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3. Eigene Untersuchungen 1 Versuchsziel

5.6 Kritische Betrachtung der Versuchsanstellung .1 Das RUSITEC-System

5.6.4 Mögliche Ursachen für ausbleibende Wirkungen der DCAB-Salze in-vitro

In dieser Untersuchung konnten nur geringfügige Effekte auf den Kohlenhydratstoffwechsel beobachtet werden, so daß man sich fragen muß, ob die gewählte Versuchsanstellung oder aber auch das RUSITEC-System überhaupt erkennbare Veränderungen zulassen würden. In diesem Zusammenhang ergeben sich folgende Überlegungen:

a) Überdimensionierte Pufferflußrate (s. Kap. 3.2.1.2 und Tabb. 9.76 - 78 Überstands-volumina), die zu einem zu hohen Verdünnungseffekt in den Fermentern führte

Diese Frage muß an in-vivo-Bedingungen gemessen werden. Im Pansen beträgt die Turn-over-Rate der flüssigen Phase (Kompartiment I) zwischen 100 und 150 % (CZERKAWSKI u.

BRECKENRIDGE 1977), das bedeutet bei einem flüssigen Inhalt von 45 – 60 l (KRAMER 1993) 45 – 90 l. Die Puffermenge in dieser Untersuchung betrug durchschnittlich 450 ml/Tag (s. Tabb. 9.76 – 9.78) bei einem Fermenterinhalt von 1 l. Die Turn-over-Rate dieses Versuchs lag folglich bei ca. 50 % und war somit um durchschnittlich 50 - 66 % niedriger als die eines Rindes.

Hieraus wird ersichtlich, daß die Pufferflußrate nicht zu einem zu hohen Verdünnungseffekt führte.

b) Unterdimensionierte Zulagen an DCAB-Salzen

Auch hier ist zu überlegen, inwieweit die in-vivo-Bedingungen simuliert wurden. Die verwendeten Mengen der zugelegten Salzlösungen wurden mit Hilfe eines Programms des Instituts für Tierernährung der Tierärztlichen Hochschule Hannover berechnet. Dabei wurden nach einer Futtermittelanalyse durch das Institut die benötigten Mengen an Salzen pro kg TS Gesamtration berechnet und dann auf die den RUSITEC-Fermentern tatsächlich zugelegte Futter-TS-Menge umgerechnet. Diese betrug im Fermenter insgesamt 13,4 g TS/Tag (12 g Heu mit 870 g TS/kg und 3,4 g Kraftfutter mit 877 g TS/kg; s. Tabb. 3.4 und 3.5). So wurde z. B. mit Hilfe des Programms nach Eingabe der analysierten ionischen Futterinhaltsstoffe für eine Gesamtration mit - 100 meq/kg TS eine benötigte Tagesmenge an NH4Cl von 15,2 g/kg

TS und an MgSO4 von 7,60 g/kg TS berechnet. Umgerechnet auf einen Fermenter sind das 0,20 g NH4Cl und 0,10 g MgSO4 am Tag (s. Tab. 3.6). Die Menge ist also mit in-vivo-Verhältnissen vergleichbar.

Hierbei werden Werte um - 150 meq/kg TS empfohlen (KAMPHUES 1996). In der vorliegenden Arbeit wurden Werte von - 100, - 200 und - 300 meq/kg TS erreicht. Obwohl mit - 300 meq/kg TS ungewöhnlich hohe Anionenkonzentrationen erreicht wurden, ergaben sich keine Effekte. Eine zu niedrige Dosierung ist somit als Ursache für ausbleibende Effekte auszuschließen.

c) Unphysiologisch stabiles Pansenmilieu in vitro

Die pH-Werte in den Fermentern variierten um maximal 0,05 Einheiten (s. Kap. 4.1). Das kann an der ungewöhnlich hohen Pufferkapazität des verwendeten Puffers liegen. Deshalb wurden die verwendeten DCAB-Salze ohne Einfluß des RUSITEC-Puffers getestet (in Wasser).

