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Zusammengefasstes Modell und Hypothese der Aktivierung von TRPC1-

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1 Abkürzungen und Akronyme

8.6 Zusammengefasstes Modell und Hypothese der Aktivierung von TRPC1-

8 Diskussion 8.5 TRPC1β interagiert mit zellspezifischen Adapterproteinen 2001). Das PKCBP1 könnte ähnlich wie RACK der Verankerung von aktivierten PKC-Isoenzymen dienen, sie mit dem TRPC-Kanal verknüpfen und in den Signalkomplex integrieren. Der CRLF3 könnte TRPC-Kanäle alternativ zum BCR bei die B-Zellaktivierung mit Hilfe von Cytokinen wie den Interleukinen IL-4, IL-6, IL-7 IL-13 oder dem CD40-Ligand stimulieren. Die Rolle dieses neuen Proteins in der cytokingesteuerten B-Zell-Aktivierung und eine Stimulierung von TRPC-Kanälen muss noch untersucht werden.

8.6 Zusammengefasstes Modell und Hypothese der Aktivierung von

8 Diskussion 8.6 Zusammengefasstes Modell und Hypothese der Aktivierung Ein anderer Teil von TRPC1-enthaltenden Kanälen wird in Glykolipid-angereicherten Membranmikrodomänen (LRD, Caveolae) lokalisiert, die als Plattform für zahlreiche Signalmoleküle dienen. In T-Zellen kommt es nach der Lokalisierung von TRPC1-enthaltenden Kanälen in diesen Mikrodomänen zur Interaktion mit LAT, was die Kanäle an andere Signalwege anknüpft.

Am Transport der Vesikel ist das Actincytoskelett beteiligt, indem TRPC1 über seinen N-Terminus an die isoformenspezifische, in der Mitte des Proteins gelegene Region von Tropomodulin 3 bindet, welches wiederum an Tropomyosin und das langsam wachsende Ende von F-Actin gebunden ist. Nach Aktivierung der B-Lymphocyten kommt es zur Neuorganisation des Actincytoskeletts, infolgedessen die TRPC1-enthaltenden Kanäle durch die Bindung an das stabilere Ende der Actinfilamente an den für ihre Kanalfunktion notwendigen Ort in der Plasmamembran transportiert und dort fixiert.

Das cytoskelettartige Protein Rootletin interagiert mit TRPC1 über die jeweiligen „coiled-coil“-Domänen und verknüpft die Kanäle mit dem Endoplasmatischen Retikulum, so dass eine reversible Interaktion mit dem IP3R ermöglicht wird.

Die 14-3-3-Isoformen epsilon und theta können am Transport der TRPC1-enthaltenden Kanäle beteiligt sein und so die Plasmamembranlokalisation fördern oder durch kompetetive Bindung mit anderen am Transport beteiligten Proteinen wie Clathrin oder Tropomodulin 3 behindern. Alternativ können die 14-3-3-Proteine auch die Öffnung des Kanals beeinflussen, indem sie positiv oder negativ regulatorische Stellen im N-Terminus blockieren. Eine Konkurrenz mit Calmodulin oder dem IP3-Rezeptor besteht nicht, da diese inhibierenden bzw. aktivierenden Proteine im C-Terminus von TRPC-Proteinen binden, mit der Ausnahme von TRPC2, das auch eine CaM-Bindestelle im N-Terminus besitzt. Als dritte Möglichkeit können 14-3-3-Proteine als Adapter TRPC1 mit anderen Proteinen koppeln und die Bildung einen Signalkomplexes ermöglichen.

Auch der RhoGEF FGD-2 kann am vesikulären Transport von TRPC-Kanälen beteiligt sein, Nach Aktivierung der B-Zelle und Entleerung der intrazellulären Speicher geht TRPC1 eine Interaktion mit dem IP3-Rezeptor ein, die zur Öffnung der TRPC1-enthaltenden Kanals führt, vergleichbar zum Mechanismus in Blutplättchen. Der IP3R verdrängt dabei das inhibitorische Calmodulin, dessen Bindestelle im C-Terminus mit der für den IP3R überlappt. Im Fall von TRPC3 ist die Affinität zum IP3R stärker als bei TRPC1 und für Calmodulin schwächer, so dass die Assoziation von TRPC3 an den IP3R konstitutiv ist, was zu einer basalen Aktivität TRPC3-enthaltender Kanäle führt.

8 Diskussion 8.6 Zusammengefasstes Modell und Hypothese der Aktivierung Transportprozessen beteiligt sind. Alternativ kann FGD-2 TRPC1-enthaltende Kanäle mit anderen Signalwegen verknüpfen, die durch kleine G-Proteine beeinflusst werden.

TRIM27 kann in B-Zellen nach Rezeptorstimulation und Ca -Einfluss die Apoptose verhindern, indem es durch die konformationelle Änderung der geöffneten TRPC1-Kanäle aktiviert wird.

