In den eigenen Versuchen wurde deutlich, dass Klinofeed® das Fermentationsgeschehen im Pansen in vitro nicht grundlegend verändert. Allerdings könnten durch den Zeolith möglicherweise bestimmte Stoffwechselwege der Pansen-mikroorganismen bevorzugt ablaufen oder einzelne Arten, die ohne Zeolithzulage das Fermentationsmuster weniger prägen, verbesserte Lebensbedingungen vorfinden und so erkennbare Verschiebungen vor allem der Zusammensetzung der flüchtigen Fettsäuren bewirken. Auch eine negative Wirkung des Zeoliths auf bestimmte Spezies ist vorstellbar. So konnten AVILEZ et al. (2016) zeigen, dass die Zahl lebender Mycobakterien (avium ssp. paratuberculosis) in Rindergülle nach Filtration durch Klinoptilolith-gefüllte Säulen abnimmt. Gerade mit Blick auf die mittels molekularbiologischer Verfahren sich durchsetzende Erkenntnis, dass es im Pansen zwar ein Kernmikrobiom gibt, welches selbst über Wirtsspezies hinweg eine gewisse Konstanz zeigt, es aber dennoch verschiedene Mikroorganismengemeinschaften gibt, die ähnliche Fermentationsmuster hervorbringen können, weil ihre physiologischen Kapazitäten untereinander (teilweise) redundant sind (WEIMER 2015), muss an dieser Stelle eindeutig festgestellt werden, dass es mit den Methoden, die in der vorliegenden Arbeit zur Verfügung standen, nicht möglich war, die festgestellten Wirkungen einer Beeinflussung einzelner Mikroorganismen zuzuschreiben. Auch worin dieser Einfluss auf die Bakterien besteht, kann nicht näher definiert werden. Eine sinnvolle Fortsetzung der eigenen Versuche wäre der Einsatz einer Rusitec-Anlage (rumen simulation technique), da in einem derartigen Ansatz auch fester Panseninhalt und folglich Mikroorganismen der Kompartimente 2 und 3 [2: „Shuttle“-Kompartment, ermöglicht Übergang von Mikroorganismen, Nährstoffen und Fermentationsprodukten zwischen den Kompartimenten 1 und 3,
158 Diskussion
Mikroorganismen sind nicht cellulolytisch aktiv aber lose partikelassoziiert und metabolisch sehr aktiv; 3: fester Panseninhalt, Mikroorganismen partikel-assoziiert, vor allem Cellulolyten, höchste Dichte und metabolische Aktivität der Mikroorganismen (CZERKAWSKI 1986, S. 72–76)] Teil des Inokulums sind. Sowohl die Gemeinschaft der Mikroorganismen als auch das Fermentationssubstrat (z. B.
Grassilage) bilden die In-vivo-Verhältnisse somit besser ab als das hier eingesetzte Kurzzeitsystem. So könnte im Vergleich mit den eigenen Ergebnissen die Annahme, dass Klinofeed® im Pansen hauptsächlich in der flüssigen Phase eine Wirkung entfaltet, überprüft werden. Aufgrund der langen Inkubationsdauer (Wochen) können sich im Rusitec Populationsverschiebungen deutlich manifestieren. Für zukünftige Untersuchungen wäre es in jedem Fall wünschenswert, zum einen die Zusammensetzung der Pansenflora mit und ohne Zeolith zu erfassen und zum anderen sollte versucht werden, die vorherrschenden Bedingungen des Pansenmilieus deutlicher von dem physiologischen Optimalbereich zu entfernen. So ließe sich prüfen, ob sich die milieustabilisierende Wirkung von Klinofeed® reproduzieren bzw. ggf. verstärken lässt und ob sich zum Beispiel bei verändertem pH-Wert eine Ammoniumbindung nachweisen lässt.