Die Zugabe von CaCl2, CaSO4 und MgSO4-Salzlösung (- 100 meq/kg TS; Rezept s. Kap. 3.3) in bis zu 10-fach höherer Dosierung (50 ml) gegenüber dem eigenen Versuch führte zu keinerlei pH-Wert-Erniedrigung (Anfangswert: pH 7,62; Endwert: pH 7,65). Nach Zulage von 50 ml Salzlösung mit – 300 meq/kg TS sank der pH-Wert von 7,65 auf 7,51. NH4Cl und MgSO4-Zulage (10-fach überdosiert) bewirkten eine Absenkung des pH-Werts von 7,60 auf 7,14 (- 100 meq/kg TS) bzw. von 7,74 auf 7,06 (- 300 meq/kg TS; s. Tabb. 9.84 - 87).

Insofern waren in einem gepufferten Milieu von vornherein keine gravierende Abweichungen von dem vorgegebenen pH zu erwarten gewesen.

d) Einfluß einzelner Salze

Schließlich muß dem möglichen direkten Einfluß der zugesetzten anionischen Salze nachgegangen werden.

Die Ionen Mg2+, Ca2+, SO42-, NH4+ und Cl- kommen natürlicherweise im Pansen vor. Die Mg2+- und Ca2+-Ionenkonzentrationen bewegen sich zwischen 1 bis 10 mmol/l (BREVES et al. 2000). Durch Zulage dieser Salze erhöhten sich in der vorliegenden Untersuchung die Magnesiumkonzentrationen von 1,6 auf 2,4 mmol/l (entsprechend von 0,8 auf 1,2 mmol/Tag;

s. Kap. 4.15; näheres s. Kap. 5.4.1.1 und 5.4.1.3). Die Calciumkonzentrationen stiegen um 0,8 mmol/l auf 1,6 mmol/l (entsprechend von 0,4 auf 0,8 mmol/Tag; s. Kap. 4.16). Da diese Erhöhungen im physiologischen Bereich blieben, ist von keiner speziellen Wirkung dieser Ionen auszugehen.

SO42- wurde nicht gemessen (s. Kap. 5.4.1.3). Die NH4+-Konzentrationen zeigten nach Zugabe kaum Veränderung (persönliche Mitteilung CHAWANIT 2002). Die Cl- -Konzentrationen bewegten sich mit 18 bis 28 mmol/l nicht wesentlich oberhalb der physiologischen (10 – 20 mmol/l; BREVES et al. 2000; näheres s. Kap. 5.4.1.3 und 5.5).

Zusammenfassend kann somit weitgehend ausgeschlossen werden, daß ein unnatürlich stabiles Pansenmilieu oder aber unrealistische Zulagen für ausgebliebene Effekte verantwortlich zu machen sind.

Müller-Özkan, E. (2002): Untersuchungen zu möglichen Auswirkungen anionenreicher Futterzusätze auf den Kohlenhydratstoffwechsel im Pansen des Rindes (in vitro)

6. Zusammenfassung

Ziel des Versuchs mit dem Langzeitinkubationssystem RUSITEC war, die Wirkung von DCAB-Diäten (Ammoniumchlorid und Magnesiumsulfat bzw. Calciumchlorid, Calciumsulfat und Magnesiumsulfat, jeweils - 100, - 200 und - 300 meq/kg TS) auf die ruminale in-vitro-Fermentation zu untersuchen. Hierbei war der Kohlenhydratstoffwechsel von besonderem Interesse.

Es wurden sechs Versuchsläufe mit einer Dauer von jeweils 27 Tagen durchgeführt. Jeder Versuchslauf gliederte sich in eine Vorlaufphase (9 Tage), eine Zulagephase (10 Tage), in der die DCAB-Salze zugelegt wurden, und eine Nachlaufphase (8 Tage).

Zur Kontrolle der Fermentation wurden folgende Parameter bestimmt: pH-Wert, Gasproduktion und -zusammensetzung sowie flüchtige Fettsäuren.