2+

Das PKC- bindende Protein 1 kann der Verankerung von aktivierten PKC-Isoenzymen dienen, sie mit dem TRPC-Kanal verknüpfen und in den Signalkomplex integrieren.

Der CRLF3 kann TRPC-Kanäle alternativ zum BCR bei die B-Zellaktivierung mit Hilfe von Cytokinen stimulieren.

Bei langanhaltend erhöhter cytosolischer Calciumkonzentration verdrängt Calmodulin (Ca /CaM) wiederum den IP3R von den TRPC1-enthaltenden Kanäle, was zu deren Inaktivierung führt. TRPC- Kanäle, die in „Lipid Raft“ Domänen lokalisiert sind, werden nach Internalisierung abgebaut, die in Clathrin-bedeckten Gruben befindlichen TRPC1-Proteine können jedoch wiederverwertet werden.

2+

Teile dieser Hypothese müssen noch experimentell genauer untersucht und belegt werden.

Mit der vorliegenden Studie sind interessante Erkenntnisse und neue Forschungsansätze gewonnen worden.

9 Literaturverzeichnis _

9 Literaturverzeichnis

Acharya, J.K., Jalink, K., Hardy, R.W., Hartenstein, V., Zuker, C.S. (1997),

„InsP3 receptor is essential for growth and differentiation but not for vision in Drosophila“ Neuron 18: 881-887

Adams, M.D., Celniker, S.E., Holt, R.A., Evans, C.A., Gocayne, J.D., Amanatides, P.G., Scherer, S.E., Li, P.W., Hoskins, R.A. (2000),

„The genome sequence of Drosophila melanogaster“ Science 287: 2185-2195

Almenar-Queralt, Lee, A., Conley, C.A., Ribas de Pouplana, L., Folwer, V.M., (1999),

„Identifikation of a Novel Tropomodulin Isoform, Skeletal Tropomodulin, That Caps Actin Filament Pointed Ends in Fast Skeletal Muscle“ J. Biol. Chem. 274: 28466-28475

Aruffo, A., Seed, B. (1987),

„Molecular Cloning of a CD28 cDNA by a high-efficiency COS cell expression system“ Proc. Natl. Acad. Sci. USA 84: 8573-8577

Babcock, G.G., Fowler, V.M. (1994),

„Isoform-specific interaction of tropomodulin with skeletal muscle and eyrothrocyte tropomyosins“ J. Biol. Chem. 269: 27510-27518

Barritt, G.J. (1999),

„Receptor-activated Ca2+ inflow in animal cells: a variety of pathways tailored to meet different intracellular Ca2+ signalling requirements” Biochem. J. 337: 153-169

Berg, L.P., Shamsher, M.K., El-Daher, S.S., Kakkar, V.V., Authi, K.S. (1997),

„Expression of human TRPC genes in the megakaryocytic cell lines MEG01, DAMI and HEL“ FEBS Lett. 403: 83-86

Berridge, M.J. (1993),

9 Literaturverzeichnis _

Berridge, M.J. (1995),

„Capacitative calcium entry” Biochem. J. 312: 1-11 Bell, J. (1989),

„The polymerase chain reaction“ Immunology Today 10: 351-355 Bessman, M.J., Frick, D.N., O’Handley, S.F. (1996),

„The MutT proteins or ’Nudix’ hydrolases, a family of versatile, wiedely distributed,

’housecleaning’ enzymes“ J. Biol. Chem. 271: 25059-25062 Bird, G.S., Putney, J.W. Jr. (1993),

„Inhibition of thapsigargin-induced calcium entry by microinjected guanine nucleotide analogues. Evidence for the involvement of a small G-protein in capacitative calcium entry“ J. Biol. Chem. 268: 21486-21488

Birnbaumer, L., Zhu, X., Jiang, M., Boulay, G., Peyton, M., Vannier, B., Brown, D., Platano, D., Sadeghi, H., Stefani, E., Birnbaumer, M. (1996),

„On the molecular basis and regulation of cellular capacitative calcium entry: Roles for Trp proteins“ Proc. Natl. Acad. Sci. USA 93: 15195-15202

Bloomquist, B.T., Shortridge, R.D., Schneuwly, S., Perdew, M., Montell, C., Steller, H., Rubin, G., Pak, W.L. (1988),

„Isolation of a putative phospholipase C gene of Drosophila, norpA, and its role in phototransduction“ Cell 54: 723-733

Bödding, M., Wissenbach, U., Flockerzi, V. (2002),

„The recombinant human TRPV6 channel functions as Ca2+ sensor in human embryonic kidney and rat basophilic leukemia cells“ J. Biol. Chem. 277: 36656-36664