Zusammenfassung 159
Kallmeyer, Svenja (2018): Untersuchungen über die Wirkungen von Zeolithzulagen auf die Pansenfermentation des Rindes in vitro
6 Zusammenfassung
Die bedarfsgerechte Fütterung heutiger Milchkühe muss eine stabile Pansenfermentation erzeugen, denn nur so können die Kühe die gewünschten Leistungen erbringen. Um dies sicherzustellen, werden verschiedene Futtermittel-zusatzstoffe eingesetzt, die Unausgewogenheiten oder Mängel der Ration aus-gleichen. Studien zeigen, dass Zeolithe, zum Beispiel Klinoptilolithe, die infolge ihres Aufbaus (negativ geladene Kristallgitter mit für jeden Gittertyp spezifischen Kanälen und Hohlräumen) selektiv Kationen aus dem umgebenden Milieu aufnehmen und vorhandene Kanalkationen durch diese ersetzen können, den Pansenstoffwechsel von Rindern beeinflussen. Aus diesem Grund wurde in der vorliegenden Arbeit die Wirkung von Klinofeed®, einem Klinoptilolith sedimentären Ursprungs, auf die Fermentation im flüssigen Panseninhalt des Rindes, als erstem möglichem Wirkungsort, unter In-vitro-Bedingungen untersucht.
Mit dem verwendeten Kurzzeitsystem nach CZERKAWSKI und BRECKENRIDGE (1969), einem künstlichen Pansen vom geschlossenen Blocktyp, konnten die Fermentationsvorgänge in der flüssigen Phase des Panseninhalts während sechsstündiger Inkubation beurteilt werden. Dazu wurden folgende Parameter an drei Probennahmezeitpunkten (0 h, 3 h, 6 h Inkubationsdauer) erfasst:
Redoxpotential, pH-Wert, Glucosekonzentration, Konzentrationen der flüchtigen Fettsäuren (Essig-, Propion-, n-Butter-, n-Valerian-, Hexan-, i-Butter- und i-Valeriansäure sowie deren Summe), Gasproduktion, Methankonzentration, Ammoniakkonzentration, bakterieller Proteingehalt, Konzentrationen der Nukleobasen (Cytosin, Uracil, Thymin, Guanin, Adenin sowie deren Summe), Protozoenmotilität und Anzahl der Protozoen in Summe sowie differenziert nach Größe. Aus den Messwerten wurde die Größe der Veränderung bzw. die Produktion oder der Verbrauch der Parameter während der Inkubationsintervalle 0–3 h, 3–6 h und 0–6 h errechnet. Zwei Versuche mit unterschiedlicher Klinofeed®-Dosis wurden durchgeführt. Im ersten Versuch wurde an 45 Versuchstagen die der
160 Zusammenfassung
Fütterungsempfehlung entsprechende Menge von 0,34 g Klinofeed® pro Fermenter zugelegt. Im zweiten Versuch (elf Versuchstage) wurde die Dosis auf 0,68 g verdoppelt.
Durch die Zulage von Klinofeed® wurde das Fermentationsmuster in beiden Versuchen moderat verändert und das Milieu stabilisiert (pH-Wert in den Kontrollfermentern niedriger als in den mit Klinofeed® versetzten Zulagefermentern).
Die als Substrat eingesetzte Glucose wurde sowohl in den Kontroll- als auch in den Zulagefermentern bereits innerhalb der ersten drei Inkubationsstunden beinahe vollständig verstoffwechselt, ohne dass in den Zulagefermentern eine Vermehrung der Bakterienmasse (bakterielle Protein- bzw. Nukleobasenproduktionen) gegenüber den Kontrollen belegt werden konnte. Deshalb ist anzunehmen, dass die Steigerungen der Produktion flüchtiger Fettsäuren (Versuch 1: +7,8 % n-Buttersäure;
Versuch 2: +19,3 % Essig-, +8,6 % Propion- und +9,9 % n-Buttersäure, in Summe aller flüchtigen Fettsäuren +8,8 %; jeweils über die Gesamtinkubation und in Relation zur Kontrolle) und der Methanproduktion [Versuch 1 (0–6 h): +14,4 %; Versuch 2 (0–3 h): +12,5 %] durch relative Verschiebungen innerhalb des Pansenmikrobioms und/oder der benutzten Stoffwechselwege hervorgerufen wurden.
Mit den Methoden, die für die eigenen Versuche zur Verfügung standen, war es nicht möglich, den Erklärungsansatz einer Mikrobiomveränderung weiter zu erhärten.