Gasproduktion, Kohlendioxidproduktion, Gesamtproduktion flüchtiger Fettsäuren, Essigsäure-, Propionsäure- und i-Buttersäureproduktion wurden weder durch Zulagen von Ammoniumchlorid und Magnesiumsulfat noch durch Calciumchlorid-, Calciumsulfat- und Magnesiumsulfat-Zugabe beeinflußt.

Auf die in Tab. 6.1 aufgeführten Werte hatten die DCAB-Salze folgende Einflüsse:

Tab. 6.1: Veränderungen ruminaler Fermentationsparameter durch Ammoniumchlorid und Magnesiumsulfat bzw. Calciumchlorid, Calciumsulfat und Magnesiumsulfat (maximaler %ualer Unterschied zur Kontrolle während der gesamten Zulagephase)

i-Valeriansäureproduktion - 13,9 (p < 0,05) - 12,6 n-Valeriansäureproduktion - 4,58 - 6,04

Hexansäureproduktion - 15,8

---+ = Anstieg, - = Abfall, --- = keine Veränderung

* = Einheiten

Beide DCAB-Salze bewirkten eine selektive Förderung Valin, Leucin und Isoleucin bildender Bakterien (Rückgang der Valeriansäureproduktion, davon i-Valeriansäure nach NH4Cl- und MgSO4-Zulage schwach signifikant). Das Gesamtverhältnis von Proteolyse zu Protein-synthese blieb jedoch gleich (i-Buttersäureproduktion war unverändert). Tendenziell schädigten die Calciumionen selektiv n-Buttersäure-produzierende Bakterien (Rückgang der n-Buttersäureproduktion) und Methanbildner (Rückgang der Methanproduktion).

Es gab keine Anhaltspunkte für eine Beeinflussung des Kohlenhydratstoffwechsels durch die DCAB-Salze: Weder Essigsäure-, CO2-, Propionsäure-, Gesamt-FlFS-Produktion noch das Profil der flüchtigen Fettsäuren zeigten Veränderungen.

Die Gabe von DCAB-Salzen ist somit ohne wesentliche Wirkung auf die Pansenfermentation.

Müller-Özkan, E. (2002): Investigations of the effects of anion rich diets on the carbohydrate metabolism in the bovine rumen (in vitro)

7. Summary

Aim of the study with the long term simulation technique (RUSITEC) was the investigation of the effect of DCAB diets (ammonium chloride and magnesium sulphate or calcium chloride, calcium sulfate and magnesium sulfate, of in each case - 100, - 200 and - 300 meq/kgTS) on in-vitro-fermentation. The carbohydrate metabolism was of special interest.

Each of the six experiments lasted 27 days with a preliminary phase of 9 days, a test phase of 10 days with DCAB-salts and a regeneration phase of 8 days. To check fermentation, pH, gas production and content as well as volatile fatty acids were measured.

Neither gas production, carbon dioxide production, total production of volatile fatty acids, acetate production, propionate production nor i-butyrate production were influenced by NH4Cl and MgSO4 or CaCl2, CaSO4 and MgSO4.

The following table shows the changes that have been caused by DCAB salts.

Table 7.1: Changes of ruminal fermentation patterns influenced by NH4Cl and MgSO4 or CaCl2, CaSO4 and MgSO4 (in max. % difference to control)

parameter NH4Cl and MgSO4 CaCl2, CaSO4 and MgSO4

pH + 0,05* (p < 0,05)

---methane production --- - 8.29

n-butyrate production --- - 5.17

i-valeriate production - 13.9 (p < 0,05) - 12.6

n-valeriate production - 4.58 - 6.04

hexanoic acid production - 15.8

+ means increase, - means decrease, --- means no difference * units

Both DCAB salts caused a selective increase of valine, leucine and isoleucine producing bacteria (decrease of valeriate production, with i-valeriat after supplement of NH4Cl and MgSO4 p < 0,05). However, the total proportion of proteolysis to protein synthesis stays the same (i-butyrat was unchanged). The calcium ions had a tendency to damage n-butyrate producing bacteria (decrease of n-butyrate production) and methane producing bacteria (decrease of methane production). There are no hints of an influence of DCAB on carbohydrate metabolism: Neither acetate production, CO2 production, total production of volatile fatty acids nor the ratio of volatile fatty acids changed.