9 Literaturverzeichnis _ Boerth, N.J., Sadler, J.J., Bauer, D.E., Clements, J.L., Gheith, S.M., Koretzky, G.A.

(2000),

„Recruitment of SLP-76 to the Membrane and Glycolipid-enriched Membrane Microdomains Replaces the Requirement for Linker of Activation of T Cells in T Cell Receptor Signaling“ J. Exp. Med. 192 (7): 1047-1058

Bonnefoy-Berard, N., Liu, Y.C., von Willebrand, M., Sung, A., Elly, C., Mustelin, T., Yoshida, H., Ishizaka, K., Altman, A. (1995),

„Inhibition of Phosphatidyl 3-Kinase Activity by Association with 14-3-3 Proteins in T Cells“ Proc. Natl. Acad. Sci. USA 92 (22): 10142-10146

Boulay, G., Zhu, X., Peyton, M., Jiang, M., Hurst, R., Stefani, E., Birnbaumer, L.

(1997),

„Cloning and expression of a novel mammalian homolog of Drosophila transient receptor potential (Trp) involved in calcium entry secondary to activation of receptors coupled by the Gq class of G protein“ J. Biol. Chem. 272 (47): 29672-29680

Boulay, G., Brown, D.M., Qin, N., Jiang, M., Dietrich, A., Zhu, M.X., Chen, Z., Birnbaumer, M., Mikoshiba, K., Birnbaumer, L. (1999),

„Modulation of Ca2+ entry by polypeptides of the inositol 1,4,5-trisphosphate receptor (IP3R) that bind transient receptor potential (TRP): Evidence for roles of TRP and IP3R in store depletion-activated Ca2+ entry“ Proc. Natl. Acad. Sci. USA 96: 14955-14960

Bourguignon, L.Y., Jin, H., Iida, N., Brandt, N.R., Zhang, S.H. (1993),

„The involvement of ankyrin in the regulation of inositol 1,4,5-trisphosphate receptor-mediated internal Ca2+ release from Ca2+ storage versicles in mouse T-lymphoma cells“ J. Biol. Chem. 268 (10): 7290-7297

Brent, R., Ptashne, M. (1984),

„A bacterial repressor protein or a yeast transcriptional terminator can block upstream activation of a yeast gene“ Nature 312: 612-615

9 Literaturverzeichnis _ Brentlab (2001),

http://www.molsci.org/brentlabweb/brent/interaction_trap/testing_baits.txt http://www.molsci.org/brentlabweb/brent/interaction_trap.html

http://www.fccc.edu/research/labs/golemis/

Brdička, T., Imrich, M., Angelisová, P., Brdičková, N., Horváth, O., Špička, J., Hilgert, I., Lusková, P., Dráber, P., Novák, P., Engels, N., Wienands, J., Simeoni, L., Österreicher, J., Aguado, E., Malissen, M., Schraven, B., Hořejší, V. (2002),

„Non-Z Cell Activation Linker (NTAL): A Transmembrane Adaptor Protein Involved in Immunoreceptor Signaling“ J. Exp. Med. 196 (12): 1617-1626

Buday, L., Egan, S.E., Rodriguez Viciana, P., Cantrell, D.A., Downward, J. (1994),

„A Complex of Grb2 Adaptor Protein, Sos Exchange Factor, and a 36-kDa Membrane-bound Tyrosine Phosphoprotein Is Implicated in Ras Activation in T Cells“ J. Biol. Chem. 269 (12): 9019-9023

Calakos, N., Scheller, R.H. (1996),

„Synaptic vesicle biogenesis, docking, and fusion: a molecular description“ Physiol.

Rev. 76: 1-29

Campbell, K.P., Kahl, S.D. (1989),

„Association of dystrophin and an integral membrane glycoprotein“ Nature 338: 259-262

Cao, T., Borden, K.L.B., Freemont, P.S., Etkin, L.D. (1997),

„Involment of the rfp tripartite motif in protein-protein interactions and subcellular distribution“ J. Cell Sci. 110: 1563-1571

Cao, T., Duprez, E., Borden, K.L.B., Freemont, P.S., Etkin, L.D. (1998),

„Ret finger protein is a normal component of PML nuclear bodies and interacts directly with PML“ J. Cell Sci. 111: 1319-1329

9 Literaturverzeichnis _ Carvajal, J.A., Germain, A.M., Huidobro-Toro, J.P., Weiner, C.P. (2000),

„Molecular mechanism of cGMP-mediated smooth muscle relaxation“ J. Cell.

Physiol. 184: 409-420

Castellano, L.E., Treviño, C.L., Rodríguez, D., Serrano, C.J., Pacheco, J., Tsutsumi, V., Felix, R., Darszon, A. (2003),

„Transient receptor potential (TRPC) channels in human sperm: expression, cellular localization and involvement in the regulation of flagellar motility“ FEBS Lett. 541:

69-74

Caterina, M.J., Schmacher, M.A., Tominaga, M., Rosen, T.A., Levine, J.D., Julius, D.