Auch die Klärung des eigentlichen Wirkmechanismus von Klinofeed® im Pansen sollte Gegenstand zukünftiger Untersuchungen sein.
Summary 161
Kallmeyer, Svenja (2018): In vitro studies on the effects of zeolite supplementation on the rumen fermentation of cattle
7 Summary
Feeding today’s dairy cows has to provide for a stable fermentation in the rumen to allow for the desired productivity. Different feed supplements are used to compensate for imbalances or deficiencies of the ration. Studies demonstrate an impact of zeolite supplementation on rumen metabolism. Zeolites – clinoptilolites, for example – are negatively charged tectosilicates with pores and channels specific of each framework type. As a consequence, they can selectively bind cations from the surrounding medium and ion-exchange existing channel cations for them. Therefore, the objective of this study was to examine the effect of Klinofeed®, a clinoptilolite of sedimentary origin, on the fermentation in the fluid phase of the rumen which appears to be the first possible point of action.
An artificial rumen (all-glass, bulk incubation type, closed system) corresponding to the one used by CZERKAWSKI and BRECKENRIDGE (1969) was used.
Fermentation processes in the rumen liquid were analyzed during six hours of incubation. The following parameters were measured at three different sampling times (0 h, 3 h, 6 h of incubation): redox potential, pH value, concentrations of glucose and volatile fatty acids (acetic, propionic, n-butyric, n-valeric, hexanoic, i-butyric, i-valeric acid and their sum), production of fermentation gases, concentrations of methane, ammonia, microbial protein and nucleobases (cytosine, uracil, thymine, guanine, adenine and their sum), protozoal motility, numbers of protozoa (in total and differentiated according to their size). For the incubation intervals 0–3 h, 3–6 h and 0–6 h the magnitude of the changes, the production or the consumption of the parameters were calculated. Two distinct trials with different zeolite dosages were conducted. The first trial consisted of 45 days when 0,34 g Klinofeed® were applied in accordance with the producer’s recommended daily amount per animal. In the course of the second trial (eleven days) the double dose of the clinoptilolite (0,68 g) was added.
The supplementation of Klinofeed® moderately changed the fermentation pattern and
162 Summary
stabilized the environment (pH value lower in the control fermenters) in both trials.
The glucose added as substrate for the microorganisms was almost completely metabolized during the first three hours of incubation under control conditions as well as in the zeolite fermenters without any evidence of an increase in the bacterial matter in the zeolite fermenters (as indicated by the lacking increased production of microbial protein or nucleobases). Hence, it is justified to assume that the increased production of volatile fatty acids (trial 1: +7,8 % n-butyric acid; trial 2: +19,3 % acetic, +8,6 % propionic and +9,9 % n-butyric acid, sum of all measured volatile fatty acids +8,8 %; in each case for the complete incubation and relative to control) and methane [trial 1 (0–6 h): +14,4 %; trial 2 (0–3 h): +12,5 %] was the result of relative shifts in the rumen microbiome and/or of the metabolic pathways that took place.
No further methods were available to substantiate the assumption of a microbiome shift. Neither was the mechanism by which Klinofeed® could influence the microbiome revealed. This gap in knowledge should be closed in future studies.
Schrifttumsverzeichnis 163
8 Schrifttumsverzeichnis
ABOU AKKADA, A. R. (1965):
The metabolism of ciliate protozoa in relation to rumen function.
in: R. W. DOUGHERTY, R. S. ALLEN, W. BURROUGHS, N. L. JACOBSON u. A. D.
McGILLIARD (Hrsg.): Physiology of digestion in the ruminant.
Butterworth, London, S. 335–345 ALLISON, M. J. (1969):
Biosynthesis of amino acids by ruminal microorganisms.
J. Anim. Sci. 29, 797–807 ALLISON, M. J. (1970):
Nitrogen metabolism of ruminal microorganisms.
in: A. T. PHILLIPSON (Hrsg.): Physiology of digestion and metabolism in the ruminant.
Oriel Press, Newcastle upon Tyne, S. 456–473 ALLISON, M. J., u. M. P. BRYANT (1963):
Biosynthesis of branched-chain amino acids from branched-chain fatty acids by rumen bacteria.