Consequently, adding DCAB salts has no significant effect on rumen fermentation.

8. Schrifttumsverzeichnis

ABE, M., Y. SHIBUI, T. IRIKI u. N. TOBE (1981):

Sequestration of holotrich protozoa in the reticulo-rumen of cattle.

Appl. Environ. Microbiol. 41, 758 – 765

ABOU AKADA, A. R., u. B. H. HOWARD (1960):

The biochemistry of rumen protozoa. 3. The carbohydrate metabolism of Entodinium.

Biochem. J. 76, 445 – 451

ANNISON, E. F., u. D. LEWIS (1959):

Metabolism in the Rumen.

Methuen u. Co., New York, London

ARCHIBALD, F. S., u. I. FRIDOVICH (1981):

Manganese and defenses against oxygen toxicity in Lactobacillus plantarum.

J. Bacteriol. 145, 442 – 451

ASADA, K., S. KANEMATSU, S. OKAKA u. T. HAYAKAWA (1980):

Phylogenetic distribution of three types of superoxide dismutase in organisms and in cell organells.

in: BANNISTER, J. V., u. H. A. O. HILL (Hrsg.):

Chemical and biochemical aspects of superoxide and superoxide dismutase.

Dev. Biochem. 11 A

Elsevier, New York, 136 – 153

BABIOR, B. M., J. T. CURNUTTE u. R. S. KIPNES (1975):

Biological defense mechanisms. Evidence for the participation of superoxide in bacterial killing by xanthine oxidase.

J. Lab. Clin. Med. 85, 235 – 244

BALDWIN, R. L., u. R. S. EMERY (1959):

Investigation of the oxidation-reduction potential of rumen contents.

J. Dairy Sci. 42, 914

BALDWIN, R. L., u. R. S. EMERY (1960):

The oxidation-reduction potential of rumen contents.

J. Dairy Sci. 43, 506 – 511

BARNETT, A. J. G., u. R. L. REID (1961):

Reaktions in the rumen.

Verlag Arnold, London, S. 12 – 14, 99 – 101 BARRON, E. S. G. (1955):

Oxidation of some oxidation-reduction systems by oxygen at high pressures.

Arch. Biochem. Biophys. 59, 502 – 510

BARRY, T. N., A. THOMPSON u. D. G. ARMSTRONG (1977):

Rumen fermentation studies on two contrasting diets.

1. Some characteristics of the in vivo fermentation, with special reference to the composition of the gas phase, oxidation/reduction state and volatile fatty acid proportions.

J. Agric. Sci. 89, 183 – 195 BAUCHOP, T. (1979):

Rumen anaerobic fungi of cattle and sheep.

Appl. Environ. Microbiol. 38, 148 – 158

BAUCHOP, T., u. D. O. MOUNTFORT (1981):

Cellulose fermentation by a rumen anaerobic fungus in both the absence and presence of rumen methanogens.

Appl. Environ. Microbiol. 42, 1103 – 1110 BEAUCHAMP, C., u. I. FRIDOVICH (1971):

Superoxide dismutase: improved assays and an assay applicable to acrylamide gels.

Analytical Biochem. 44, 276 – 287 BECKER, J. (1994):

Untersuchungen zum Einfluß eines Pansenstimulans auf ruminale Fermentationsvorgänge des Rindes (in-vitro).

Hannover, Tierärztl. Hochsch., Diss.

BEEDE, D. K. (1992):

The DCAB concept: Transition rations for dry pregnant cows.

Feedstuffs, Dec 28, 14 – 19 BEENING, S. (1998):

Untersuchungen zu den Effekten einer Veränderung des Kationen-Anionen-Verhältnisses (DCAB) in Wiederkäuerrationen auf Parameter des Säuren-Basen-Status und auf die Mineralstoffbilanz.

Hannover, Tierärztl. Hochsch., Diss.