(1997),

„The capsaicin receptor: a heat-activated ion channel in the pain pathway“ Nature 389:

816-824

Caterina, M.J., Rosen, T.A., Tominaga, M., Brake, A.J., Julius, D. (1999),

„A capsaicin receptor homologue with a high threshold for noxious heat“ Nature 398:

436-441

Caterina, M.J. & Julius, D. (2001),

„The vanilloid receptor: a molecular gateway to the pain pathway“ Annu. Rev.

Neurosci. 24: 487-517

Chakrabarti, R., Kumar, S. (2000),

„Diacylglycerol mediates the T-cell receptor-driven Ca2+ influx in T cells by a novel mechanism independent of protein kinase C activation“ J. Cell. Biochem. 78: 222-230 Chang, A.S., Chang, S.M., Garcia, R.L., Schilling, W.P. (1997),

„Concomitant and hormonally regulated expression of trp genes in bovine aortic endothelial cells“ FEBS Lett. 415 (3): 335-340

Chen, C.Y., Reese, M.L., Hwang, P.K., Ota, N., Agard, D., Brodsky, F.M. (2002),

„Clathrin light and heavy chain interface: alpha-helix binding superhelix loops via

9 Literaturverzeichnis _

Chu, X., Cheung, J.Y., Barber, D.L., Birnbaumer, L., Rothblum, L.I., Conrad, K., Abrasonis, V., Chan, Y.M., Stahl, R., Carey, D.J., Miller, B.A. (2002),

„Erythropoietin modulates calcium influx through TRPC2“ J. Biol. Chem. 277: 34375-34382

Chyb, S., Raghu, P., Hardie, R.C. (1999),

„Polyunsaturated fatty acids activate light-sensitive TRP and TRPL“ Nature 397:

255-259

Clapham, D.E. (2002),

„Hot and Cold TRP Ion Channels“ Science 295: 2228-2229 Clapham, D.E., Runnels, L.W., Strübing, C. (2001),

„THE TRP ION CHANNEL FAMILY“ Nature Reviews Neuroscience 2: 387-396 Clementi, E., Scheer, H., Zacchetti, D., Fasolato, C., Pozzan, T., Meldolesi, J. (1992),

„Receptor activated Ca2+ influx. Two independently regulated mechanisms of influx stimulation coexist in neurosecretory PC12 cells“ J. Biol. Chem. 267: 2164-2172 Clements, J.L., Boerth, N.J., Lee, J.R., Koretzky, G.A. (1999),

„Integration of T cell receptor-dependent signaling pathways by adapter proteins“

Annu. Rev. Immunol. 17: 89-108

Clontech (2001)-a,

„MATCHMAKER LexA Two-Hybrid System and MATCHMAKER LexA Libraries”, User Manual, PT3040-1

http://www.clontech.com/techinfo/manuals/PDF/PT3040-1.pdf

Clontech (2001)-b,

„Yeast Protocols Handbook”, PT3024-1 (PR13103)

http://www.bdbiosciences.com/clontech/techinfo/manuals/PDF/PT3024-1.pdf

9 Literaturverzeichnis _ Clontech (2001)-c,

„YEASTMAKERTM Yeast Plasmid Isolation Kit”, User Manual, PT3049-1 http://www.bdbiosciences.com/clontech/techinfo/manuals/PDF/PT3024-1.pdf

Clontech, Becton Dickinson (2002),

„KC8 Chemically Competent Cells”, Catalog No. C2004-1 Cook, B., Minke, B. (1999),

„TRP and calcium stores in Drosophila phototransduction“ Cell Calcium 25: 161-171 Covarrubias, M., Wei, A.A., Salkoff, L. (1991),

„Shaker, Shal, Shab, and Shaw express independent K+ current systems“ Neuron 7:

763-773

Cox, P.R., Zoghbi, H.Y. (2000),

„Sequencing, Expression Analysis and Mapping of the Three Unique Human Tropomodulin Genes and Their Mouse Orthologs“, Genomics 63: 97-107

Csutora, P., Su, Z., Kim, H.Y., Bugrim, A., Cunningham, A.W., Nuccitelli, R., Keizer, J.E., Hanley, M.R., Blalock, J.E., Marchase, R.B. (1999),

„Calcium influx factor is synthesized by yeast and mammalian cells depleted of organellar calcium stores“ Proc. Natl. Acad. Sci. USA 96: 121-126

Damerval, C., Guillioux, M., Blaisomeau, J., Vienne, D. (1987),

„Simplification of Heukeshoven and Dernick’s silver stain of proteins“

Electrophoresis 8: 158-159

Deeds, J., Cronin, F., Duncan, L.M. (2000),

„Patterns of melastatin mRNA expression in melanocytic tumor“ Hum. Pathol. 31:

1346-1356

9 Literaturverzeichnis _ Dellambra, E., Patrone, M., Sparatore, B., Negri, A., Ceciliani, F., Bodanza, S., Molina, F., Descalzi Cancedda, F., De Luca, M. (1995),

„Stratifin, a keratinocyte specific 14-3-3 protein, harbors a pleckstrin homology (PH) domain and enhances PKC activity“ J. Cell Science 108: 3569-3579

Do, S.H., Kwon. K.-S. (2003),

„The Ret finger protein induces apoptosis via ist RING finger-B box coiled-coil motif“

J. Biol. Chem., in press

Dong, Y., Kunze, D.L., Vaca, L, Schilling, W.P. (1995),

„Ins(1,4,5)P3 activates Drosophila cation channel trpl in recombinant baculovirus infected Sf9 insect cells“ Am. J. Physiol. (Cell Physiol.) 269: C1332-C1339

Duncan, L.M., Deeds, J., Cronin, F.E., Donovan, M., Sober, A.J., Kauffman, M., McCarthy, J.J. (2001),

„Melastatin expression and prognosis in cutaneous malignant melanoma“ J. Clin.

Oncol. 19: 568-576

Dye, C.A., Lee, J.K., Atkinson, R.C., Brewster, R., Han, P.L., Bellen, H.J. (1998),

„The Drosophila sanpodo gene controls sibling cell fate and encodes a tropomodulin homolog, an actin/tropomyosin-associated protein“ Development 125: 1845-1856 Elmendorf, J.S., Pessin, J.E. (1999),

„Insulin signaling regulating the trafficking and plasma membrane fusion of the GLUT4-containing intracellular vesicles“ Exp. Cell. Res. 253: 55-62

Engelke, M. (1999),

„Gezielte Mutagenese des Maus-trp1β-Gens zur Charakterisierung funktioneller Domänen“, Diplomarbeit, Universität Bielefeld

Engelke, M., Friedrich, O., Budde, P., Schäfer, C., Niemann, U., Zitt, C., Jüngling, E., Lückhoff, A., Frey, J. (2002),

„Structural domains required for channel function of the mouse transient receptor potential protein homologue TRP1β”, FEBS Lett. 523 (1-3): 193-199

9 Literaturverzeichnis _

Engelke, M. (2003),

„Untersuchung des Einflusses von „Transient Receptor Poteintial“-Proteinen auf den Ca2+-Einstrom in B-Zellen“, Dissertation, Universität Bielefeld

Estacion, M., Sinkins, W.G., Schilling, W.P. (2001),

„Regulation of Drosophila transient recpetor potential-like (TrpL) channels by phospholipase C-dependent mechanisms“ J. Physiol. 530 (1): 1-19

Estojak, J., Brent, R., Golemis, E. (1995),

„Correlation of two-hybrid affinity data with in vitro measurements“ Mol. Cell. Biol.

15: 5820-5828

Fasolato, C., Hoth, M., Penner, R. (1993),

„A GTP-dependent step in the activation mechanism of capacitative calcium influx“ J.

Biol. Chem. 268: 20737-20740

Fang, D. & Setaluri, V. (2000),

„Expression and up-regulation of alternatively spliced transcripts of melastatin, a melanoma metastasis-related gene, in human melanoma cells“ Biochem. Biophys. Res.

Commun. 279: 53-61

Fariss, R.N., Molday, R.S., Fisher, S.K., Matsumoto, B. (1997),

„Evidence from normal and degenerating photoreceptors that two outer segment integral membrane proteins have separat transport pathways“ J. Comp. Neurol. 387:

148-156

Felberbaum-Corti, M., Van Der Goot, F.G., Gruenberg, J. (2003),

„Sliding doors: clathrin-coated pits or caveolae ?“ Nature (Cell Biology) 5: 382-384 Finco, T.S., Kadlecek, T., Zhang, W., Samelson, L.E., Weiss, A. (1998),

„LAT is required for TCR-mediated activation of PLCγ1 and the Ras pathway“

Immunity 9 (5): 617-626

9 Literaturverzeichnis _ Fischer, R.S., Fritz-Six, K.L., Fowler, V.M. (2003),

„Pointed-end capping by tropomodulin3 negatively regulates endothelial cell motility“

J. Cell. Biol. 161: 371-380

Foley, K.P. (1993),

„Quantification of RNA using the Polymerase Chain Reaction“ Trends Genet. 9:

380-385

Fossey, S.C., Kuroda, S., Price, J.A., Pendleton, J.K., Freedman, B.I., Bowden, D.W.