Arch. Biochem. Biophys. 101, 269–277
ALLISON, M. J., M. P. BRYANT u. R. N. DOETSCH (1961):
Studies on the metabolic function of branched chain volatile fatty acids, growth factors for Ruminococci. I. Incorporation of isovalerate into leucine.
J. Bacteriol. 83, 523–532 AMES, L. L. Jr. (1960):
The cation sieve properties of clinoptilolite.
Am. Mineral. 45, 689–700 AMES, L. L. Jr. (1961):
Cation sieve properties of the open zeolites chabazite, mordenite, erionite and clinoptilolite.
Am. Mineral. 46, 1120–1131 AMES, L. L. Jr. (1964 a):
Some zeolite equilibria with alkali metal cations.
Am. Mineral. 49, 127–145
164 Schrifttumsverzeichnis
AMES, L. L. Jr. (1964 b):
Some zeolite equilibria with alkaline earth metal cations.
Am. Mineral. 49, 1099–1110 AMES, L. L. Jr. (1968):
Cation exchange properties of heulandite-clinoptilolite series members.
in: D. W. PEARCE u. M. R. COMPTON (Hrsg.): Pacific Northwest Laboratory annual report for 1966 to the USAEC division of biology and medicine, volume II: physical sciences, part 3: earth sciences, BNWL-481-3. Pacific Northwest Laboratory, Richland, Washington, S. 54–59
AMMERMAN, C. B., C. F. CHICCO, J. E. MOORE, P. A. VAN WALLEGHEM u. L. R.
ARRINGTON (1971):
Effect of dietary magnesium on voluntary feed intake and rumen fermentations.
J. Dairy Sci. 54, 1288–1293
ARMBRUSTER, T., u. M. E. GUNTER (2001):
Crystal structures of natural zeolites.
in: D. L. Bish u. D. W. Ming (Hrsg.): Reviews in mineralogy and geochemistry 45:
Natural zeolites: Occurrence, properties, applications.
Mineralogical Society of America, Washington DC, S. 1–67 AUERNHEIMER, O. (1909):
Grössen- und Formveränderungen der Baucheingeweide der Wiederkäuer nach der Geburt bis zum erwachsenen Zustand.
Zürich, Med. vet. Zürich, Diss.
AVGUŠTIN, G., R. J. WALLACE u. H. J. FLINT (1997):
Phenotypic diversity among ruminal isolates of Prevotella ruminicola: Proposal of Prevotella brevis sp. nov., Prevotella bryantii sp. nov., and Prevotella albensis sp.
nov., and redefinition of Prevotella ruminicola.
Int. J. Syst. Bacteriol. 47, 284–288
AVILEZ, C., C. VERDUGO, O. MARTINEZ, C. ENCINA, F. SALAZAR, M. ALFARO, M. T. COLLINS u. M. SALGADO (2016):
Effectiveness of clinoptilolite zeolite for Mycobacterium avium subsp.
paratuberculosis (MAP) control in dairy slurry.
Mycobact. Dis. 6, 226
Schrifttumsverzeichnis 165
BAERLOCHER, C., u. L. B. McCUSKER (2016):
Database of Zeolite Structures:
http://www.iza-structure.org/databases (Modell erstellt am 16.02.2018) BAERLOCHER, C., L. B. McCUSKER u. D. H. OLSON (2007):
Atlas of zeolite framework types.
6. Aufl., Elsevier, Amsterdam, S. 6
BALDWIN, R. L., u. M. J. ALLISON (1983):
Rumen metabolism.
J. Anim. Sci. 57, (Suppl.), 461–477
BALLARD, R., u. H. M. Jr. EDWARDS (1988):
Effects of dietary zeolite and vitamin A on tibial dyschondroplasia in chickens.
Poult. Sci. 67, 113–119 BECKER, J. (1994):
Untersuchungen zum Einfluß eines Pansenstimulans auf ruminale Fermentationsvorgänge des Rindes (in-vitro).
Hannover, tierärztl. Hochsch., Diss.