BENTZEN, G., u. H. LARSEN (1989):

Oxygen activation and defence against oxygen toxicity in a psychrophilic bacteroidaceae.

Arch. Microbiol. 151, 95 – 100 BLOCK, E. (1994):

Manipulation of dietary cation-anion difference on nutritionally related production diseases, productivity, and metabolic reponses of dairy cows.

J. Dairy Sci. 77, 1437 – 1450

BORS, W., C. MICHEL u. M. SARAN (1979):

Superoxide anions do not react with hydroperoxides.

FEBS Lett. 107 (2), 403 – 406

BORS, W., M. SARAN u. G. CZAPSKI (1980):

The natures of intermediates during biological oxygen activation.

in: BANNISTER, W. H., u. J. V. BANNISTER:

Biological and clinical aspects of superoxide and superoxide dismutase.

Dev. Biochem. 11 B Elsevier, New York, 1 – 31 BRAY, A. C. (1969):

Sulphur metabolism in sheep. II. The absorption of inorganic sulphate and inorganic sulphide from the sheep`s rumen.

Aust. J. agric. Res. 20, 739 – 748

BREVES, G., C. PRAECHTER u. B. SCHRÖDER (1999):

Kationen-/ Anionen-Verhältnis in Milchviehrationen (Bedarf, Gehalt in Futtermitteln, Ergänzung, Akzeptanz).

Lohmann Information Fa. LOHMANN u. Co., Cuxhaven, 2/1999, S. 22 – 27

BREVES, G., M. DIENER, H. J. EHRLEIN, W. v. ENGELHARDT, M. KASKE, S.

LEONHARDT-MAREK, H. MARTENS, P. D. MØLLER, E. SCHARRER, M.

SCHEMANN u. S. WOLFFRAM (2000):

Physiologie des Magen-Darm-Kanals.

in: ENGELHARDT, W. v. u. G. BREVES (Hrsg.): Physiologie der Haustiere.

Verlag Enke, Stuttgart, S. 303 - 408 BRÖCKER, R. (1996):

Auswirkungen von Selenzulagen auf Fermentationsvorgänge im Pansensaft des Rindes (in-vitro).

Hannover, Tierärztl. Hochsch., Diss.

BRODY, S. (1945):

Bioenergetics and growth.

Reinhold Publishing Corporation, zit. nach: ANNISON u. LEWIS (1959) BROWN, D. M., J. A. UPCROFT u. P. UPCROFT (1995):

Free radical detoxification in Giardia duodenalis.

Mol. Biochem. Parasitol. 72, 47 – 56

BROWN, D. M., J. A. UPCROFT, M. R. EDWARDS u. P. UPCROFT (1998):

Anaerobic bacterial metabolism in the ancient eukaryote Giardia duodenalis.

Int. J. Parasitol. 28, 149 – 164

BRÜGGEMANN, J., D. GIESECKE u. M. J. LAWLOR (1966):

Über die Produktion flüchtiger Fettsäuren im Pansen bei unterschiedlicher Fütterung.

Z. Tierphysiol. 21, 137 – 143 BRYANT, M. P. (1986):

Ruminococcus.

in: SNEATH (Hrsg.): Bergey`s manual of systematic bacteriology.

Williams u. Wilkins, Baltimore, S. 1093 - 1097

BRYANT, M. P., I. M. ROBINSON u. H. CHU (1959):

Observations on Bacteroides succinogenes: a ruminal cellulolytic bacterium.

J. Dairy Sci. 42, 1831 – 1847

BRYANT, M. P., u. M. ROBINSON (1962):

Some nutritional characteristics of predominant culturable ruminal bacteria.

J. Bacteriol. 84, 605 – 614 BYERS, D. I. (1993):

What is DCAB (dietary cation-anion balance) and what is the potential for use in dry and lactating rations?

Bovine Pract. 27, 154 –158

CARLSSON, J., G. NYBERG u. J. WRETHEN (1978):

Hydrogen peroxide and superoxide radikal formation in anaerobic broth media exposed to atmospheric oxygen.