(2000),

„Identification and characterization of PRKCBP1, a candidate RACK-like protein“

Mamm. Genome 11 (10): 919-925

Foucault, I., Liu, Y.C., Bernard, A., Deckert, M. (2002),

„The Chaperone Protein 14-3-3 Interacts with 3BP2/SH3BP2 and Regulates it's Adaptor Function“, J. Biol. Chem. 278 (9): 7146-7153

Fowler, V.M. (1987),

„Identification and Purification of an Novel Mr 43,000 Tropomyosin-binding Protein from Human Erythrocyte Membranes“ J. Biol. Chem. 262 (26): 12792-12800

Fowler, V.M. (1990),

„Tropomodulin: A cytoskeletal protein that binds to the end of erythrocytetropomyosin and inhibits tropomyosin binding to actin“ J. Cell Biol. 111:

471-481 Fowler, V.M. (1996),

„Regulation of actin filament length in erythrocytes and striated muscle.“ Curr. Opin.

Cell Biol. 8: 86-96

Fowler, V.M., Greenfield, N.J., Moyer, J. (2003),

„Tropomodulin contains two actin filament pointed end-capping domains“ J. Biol.

Chem. 278 (41): 40000-40009

9 Literaturverzeichnis _ Fowler, V.M., Sussman, M.A., Miller, P.G., Flucher, B.E., Daniels, M.P. (1993),

„Tropomodulin is associated with the free (pointed) ends of the thin filaments in rat skeletal muscle“ J. Cell. Biol. 120: 411-420

Franzini-Armstrong, C., Jorgensen, A.O. (1994),

„Structure and development of E-C coupling units in skeletal musle“ Annu. Rev.

Physiol. 56: 509-534

Freichel, M., Suh, S.H., Pfeifer, A., Schweig, U., Trost, C., Weissgerber, P., Biel, M., Philipp, S., Freise, D., Droogmans, G., Hofmann, F., Flockerzi, V., Nilius, B. (2001),

„Lack of an endothelial store-operated Ca2+ current impairs agonist-dependent vasorelaxation in TRPC4 -/- mice“ Nature Cell Biol. 3: 121-127

Friedrich, O. (2001),

„Biochemische und funktionelle Charakterisierung des potentiellen Calciumkanalproteins Maus Transient Receptor Potential 1β (mTRP1β)“, Dissertation, Universität Bielefeld

Friel, D.D. (1996),

„TRP: It’s Role in Phototransduction and Store-operated Ca2+ Entry“ Cell 85:

617-619

Funayama, M., Goto, K., Kondo, H. (1996),

„Cloning and expression localization of cDNA for rat homolog of TRP protein, a possible store-operated calcium (Ca2+) channel“ Mol. Brain Res. 43: 259-266

Galvan, D.L., Borrego-Diaz, E., Perez, P.J., Mignery, G.A. (1999),

„Subunit Oligomerization, and Topology of the Inositol 1,4,5-Trisphosphate Receptor“ J. Biol. Chem. 274 (41): 29483-29492

9 Literaturverzeichnis _ Gamberucci, A. Giurisato, E., Pizzo, P., Tassi, M., Giunti, R., McIntosh, D.P., Benedetti, A. (2002),

„Diacylglycerol activates the influx of extracellular cations in T-lymphocytes independently of intracellular calcium-store depletion and possibly involving endogenous TRP6 gene products“ Biochem. J. 364: 245-254

Gao, J., Estrada, L., Cho, S., Ellis, R.E., Gorski, J.L. (2001),

„The Caenorhabditis elegans homolog of FGD1, the human Cdc42 GEF gene responsible for faciogenital dysplasia, is critical for excretory cell morphogenesis“

Human Molecular Genetics 10 (26): 3049-3062

Garcia, R.L., Schilling, W.P. (1997),

„Differential Expression of Mammalian TRP Homologues across Tissues and Cell Lines“ Biochem. Biophys. Res. Commun. 239 (1): 279-283

Gaullier, J.-M., Simonsen, A., D’Arrigo, A., Bremnes, B., Stenmark, H., Aasland, R.

(1998),

„FYVE fingers bind PtdIns(3)P“ Nature 394: 432-433

Gilliland, L.K., Schieven, G.L., Norris, N.A., Kanner, S.B., Aruffo, A., Ledbetter, J.A.

(1992),

„Lymphocyte Lineage-restricted Tyrosine-phosphorylated Proteins That Bind PLCγ1 SH2 Domains“ J. Biol. Chem. 267 (19): 13610-13616

Gillo, B., Chorna, I., Cohen, H., Cook, B., Manistersky, I., Chorev, M., Arnon, A., Pollock, J. A., Selinger, Z., Minke, B. (1996),

„Coexpression of Drosophila TRP and TRP-like proteins in Xenopus oocytes reconstitutes capacitative Ca2+ entry” Proc. Natl. Acad. Sci. USA 93: 14146-14151 Gilon, P., Obie, J.F., Bian, X., Bird, G.S., Putney, J.W. Jr. (1995),

„Role of cyclic GMP in the control of capacitiative Ca2+ entry in rat pancreatic acinar cells“ Biochem. J. 311 (2): 649-656

9 Literaturverzeichnis _ Goel, M., Sinkins, W.G., Schilling, W.P. (2002),

„Selective Association of TRPC Channel Subunits in Rat Brain Synaptosomes“ J.