BEEVER, D. E. (1993):
Rumen function.
in: J. M. FORBES u. J. FRANCE (Hrsg.): Quantitative aspects of ruminant digestion and metabolism.
CAB International, Wallingford, S. 187–215
BERGERO, D., G. RUMELLO, C. SARRA u. A. D’ANGELO (1997):
Effect of natural clinoptilolite or phillipsite in the feeding of lactating dairy cows.
in: G. KIROV, L. FILIZOVA u. O. PETROV (Hrsg.): Natural Zeolites-Sofia’95 Pensoft, Sofia, Moskau, S. 67–72
BERGNER, H., u. L. HOFFMANN (1996):
Bioenergetik und Stoffproduktion landwirtschaftlicher Nutztiere.
Harwood Academic Publishers, Chur, Amsterdam, S. 23–46 BERGMAN, E. N. (1990):
Energy contributions of volatile fatty acids from the gastrointestinal tract in various species.
Physiol. Rev. 70, 567–590
166 Schrifttumsverzeichnis
BISH, D. L., u. J. M. BOAK (2001):
Clinoptilolite-heulandite nomenclature.
in: D. L. BISH u. D. W. MING (Hrsg.): Reviews in mineralogy and geochemistry 45:
Natural zeolites: Occurrence, properties, applications.
Mineralogical Society of America, Washington DC, S. 207–216 BLANCHARD, G., M. MAUNAYE u. G. MARTIN (1984):
Removal of heavy metals from waters by means of natural zeolites.
Water Res. 18, 1501–1507
BOSI, P., D. CRESTON u. L. CASINI (2002):
Production performance of dairy cows after the dietary addition of clinoptilolite.
Ital. J. Anim. Sci. 1, 187–195 BRADFORD, M. M. (1976):
A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding.
Anal. Biochem. 72, 248–254
BRENT, B. E., A. ADEPOJU u. F. PORTELA (1971):
In vitro inhibition of rumen urease with acetohydroxamic acid.
J. Anim. Sci. 32, 794–798
BREVES, G., u. H. HÖLLER (1989):
Phosphorus deficiency in ruminants: interrelation between dietary phosphorus supply and gastrointestinal metabolism.
in: Recent progress on mineral nutrition and mineral requirements in ruminants.
Proceedings of the international meeting on mineral nutrition and mineral requirements in ruminants.
Showado Insabu, Kyoto, S. 3–4 BROBERG, G. (1957 a):
Measurements of the redox potential in rumen contents. I. In vitro measurements on healthy animals.
Nord. Vet.-Med. 9, 918–930 BROBERG, G. (1957 b):
Measurements of the redox potential in rumen contents. III. Investigations into the effect of oxygen on the redox potential and quantitative in vitro determinations of the capacity of rumen contents to consume oxygen.
Nord. Vet.-Med. 9, 942–950
Schrifttumsverzeichnis 167
BRODERICK, G. A. (1995):
Desirable characteristics of forage legumes for improving protein utilization in ruminants.
J. Anim. Sci. 73, 2760–2773.
BRODERICK, G. A., u. J. E. BALTHROP (1979):
Chemical inhibition of amino acid deamination by ruminal microbes in vitro.
J. Anim. Sci. 49, 1101–1111
BRODERICK, G. A., R. J. WALLACE u. E. R. ØRSKOV (1991):
Control of rate and extent of protein degradation.
in: T. TSUDA, Y. SASAKI u. R. KAWASHIMA (Hrsg.): Physiological aspects of digestion and metabolism in ruminants. Proceedings of the seventh international symposium on ruminant physiology.
Academic Press, San Diego, New York, S. 541–592 BRYANT, M. P. (1970):
Normal flora-rumen bacteria.
Am. J. Clin. Nutr. 23, 1440–1450
BRYANT, M. P., u. L. A. BURKEY (1953):
Cultural methods and some characteristics of some of the more numerous groups of bacteria in the bovine rumen.
J. Dairy Sci. 36, 205–217
BULL, L. S., L. J. BUSH, J. D. FRIEND, B. Jr. HARRIS u. E. W. JONES (1965):
Incidence of ruminal parakeratosis in calves fed different rations and its relation to volatile fatty acid absorption.
