antibakterielle Effekte.

Die Überstände von NK-Zellen, die 20 h mit IL-12 geprimt wurden, erzielten einen stärkeren wachstumshemmenden Effekt auf E. coli als Überstände ungeprimter Zellen. Eine weitere Stimulation der NK-Zellen mit LPS, Ionomycin oder IL-1β vermittelte keine Steigerung der antimikrobiellen Aktivität. Die Kulturüberstände kreuzvernetzter (CD335 oder CD2) NK-Zellen unterschieden sich tierindividuell in ihrem wachstumshemmemden Potential gegen-über E. coli.

Eine Co-Kultivierung von E. coli mit mononukleären Zellen, neutrophilen Granulozyten oder einer Kombination aus beiden führte zu membrangeschädigten Bakterien, die abhängig von den eingesetzten Zellen und der Stimulation mit Ionomycin für 30 min bis zu 4 h nachzuwei-sen waren. Die Stimulation mit Ionomycin hatte demgegenüber keinen Einfluss auf den An-teil membrangeschädigter Bakterien, der allein von der verwendeten Zellpopulation abhing (Neutrophile bis zu 21 %, MNC bis zu 7 % und in Kombination bis zu 11 % PI-positive E. coli).

Anhand dieser Versuche konnte gezeigt werden, dass einzelne Zellpopulationen – vor allem NK-Zellen – ebenso wie bovines CXCL9, CXCL10 und CXCL11 antibakteriell gegenüber E. coli wirken. Ein Einsatz antimikrobieller Proteine oder eine gezielte Modulation von Im-munzellen, die zur verstärkten Sekretion antibakterieller Substanzen führt, wären mögliche Ansätze, um den Einsatz konventioneller Antibiotika zu senken.

118

7 Summary

Annika Bogusch Screening of bovine immune cells and chemokines for antibacterial activity in vitro

Most immune cells are either equipped with or able to produce antimicrobial substances after receiving inflammatory signals. For this work immune cells (mononuclear cells, monocytes, neutrophil granulocytes and NK cells) were cultured and studied along with three recombi-nant bovine chemokines (CXCL9, CXCL10 and CXCL11) on behalf of their antibacterial effects against E. coli.

Two different vitality tests were used to quantify the influence of test substances on E. coli.

Flow cytometric evaluation yielded fast results due to the lack of long incubation periods.

Therefore many samples could be measured and it further enabled the user to determine time depended effects of the tested substances. Microdilution, a standard test in microbiology, was ten times more sensitive in detecting antibacterial effects than the used flow cytometric tech-nique.

For flow cytometric analyses E. coli was grown for 90 minutes and after that diluted in PBS (108 bacteria/mL) in order to minimize background noise while simultaneously maximizing the membrane disrupting effect. To discriminate between bacteria and other particles three fluorochromes CFSE (6-carboxyfluorescein succinimidyl ester), TO (thiazole orange) and DiBAC4 (bis-(1,3-dibutylbarbituric acid)-trimethine oxonol) in combination with propidium iodide (PI) were used. Comparing double stained bacteria with those that were incubated with PI alone, it became obvious that dye combinations prohibited an increase in membrane per-meability, because only 20 % - 30 % of the bacteria appeared membrane-damaged after dou-ble staining compared to 99 % of PI-only stained bacteria.

Furthermore, the amount of stained bacteria using live/dead dyes yielded heterogenic results that could not be abrogated by changing parameters of the staining technique. The proportion of CFSE stained bacteria ranged between 4.7 % - 96.8 % (median 35.3 %, CV 61.4 %) with 2.2 % - 8.6 % PI positive E. coli (median 3.7 %, CV 33.9 %). After TO staining 7.1 % -

119

83.5 % of the bacteria fluoresced in FL1 (TO positive) (median 51.6 %, CV 40.7 %) and 2.2 % - 13.6 % in FL3 (PI positive) (median 3.5 %, CV 56.5 %). Using DiBAC4 0.7 % - 16.4 % of E. coli were positive for this dye (median 1.6 %, CV 121.5 %) and 2.5 % - 26.5 % had disrupted membranes (median 3.6 %, CV 98.1 %). Due to these heterogenic results bacte-ria were solely stained with PI for further experiments.