Biol. Chem. 277 (50): 48303-48310

Golemis, E., Gyuris, J., Brent, R. (1994),

„Interaction trap/two-hybrid systems to identify interacting proteins“ In: Current Protocolls in Molecular Biology, John Wiley & Sons, Inc., Chapter 13-14

Golemis, E., Gyuris, J., Brent, R. (1996),

„Analysis of protein interactions: An Interaction trap/Two-hybrid system to identify interacting proteins“ In: Current Protocolls in Molecular Biology, John Wiley & Sons, Inc., Chapter 20.0 – 20.1

Gregorio, C.C., Weber, A., Bondad, M., Pennise, C.R., Fowler, V.M. (1995),

„Requirement of pointed-end capping by tropomodulin to maintain actin filament length in embryonic chick cardiac myocytes“ Nature (London) 377: 83-86

Gregory, R.B., Barritt, G.J. (1996),

„Store-activated Ca2+ inflow in Xenopus laevis oocytes: inhibition by primaquine and evaluation of the role of membrane fusion“ Biochem. J. 319 (3): 755-760

Greka, A., Navarro, B., Oancea, E., Duggan, A., Clapham, D.E. (2003),

„TRPC5 is a regulator of hippocampal neurite length and growth cone morphology“

Nature Neuroscience 6 (8). 837-845

Grignani, F., Gelmetti, V., Fanelli, M., Rogaia, D., De Matteis, S., Ferrara, F.F., Bonci, D., Nervi, C., Pelicci, P.G. (1999),

„Formation of PML/RARα high molecular weight nuclear complexes through the PML coiled-coil region is essential for the PML/RARα-mediated retinoic acid response“ Oncogene 18: 6313-6321

9 Literaturverzeichnis _ Groschner, K, Hingel, S., Lintschinger, B., Balzer, M., Romanin, C., Zhu, X., Schreibmayer, W. (1998),

„Trp poteins form store-operated cation channels in human vascular endothelial cells“

FEBS Lett. 437: 101-106

Gross, B.S., Melford, S.K., Watson, S.P. (1999),

„Evidence that phospholipase C-gamma2 interacts with SLP-76, Syk, Lyn, LAT and the Fc receptor gamma.chain after stimulation of the collagen receptor glycoprotein VI in human platelets“ Eur. J. Biochem. 263 (3): 612-623

Gunthorpe, M.J., Benham, C.D., Randall, A., Davis, J.B. (2002),

„The diversity in the vanilloid (TRPV) receptor family of ion channels“ Trends Pharmacol. Sci. 23: 183-191

Gyuris, J., Golemis, E., Chertkov, H., Brent, R. (1993),

„Cdi1, a human G1 and S phase protein phosphatase that associates with Cdk2“ Cell 75: 791-803

Habers, M., Nomura, T., Ohno, S., Ishii, S. (2001),

„Intracellular Localization of the Ret Finger Protein Depends on a Functional Nuclear Export Signal and Protein Kinase C Activation“ J. Biol. Chem. 276 (51): 48596-48607 Hagar, R.E., Burgstahler, A.D., Nathanson, M.H., Ehrlich, B.E. (1998),

„Type III InsP3 receptor channel stays open in the presence of increased calcium”

Nature 396: 81-84

Halaszovich, C.R., Zitt, C., Jüngling, E., Lückhoff, A. (2000),

„Inhibition of TRPC3 channels by lanthanides. Block from the cytosolic side of the plasma membrane“ J. Biol. Chem. 275: 37423-37428

Hanahan, D. (1985),

„Techniques for Transformation of E. coli”, In DNA Cloning Volume I: A Practical Approach, Ed. Glover, D.M., pp. 109-135

9 Literaturverzeichnis _ Hardie, R.C., Minke, B. (1992),

„The trp gene is essential for a light-activated Ca2+ channel in Drosophila photoreceptors“ Neuron 8: 643-651

Hardie, R.C., Minke, B. (1993),

„Novel Ca2+ channels underlying transduction in Drosophila photoreceptors:

implications for phosphoinositide-mediated Ca2+ mobilization“ Trends Neurosci. 16:

371-376

Hardie, R.C., Minke, B. (1995)-a,

„Photoinositide-mediated phototransduction in Drosophila photoreceptors: the role of Ca2+ and trp“ Nature 224: 285-287

Hardie, R.C., Minke, B. (1995)-b,

„Phosphoinositide-mediated phototransduction in Drosophila photoreceptors: the role of Ca2+ and trp“ Cell Calcium 18: 256-274