J. Dairy Sci. 48, 1459–1466
CALDWELL, D. R., u. M. P. BRYANT (1966):
Medium without rumen fluid for non-selective enumeration and isolation of rumen bacteria.
Appl. Microbiol. 14, 794–801
CALSAMIGLIA, S., A. FERRET u. M. DEVANT (2002):
Effects of pH and pH fluctuations on microbial fermentation and nutrient flow from a dual-flow continuous culture system.
J. Dairy Sci. 85, 574–579
168 Schrifttumsverzeichnis
CAREY, D. A., J. S. CATON u. M. BIONDINI (1993):
Influence of energy source on forage intake, digestibility, in situ forage degradation, and ruminal fermentation in beef steers fed medium-quality brome hay.
J. Anim. Sci. 71, 2260–2269 CHALUPA, W. (1975):
Rumen bypass and protection of proteins and amino acids.
J. Dairy Sci. 58, 1198–1218 CHALUPA, W. (1976):
Degradation of amino acids by the mixed rumen microbial population.
J. Anim. Sci. 43, 828–834
CHELISHCHEV, N. F., B. G. BERENSHTEIN, T. A. BERENSHTEIN, N. K.
GRIBANOVA u. N. S. MARTYNOVA (1973):
Ion-exchange properties of minerals.
Dokl. Akad. Nauk SSSR 210, 1110–1112
CHU, C. P., D. J. LEE, B.-V. CHANG, C. H. YOU, C. S. LIAO u. J. H. TAY (2003):
Anaerobic digestion of polyelectrolyte flocculated waste activated sludge.
Chemosphere 53, 757–764
CHUNG, Y.-C., u. J. B. NEETHLING (1988):
ATP as a measure of anaerobic sludge digester activity.
J. Water Pollut. Control Fed. 60, 107–112 COLEMAN, G. S. (1980):
Rumen ciliate protozoa.
Adv. Parasitol. 18, 121–173
COLUCCI, P. E., G. K. MACLEOD, W. L. GROVUM u. I. McMILLAN (1984):
Comparative digestion and digesta kinetics in sheep and cattle.
Can. J. Anim. Sci. 64, (Suppl.), 173–174 COOK, A. R. (1976):
Urease activity in the rumen of sheep and the isolation of ureolytic bacteria.
J. Gen. Microbiol. 92, 32–48
Schrifttumsverzeichnis 169
COOMBS, D. S., A. ALBERTI, T. ARMBRUSTER, G. ARTIOLI, C. COLELLA, E.
GALLI, J. D. GRICE, F. LIEBAU, J. A. MANDARINO, H. MINATO, E. H. NICKEL, E.
PASSAGLIA, D. R. PEACOR, S. QUARTIERI, R. RINALDI, M. ROSS, R. A.
SHEPPARD, E. TILLMANNS u. G. VEZZALINI (1997):
Recommended nomenclature for zeolite minerals: report of the subcommittee on zeolites of the International Mineralogical Association, Commission on new Minerals and Mineral names.
Can. Mineral. 35, 1571–1606 CZERKAWSKI, J. W. (1986):
Introduction to rumen studies.
1. Aufl., Pergamon Press, Oxford, New York, S. 45, 51–59, 72–76, 102, 173–177 CZERKAWSKI, J. W., u. G. BRECKENRIDGE (1969):
The fermentation of sugar-beet pulp and sucrose in an artificial rumen, and the effect of linseed oil fatty acids on the fermentation.
Br. J. Nutr. 23, 51–66
DADO, R. G., u. M. S. ALLEN (1995):
Intake limitations, feeding behavior, and rumen function of cows challenged with rumen fill from dietary fiber or inert bulk.
J. Dairy Sci. 78, 118–133
DANIELS, L., R. SPARLING u. G. D. SPROTT (1984):
The bioenergetics of methanogenesis.
Biochim. Biophys. Acta. 768, Nr. 2, 113–163
DANN, H. M., G. A. VARGA u. D. E. PUTNAM (1999):
Improving energy supply to late gestation and early postpartum dairy cows.