Before evaluating bovine NK cells, a purification method by magnetic separation out of blood mononuclear cells was established. Whereas strategies to purify the cells by positive selection largely failed (purities ranged between 4.6 % and 22.0 %), a negative selection strategy by depleting contaminating cells with antibodies against CD3, CD4, CD14, CD21, MHCII and WC1, along with a secondary biotinylated antibody which bound to streptavidin microbeads yielded in purities from 43 % to 82 %.

By using microdilution a significant inhibition of bacterial growth could be noted for all three tested bovine chemokines. The inhibitory effect of CXCL9 and CXCL10 was stronger than that of CXCL11. The culture plate material (polystyrole or polypropylene) had no significant influence on the results.

The cell culture supernatants conveyed antibacterial effects depending on the tested cell popu-lation. Stimulation of cells with LPS or E. coli usually did not enhance the antibacterial ef-fects. Monocyte and mononuclear cell supernatants resulted in highly individual efef-fects. The same was observed with supernatants of neutrophils and their degranulation products. Only NK cell supernatants of all tested animals uniformly inhibited the growth of E. coli. Every supernatant from mononuclear cells, monocytes or NK cells co-cultured with MAC-T cells displayed antibacterial effects.

Supernatants of NK cells, which were primed for 20 h with IL-12 displayed stronger growth inhibitory effects on E. coli compared to supernatants of unprimed cells. Any further stimula-tion of NK cells with LPS, ionomycin or IL-1β did not result in an enhanced antimicrobial activity. Supernatant from cells that were CD335 or CD2 linked showed individually different growth inhibitory potential against E. coli.

120

Co-culturing of E. coli with mononuclear cells, neutrophil granulocytes or a combination of these two cell populations led to bacteria with disrupted membranes as measured flow cytometrically by PI uptake. The effects were detectable for 30 min up to 4 h depending on the culture composition and stimulation of cells with ionomycin. Ionomycin had no detectable influence on the amount of PI-positive bacteria. The latter depended only on the cultured cell type (neutrophils up to 21 %, MNC up to 7 % and both combined up to 11 % PI-positive bac-teria).

Based on the experiments in this work, antibacterial activity of bovine CXCL9, CXCL10 and CXCL11, and of different mononuclear blood cell populations, especially NK cells, against E. coli could be shown. Either the application of antimicrobial proteins or the modulation of immune cells towards cells expressing more antibacterial substances is a possible approach to reduce usage of conventional antibiotics.

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8 Literaturübersicht

ADDISON, E. G., J. NORTH, I. BAKHSH, C. MARDEN, S. HAQ, S. AL-SARRAJ, R.

MALAYERI, R. G. WICKREMASINGHE, J. K. DAVIES u. M. W. LOWDELL (2005):

Ligation of CD8alpha on human natural killer cells prevents activation-induced apoptosis and enhances cytolytic activity.

Immunology 116, 354-361

ADLEROVA, L., A. BARTOSKOVA u. M. FALDYNA (2008):

Lactoferrin: a review.

Veterinarni Medicina 53, 457-468

AGERBERTH, B., J. CHARO, J. WERR, B. OLSSON, F. IDALI, L. LINDBOM, R.

KIESSLING, H. JORNVALL, H. WIGZELL u. G. H. GUDMUNDSSON (2000):

The human antimicrobial and chemotactic peptides LL-37 and alpha-defensins are expressed by specific lymphocyte and monocyte populations.

Blood 96, 3086-3093

ALEY, S. B., M. ZIMMERMAN, M. HETSKO, M. E. SELSTED u. F. D. GILLIN (1994):

Killing of Giardia lamblia by cryptdins and cationic neutrophil peptides.