Harteneck, C., Plant, T.D., Schultz, G. (2000),

„From Worm to Man: Three Subfamilies of TRP Channels“ Trends Neurosci. 23: 159-166

Hassock, S.R., Zhu, M.X., Trost, C., Flockerzi. V., Authi, K.S. (2002),

„Expression and role of TRPC proteins in human platelets: evidence that TRPC6 forms the store-independent calcium entry channel“ Blood 100 (8): 2801-2811

Hess, P., Tsien, R.W. (1984),

„Mechanism of ion permeation through calcium channels“ Nature 309: 453-456 Hirota, J., Michikawa, T., Natsume, T., Furuichi, T., Mikoshiba, K. (1999),

„Calmodulin inhibits inositol 1,4,5-trisphosphate-induced calcium release through the purified and reconstituted inositol 1,4,5-trisphosphate receptor type 1” FEBS Lett. 465:

322-326

9 Literaturverzeichnis _ Hoenderop, J.G., van der Kemp, A.W., Hartog, A., van de Graaf, S.F., van Os, C.H., Willems, P.H., Bindels, R.J. (1999),

„Molecular identification of the apical Ca2+ channel in 1,25 Dihydroxyvitamin D3 -responsive epithelia“ J. Biol. Chem. 274: 8375-8378

Hoenderop, J.G., Vennekens, R., Muller, D., Prenen, J., Droogmans, G., Bindels, R.J., Nilius, B. (2001),

„Function and expression of the epithelial Ca(2+) channel family: comparison of mammalian ECaC1 and 2“ J. Physiol. 537 (3): 747-761

Hoenderop, J.G., Nilius, B., Bindels, R.J. (2002),

„ECaC: the gatekeeper of transepithelial Ca2+ transport“ Biochim. Biophys. Acta 1600:

6-11

Hoenderop, J.G.J., Voets, T., Hoefs, S., Weidman, F., Prenen, J., Nilius, B., Bindels, R.J.M. (2003),

„Homo- and heterotetrameric architecture of the epithelial Ca2+ channels TRPCV5 and TRPV6“ EMBO J. 22 (4): 776-785

Hofmann, T., Obukhov, A.G., Schaefer, M., Harteneck, C., Gudermann, T., Schultz, G.

(1999),

„Direct activation of human TRPC6 and TRPC3 channels by diacylglycerol“ Nature 397 (6717): 259-263

Hofmann, T., Schaefer, M., Schultz, G., Gudermann, T. (2000)-a,

„Cloning, expression and subcellular localization of two novel splice variants of mouse transient receptor potential channel 2“ Biochem. J. 351: 115-122

Hofmann, T., Schaefer, M., Schultz, G., Gudermann, T. (2000)-b,

„Transient receptor potential channels as molecular substrates of receptor-mediated cation entry“ J. Mol. Med. 78: 14-25

9 Literaturverzeichnis _ Hofmann, T., Schaefer, M., Schultz, G., Gudermann, T. (2002),

„Subunit composition of mammalian transient receptor potenial channels in living cells“ Proc. Natl. Acad. Sci. USA 99 (11). 7461-7466

Hooper, N.M. (1999),

„Detergent-insoluble glycosphingolipid/cholesterol-rich membrane domains, lipid rafts and caveolae” Mol. Membr. Biol. 16 (2): 145-156

Hoth, M., Penner, R. (1992),

„Depletion of intracellular calcium stores activates a calcium current in mast cells“

Nature 355: 353-356

Hu, Y., Schilling, W.P. (1995),

„Receptor-mediated activation of recombinant trpl expressed in Sf9 cells“ Biochem. J.

305: 605-611

Hu, Y., Vaca, L., Zhu, X., Birnbaumer, L., Kunze, D.L., Schilling, W.P. (1994),

„Apearance of a novel Ca2+-influx pathway in Sf9 insect cells following expression of the transient receptor potential-like (trpl) protein of Drosophila“ Biochem. Biophys.

Res. Commun. 201: 1050-1056

Huang, Y., Putney, J.W. Jr. (1998),

„Relationship between Intracellular Calcium Store Depletion and Calcium Release-activated Calcium Current in a Mast Cell Line (RBL-1)“ J. Biol. Chem. 273 (31):

19554-19559

Hunter, J.J., Shao, J., Smutko, J.S., Dussault, B.J., Nagle, D.L., Woolf, E.A., Holmgren, L.M., Moore, K.J., Shyjan, A.W. (1998),

„Chromosomal localization and genomic characterization of the mouse melastatin gene (Mlsn1)“ Genomics 54: 116-123

Hurst, R.S., Zhu, X., Boulay, G., Birnbaumer, L., Stefani, E. (1998),

„Ionic currents underlying HTRP3 mediated agonist-dependent Ca2+ influx in stably

Im Dokument 1 Abkürzungen und Akronyme (Seite 176-200)