J. Dairy Sci. 82, 1765–1778
De CAMPENEERE, S., J. L. De BOEVER, J. M. VANACKER, W. MESSENS u. D. L.
De BRABANDER (2009):
Feeding measures to reduce nitrogen excretion in dairy cattle.
Arch. Anim. Nutr. 63, 87–103
DEUSCH, S., A. CAMARINHA-SILVA, J. CONRAD, U. BEIFUSS, M.
RODEHUTSCORD u. J. SEIFERT (2017):
A structural and functional elucidation of the rumen microbiome influenced by various diets and microenvironments.
Front. Microbiol. 8, 1605
170 Schrifttumsverzeichnis
DIRKSEN, A. (1990):
Untersuchungen zum Einfluß von Magnesiumoxid auf die Fermentationsvorgänge im Pansensaft des Rindes (in vitro).
Hannover, tierärztl. Hochsch., Diss DIRKSEN, G. (1985):
Der Pansenacidose-Komplex – neuere Erkenntnisse und Erfahrungen.
Tierärztl. Prax. 13, 501–512
DSCHAAK, C. M., J.-S. EUN, A. J. YOUNG, R. D. STOTT u. S. PETERSON (2010):
Effects of supplementation of natural zeolite on intake, digestion, ruminal fermentation, and lactational performance of dairy cows.
The Professional Animal Scientist 26, 647–654.
DURAND, M., u. R. KAWASHIMA (1980):
Influence of minerals in rumen microbial digestion.
in: Y. Ruckebusch u. P. Thivend (Hrsg.): Digestive physiology and metabolism in ruminants. Proceedings of the 5th international symposium on ruminant physiology, Clermont-Ferrand, 3.–7. Sept., 1979,
MTP Press, Lancaster, S. 375–408
DURAND, M., A. BOXEBELD, C. DUMAY u. P. BEAUMATIN (1983):
Influence of the level of dietary phosphorus on urea utilization by rumen microorganisms in lambs.
in: M. ARNAL, R. PION u. D. BONIN (Hrsg.): Protein metabolism and nutrition.
Proceedings of the 4th international symposium, volume II (communications).
INRA, Paris, S. 263–266
DURAND M., J. STEVANI u. S. KOMISARCZUK (1987):
Effect of some major minerals on rumen microbial metabolism in a semi-continuous fermentor (Rusitec).
Med. Fac. Landbouw. Rijksuniv. Gent. 52, 1655–1663 EADIE, J. M., u. S. O. MANN (1970):
Development of the rumen microbial population: high starch diets and instability.
in: A. T. PHILLIPSON (Hrsg.): Physiology of digestion and metabolism in the ruminant.
Oriel Press, Newcastle upon Tyne, S. 335–347
Schrifttumsverzeichnis 171
EFSA (2013):
Scientific opinion on the safety and efficacy of clinoptilolite of sedimentary origin for all animal species.
EFSA Journal 11, 3039–3052
ELLIOT, M. A., u. H. M. Jr. EDWARDS (1991):
Comparison of the effects of synthetic and natural zeolite on laying hen and broiler chicken performance.
Poult. Sci. 70, 2115–2130 FELDMANN, M. (1992):
Auswirkungen von Aktivkohle auf Fermentationsvorgänge im Pansensaft des Rindes (in vitro).
Hannover, tierärztl. Hochsch., Diss.
FENNER, H., R. A. Jr. DAMON u. H. D. BARNES (1970):
Effects of a stepwise replacement of hay with corn silage on pH, some organic metabolites, and their changes in the rumen fluid of the bovine after feeding.
J. Dairy Sci. 53, 1568–1577
FERNÁNDEZ, N., S. MONTALVO, F. FERNÁNDEZ-POLANCO, L. GUERRERO, I.
CORTÉS, R. BORJA, E. SÁNCHEZ u. L. TRAVIESO (2007):
Real evidence about zeolite as microorganisms immobilizer in anaerobic fluidized bed reactors.
Process Biochem. 42, 721–728 FIGUEIREDO, M. P. de (1994):
Auswirkungen therapeutischer Gaben unterschiedlicher Hefezubereitungen (Saccharomyces cerevisae) auf die Fermentationsvorgänge im azidotischen Pansensaft (in vitro).