Infect Immun 62, 5397-5403

ALSHARIF, K. u. W. GODFREY (2002):

Bacterial Detection and Live/Dead Discrimination by Flow Cytometry.

6

AMULIC, B., C. CAZALET, G. L. HAYES, K. D. METZLER u. A. ZYCHLINSKY (2012):

Neutrophil function: from mechanisms to disease.

Annu Rev Immunol 30, 459-489

ANDERSSON, M., H. GUNNE, B. AGERBERTH, A. BOMAN, T. BERGMAN, R.

SILLARD, H. JORNVALL, V. MUTT, B. OLSSON, H. WIGZELL u. ET AL. (1995):

NK-lysin, a novel effector peptide of cytotoxic T and NK cells. Structure and cDNA cloning of the porcine form, induction by interleukin 2, antibacterial and antitumour activity.

EMBO J 14, 1615-1625

ANFOSSI, N., P. ANDRE, S. GUIA, C. S. FALK, S. ROETYNCK, C. A. STEWART, V.

BRESO, C. FRASSATI, D. REVIRON, D. MIDDLETON, F. ROMAGNE, S. UGOLINI u.

E. VIVIER (2006):

Human NK cell education by inhibitory receptors for MHC class I.

Immunity 25, 331-342

ARNOLD, R. R., M. BREWER u. J. J. GAUTHIER (1980):

Bactericidal activity of human lactoferrin: sensitivity of a variety of microorganisms.

Infect Immun 28, 893-898

122

ASAI, T., A. KOJIMA, K. HARADA, K. ISHIHARA, T. TAKAHASHI u. Y. TAMURA (2005):

Correlation between the usage volume of veterinary therapeutic antimicrobials and resistance in Escherichia coli isolated from the feces of food-producing animals in Japan.

Jpn J Infect Dis 58, 369-372

AUFFRAY, C., M. H. SIEWEKE u. F. GEISSMANN (2009):

Blood monocytes: development, heterogeneity, and relationship with dendritic cells.

Annu Rev Immunol 27, 669-692 BAGGIOLINI, M. (1998):

Chemokines and leukocyte traffic.

Nature 392, 565-568

BAGGIOLINI, M., C. DE DUVE, P. L. MASSON u. J. F. HEREMANS (1970):

Association of lactoferrin with specific granules in rabbit heterophil leukocytes.

J Exp Med 131, 559-570

BAGGIOLINI, M., B. DEWALD u. B. MOSER (1997):

Human chemokines: an update.

Annu Rev Immunol 15, 675-705

BALS, R., X. WANG, M. ZASLOFF u. J. M. WILSON (1998):

The peptide antibiotic LL-37/hCAP-18 is expressed in epithelia of the human lung where it has broad antimicrobial activity at the airway surface.

Proc Natl Acad Sci U S A 95, 9541-9546 BALS, R. u. J. M. WILSON (2003):

Cathelicidins--a family of multifunctional antimicrobial peptides.

Cell Mol Life Sci 60, 711-720

BARAN, J., D. KOWALCZYK, M. OZOG u. M. ZEMBALA (2001):

Three-color flow cytometry detection of intracellular cytokines in peripheral blood mononuclear cells: comparative analysis of phorbol myristate acetate-ionomycin and phytohemagglutinin stimulation.

Clin Diagn Lab Immunol 8, 303-313

BENINCASA, M., M. SCOCCHI, S. PACOR, A. TOSSI, D. NOBILI, G. BASAGLIA, M.

BUSETTI u. R. GENNARO (2006):

Fungicidal activity of five cathelicidin peptides against clinically isolated yeasts.

J Antimicrob Chemother 58, 950-959

BERKHOUT, T. A., H. M. SARAU, K. MOORES, J. R. WHITE, N. ELSHOURBAGY, E.

APPELBAUM, R. J. REAPE, M. BRAWNER, J. MAKWANA, J. J. FOLEY, D. B.