Hannover, tierärztl. Hochsch., Diss.
FILIPPIDIS, A., A. GODELITSAS, D. CHARISTOS, P. MISAELIDES u. A. KASSOLI-FOURNARAKI (1996):
The chemical behavior of natural zeolites in aqueous environments: interactions between low-silica zeolites and 1 M NaCl solutions of different initial pH-values.
Appl. Clay Sci. 11, 199–209.
FIRKINS, J. L. (1996):
Maximizing microbial protein synthesis in the rumen.
J. Nutr. 126, (Suppl.), 1347–1354
172 Schrifttumsverzeichnis
FIRKINS, J. L., u. Z. YU (2006):
Characterisation and quantification of the microbial populations in the rumen.
in: K. SEJRSEN, T. HVELPLUND u. M. O. NIELSEN (Hrsg.): Ruminant physiology, digestion, metabolism and impact of nutrition on gene expression, immunology and stress.
Wageningen Academic Publisher, Wageningen, S. 19–54
FRATRIĆ, N., V. STOJIĆ, D. JANKOVIĆ, H. ŠAMANC u. D. GVOZDIĆ (2005):
The effect of a clinoptilolite based mineral adsorber on concentrations of immunoglobulin G in the serum of newborn calves fed different amounts of colostrum.
Acta Vet. (Beogr.) 55, 11–21
FRATRIĆ, N., V. STOJIĆ, V. RAJCIĆ u. B. RADOJIČIĆ (2007):
The effect of mineral adsorbent in calf diet colostrum on the levels of serum immunoglobulin G, protein and glucose.
Acta Vet. (Beogr.) 57, 169–180 FÜRLL, M. (2005):
Spezielle Untersuchungen beim Wiederkäuer.
in: W. KRAFT u. U. M. DÜRR (Hrsg.): Klinische Labordiagnostik in der Tiermedizin.
6. Aufl., Schattauer, Stuttgart, New York, S. 444–471 GÄBEL, G. (1990):
Pansenacidose: Interaktionen zwischen den Veränderungen im Lumen und in der Wand des Pansens.
Übers. Tierernährung 18, 1–38
GALLERT, C., S. BAUER u. J. Winter (1998):
Effect of ammonia on the anaerobic degradation of protein by a mesophilic and thermophilic biowaste population.
Appl. Microbiol. Biotechnol. 50, 495–501 GALYEAN, M. L., u. R. C. CHABOT (1981):
Effects of sodium bentonite, buffer salts, cement kiln dust and clinoptilolite on rumen characteristics of beef steers fed a high roughage diet.
J. Anim. Sci. 52, 1197–1204
Schrifttumsverzeichnis 173
GARDNER, R. G., J. E. WELLS, J. B. RUSSELL u. D. B. WILSON (1995):
The effect of carbohydrates on the expression of the Prevotella ruminicola 1,4-β-D-endoglucanase.
FEMS Microbiol. Lett. 125, 305–310
GASA, J., K. HOLTENIUS, J. D. SUTTON, M. S. DHANOA u. D. J. NAPPER (1991):
Rumen fill and digesta kinetics in lactating Friesian cows given two levels of concentrates with two types of grass silage ad lib.
Br. J. Nutr. 66, 381–398
GRABHERR, H., M. SPOLDERS, P. LEBZIEN, L. HÜTHER, G. FLACHOWSKY, M.
FÜRLL u. M. GRÜN (2009):
Effect of zeolite A on rumen fermentation and phosphorus metabolism in dairy cows.
Arch. Anim. Nutr. 63, 321–336
GRANT, R. H., u. D. R. MERTENS (1992):
Influence of buffer pH and raw corn starch addition on in vitro fiber digestion kinetics.
J. Dairy Sci. 75, 2762–2768 GAST, A. (2010):
Untersuchungen zum Einfluss von Grassilagen mit unterschiedlichen Reineiweißgehalten auf die Protozoengehalte im Pansensaft (in vitro).
Untersuchungen zum Einfluss von Grassilagen mit unterschiedlichen Reineiweißgehalten auf die Protozoengehalte im Pansensaft (in vitro).