SCHMIDT, C. IMBURGIA, D. MCNULTY, J. MATTHEWS, K. O'DONNELL, D.

O'SHANNESSY, M. SCOTT, P. H. GROOT u. C. MACPHEE (1997):

123

Cloning, in vitro expression, and functional characterization of a novel human CC chemokine of the monocyte chemotactic protein (MCP) family (MCP-4) that binds and signals through the CC chemokine receptor 2B.

J Biol Chem 272, 16404-16413

BERRY, E. A. u. J. E. HILLERTON (2007):

Effect of an intramammary teat seal and dry cow antibiotic in relation to dry period length on postpartum mastitis.

J Dairy Sci 90, 760-765 BIRGENS, H. S. (1985):

Lactoferrin in plasma measured by an ELISA technique: evidence that plasma lactoferrin is an indicator of neutrophil turnover and bone marrow activity in acute leukaemia.

Scand J Haematol 34, 326-331 BOMAN, H. G. (1995):

Peptide antibiotics and their role in innate immunity.

Annu Rev Immunol 13, 61-92

BOUDJELLAB, N., H. S. CHAN-TANG u. X. ZHAO (2000):

Bovine interleukin-1 expression by cultured mammary epithelial cells (MAC-T) and its involvement in the release of MAC-T derived interleukin-8.

Comp Biochem Physiol A Mol Integr Physiol 127, 191-199

BOULOS, L., M. PREVOST, B. BARBEAU, J. COALLIER u. R. DESJARDINS (1999):

LIVE/DEAD BacLight : application of a new rapid staining method for direct enumeration of viable and total bacteria in drinking water.

J Microbiol Methods 37, 77-86

BOWDISH, D. M., D. J. DAVIDSON, M. G. SCOTT u. R. E. HANCOCK (2005):

Immunomodulatory activities of small host defense peptides.

Antimicrob Agents Chemother 49, 1727-1732

BOYEN, F., F. VANGROENWEGHE, P. BUTAYE, E. DE GRAEF, F. CASTRYCK, P.

HEYLEN, M. VANROBAEYS u. F. HAESEBROUCK (2010):

Disk prediffusion is a reliable method for testing colistin susceptibility in porcine E. coli

124

The beta-thromboglobulins and platelet factor 4: blood platelet-derived CXC chemokines with divergent roles in early neutrophil regulation.

J Leukoc Biol 67, 471-478

BREEUWER, P. u. T. ABEE (2000):

Assessment of viability of microorganisms employing fluorescence techniques.

Int J Food Microbiol 55, 193-200

BREUKINK, E. u. B. DE KRUIJFF (1999):

The lantibiotic nisin, a special case or not?

Biochim Biophys Acta 1462, 223-234 BROCK, J. H. (1980):

Lactoferrin in human milk: its role in iron absorption and protection against enteric infection in the newborn infant.

Arch Dis Child 55, 417-421 BROGDEN, K. A. (2005):

Antimicrobial peptides: pore formers or metabolic inhibitors in bacteria?

Nat Rev Microbiol 3, 238-250

BULLARD, R. S., W. GIBSON, S. K. BOSE, J. K. BELGRAVE, A. C. EADDY, C. J.

WRIGHT, D. J. HAZEN-MARTIN, J. M. LAGE, T. E. KEANE, T. A. GANZ u. C. D.

DONALD (2008):

Functional analysis of the host defense peptide Human Beta Defensin-1: new insight into its potential role in cancer.

Mol Immunol 45, 839-848

CALVANO, J. E., D. M. AGNESE, J. Y. UM, M. GOSHIMA, R. SINGHAL, S. M. COYLE, M. T. REDDELL, A. KUMAR, S. E. CALVANO u. S. F. LOWRY (2003):

Modulation of the lipopolysaccharide receptor complex (CD14, TLR4, MD-2) and toll-like receptor 2 in systemic inflammatory response syndrome-positive patients with and without infection: relationship to tolerance.

Shock 20, 415-419

CHAN, D. I., H. N. HUNTER, B. F. TACK u. H. J. VOGEL (2008):

Human macrophage inflammatory protein 3alpha: protein and peptide nuclear magnetic resonance solution structures, dimerization, dynamics, and anti-infective properties.

Antimicrob Agents Chemother 52, 883-894

125

CHENG, J. B., J. Q. WANG, D. P. BU, G. L. LIU, C. G. ZHANG, H. Y. WEI, L. Y. ZHOU u. J. Z. WANG (2008):

Factors affecting the lactoferrin concentration in bovine milk.

J Dairy Sci 91, 970-976 CHOY, S. L. J. (2014):

Modulation boviner Monozytensubpopulationen durch Degranulationsprodukte neutrophiler Granulozyten. with primary biliary cirrhosis and their first degree relatives.

J Autoimmun 25, 126-132

CLAUSEN, J., B. VERGEINER, M. ENK, A. L. PETZER, G. GASTL u. E. GUNSILIUS (2003):

Functional significance of the activation-associated receptors CD25 and CD69 on human NK-cells and NK-like T-NK-cells.

Immunobiology 207, 85-93 CLSI (2006):

Methods for Dilution Antimicrobial Susceptibility Tests for Bacteria That Grow Aerobically.

26,

Cutting edge: IFN-inducible ELR- CXC chemokines display defensin-like antimicrobial activity.

J Immunol 167, 623-627

COLE, K. E., C. A. STRICK, T. J. PARADIS, K. T. OGBORNE, M. LOETSCHER, R. P.

GLADUE, W. LIN, J. G. BOYD, B. MOSER, D. E. WOOD, B. G. SAHAGAN u. K. NEOTE (1998):

Interferon-inducible T cell alpha chemoattractant (I-TAC): a novel non-ELR CXC chemokine with potent activity on activated T cells through selective high affinity binding to CXCR3.

J Exp Med 187, 2009-2021

COOPER, M. A., T. A. FEHNIGER u. M. A. CALIGIURI (2001):

The biology of human natural killer-cell subsets.

126 Trends Immunol 22, 633-640

COWLAND, J. B. u. N. BORREGAARD (1999):

The individual regulation of granule protein mRNA levels during neutrophil maturation explains the heterogeneity of neutrophil granules.

J Leukoc Biol 66, 989-995

CRAWFORD, M. A., M. D. BURDICK, I. J. GLOMSKI, A. E. BOYER, J. R. BARR, B.

MEHRAD, R. M. STRIETER u. M. A. HUGHES (2010):

Interferon-inducible CXC chemokines directly contribute to host defense against inhalational anthrax in a murine model of infection.

PLoS Pathog 6, e1001199

CRAWFORD, M. A., Y. ZHU, C. S. GREEN, M. D. BURDICK, P. SANZ, F. ALEM, A. D.

O'BRIEN, B. MEHRAD, R. M. STRIETER u. M. A. HUGHES (2009):

Antimicrobial effects of interferon-inducible CXC chemokines against Bacillus anthracis spores and bacilli.

Infect Immun 77, 1664-1678

DAHER, K. A., R. I. LEHRER, T. GANZ u. M. KRONENBERG (1988):

Isolation and characterization of human defensin cDNA clones.

Proc Natl Acad Sci U S A 85, 7327-7331

DALE, D. C., L. BOXER u. W. C. LILES (2008):

The phagocytes: neutrophils and monocytes.

Blood 112, 935-945 DAVEY, H. M. (2002):

Flow cytometric techniques for the detection of microorganisms.

Methods Cell Sci 24, 91-97

DEERE, D., J. PORTER, C. EDWARDS u. R. PICKUP (1995):

Evaluation of the suitability of bis-(1,3-dibutylbarbituric acid) trimethine oxonol, (diBA-C4(3)-), for the flow cytometric assessment of bacterial viability.

FEMS Microbiol Lett 130, 165-169

DI NARDO, A., M. H. BRAFF, K. R. TAYLOR, C. NA, R. D. GRANSTEIN, J. E.

MCINTURFF, S. KRUTZIK, R. L. MODLIN u. R. L. GALLO (2007):

Cathelicidin antimicrobial peptides block dendritic cell TLR4 activation and allergic contact sensitization.

J Immunol 178, 1829-1834

DIAMOND, G., V. KAISER, J. RHODES, J. P. RUSSELL u. C. L. BEVINS (2000):

Transcriptional regulation of beta-defensin gene expression in tracheal epithelial cells.

Infect Immun 68, 113-119

127

DIAMOND, G., M. ZASLOFF, H. ECK, M. BRASSEUR, W. L. MALOY u. C. L. BEVINS (1991):

Tracheal antimicrobial peptide, a cysteine-rich peptide from mammalian tracheal mucosa:

peptide isolation and cloning of a cDNA.

Proc Natl Acad Sci U S A 88, 3952-3956

EGESTEN, A., M. ELIASSON, H. M. JOHANSSON, A. I. OLIN, M. MORGELIN, A.

MUELLER, J. E. PEASE, I. M. FRICK u. L. BJORCK (2007):

The CXC chemokine MIG/CXCL9 is important in innate immunity against Streptococcus pyogenes.

J Infect Dis 195, 684-693

ELHMOUZI-YOUNES, J., A. K. STORSET, P. BOYSEN, F. LAURENT u. F. DROUET (2009):

Bovine neonate natural killer cells are fully functional and highly responsive to interleukin-15 and to NKp46 receptor stimulation.

Vet Res 40, 54

ENDSLEY, J. J., M. A. ENDSLEY u. D. M. ESTES (2006):

Bovine natural killer cells acquire cytotoxic/effector activity following activation with IL-12/15 and reduce Mycobacterium bovis BCG in infected macrophages.

J Leukoc Biol 79, 71-79

ENDSLEY, J. J., J. L. FURRER, M. A. ENDSLEY, M. A. MCINTOSH, A. C. MAUE, W. R.

WATERS, D. R. LEE u. D. M. ESTES (2004):

Characterization of bovine homologues of granulysin and NK-lysin.

J Immunol 173, 2607-2614

EPAND, R. M. u. H. J. VOGEL (1999):

Diversity of antimicrobial peptides and their mechanisms of action.

Biochim Biophys Acta 1462, 11-28 EUCAST (2015):

Breakpoint tables for interpretation of MICs and zone diameters. Version 5.0.

www.eucast.org/fileadmin/src/media/PDFs/EUCAST_files/Breakpoint_tables/v_5.0_Breakpo int_Table_01.pdf

EVANS, M. E., D. J. FEOLA u. R. P. RAPP (1999):

Polymyxin B sulfate and colistin: old antibiotics for emerging multiresistant gram-negative bacteria.

Ann Pharmacother 33, 960-967

FALAGAS, M. E. u. S. K. KASIAKOU (2005):

Colistin: the revival of polymyxins for the management of multidrug-resistant gram-negative bacterial infections.

Clin Infect Dis 40, 1333-1341

128 FARBER, J. M. (1997):

Mig and IP-10: CXC chemokines that target lymphocytes.

J Leukoc Biol 61, 246-257

FAURSCHOU, M. u. N. BORREGAARD (2003):

Neutrophil granules and secretory vesicles in inflammation.

Microbes Infect 5, 1317-1327

FROHM, M., B. AGERBERTH, G. AHANGARI, M. STAHLE-BACKDAHL, S. LIDEN, H.

WIGZELL u. G. H. GUDMUNDSSON (1997):

The expression of the gene coding for the antibacterial peptide LL-37 is induced in human keratinocytes during inflammatory disorders.

The expression of the gene coding for the antibacterial peptide LL-37 is induced in human keratinocytes during inflammatory disorders.