Appl. Environ. Microbiol. 36, 223 – 229 CARROLL, E. J., u. R. E. HUNGATE (1955):

Formate dissimilation and methane production in bovine rumen contents.

Arch. Biochem. Biophys. 56, 525 – 536

CHANCE, B., H. SIES u. A. BOVERIS (1979):

Hydroperoxide metabolism in mammalian organs.

Physiol. Rev. 59, 527 – 605 CHAWANIT, M. (2002):

Wirkungen anionischer Futterzusätze auf den Proteinstoffwechsel im Pansen des Rindes (in vitro).

Hannover, Tierärztl. Hochsch., Diss. (in Vorbereitung)

CHENG, K.-J., R. P. MC COWAN u. J. W. COSTERTON (1979):

Adherent epithelial bacteria in ruminants and their roles in digestive tract function.

Am. J. Clin. Nutr. 32, 139 – 148

CHENG, K.-J., u. J. W. COSTERTON (1980):

Adherent rumen bacteria: their role in the digestion of plant material, urea and epithelial cells.

in: RUCKEBUSH, Y., u. P. Thivend (Hrsg.): Digestive physiology and metabolism in ruminants.

MTP Press, Lancaster, S. 227 – 250

CHENG, K.-J., u. T. A. McALLISTER (1997):

Compartmentation in the rumen.

in: HOBSON, P. N., u. C. S. STEWART (Hrsg.): The rumen microbial ecosystem.

2. Aufl. Blackie Academic u. Professional, London, S. 492 – 518 CHOU, F. I., u. S. T. TAN (1990):

Manganese (II) induces cell division and increases superoxide dismutase and catalase activities in an aging Deinococcal culture

J. Bacteriol. 172, 2029 – 2035

COCCO, D., A. RINALDI, I. SAVINI, J. M. COOPER u. V. BANNISTER (1981):

NADH oxidase from the extreme thermophile Thermus aquaticus YT-1, purification and characterization.

Eur. J. Biochem. 174, 267 – 271 COLEMAN, G. S. (1967):

The metabolism of free amino acids by washed suspensions of the rumen ciliate Entodinium caudatum.

J. Gen. Microbiol. 47, 433 – 447 CONDON, S. (1987):

Responses of lactic acid bacteria to oxygen.

Fed. Eur. Microbiol. Soc. Microbiol. Rev. 46, 269 CRAPO, J. D., u. D. F. TIERNEY (1974):

Superoxide dismutase and pulmonary oxygen toxicity.

Am. J. Physiol. 226, 1401 – 1407 CZERKAWSKI, J. W. (1969):

Methane production in ruminants and its significance.

World rev. Nutr. Diet. 11, 240 - 280 CZERKAWSKI, J. W. (1976):

Chemical composition of microbial matter in the rumen.

J. Sci. Fd Agric. 27, 621 – 632 CZERKAWSKI, J. W. (1984):

Microbial fermentation in the rumen.

Proc. Nutr. Soc. 43, 101 – 118 CZERKAWSKI, J. W. (1986):

An introduction to rumen studies.

Pergamon Press, Oxford, New York, S. 173 – 188 CZERKAWSKI, J. W., u. G. BRECKENRIDGE (1969):

The effect of oxygen on fermentation of sucrose by rumen micro-organisms in vitro.

Br. J. Nutr. 23, 67 – 80

CZERKAWSKI, J. W., u. G. BRECKENRIDGE (1977):

Design and development of a long-term rumen simulation technique (RUSITEC).

Br. J. Nutr. 38, 371 – 384

CZERKAWSKI, J. W., u. J. L. CLAPPERTON (1968):

Analysis of gases produced by metabolism of microorganisms.

Lab. practice 17, 994 – 996

DANIELS, L., R. SPARLING u. G. D. SPROTT (1984):

The bioenergetics of methanogenesis.

Biochim. biophys. Acta 768, 113 – 164

DE FIGUEIREDO, M. P. (1994):

Auswirkungen therapeutischer Gaben unterschiedlicher Hefezubereitungen (Saccharomyces cerevisae) auf die Fermentationsvorgänge im azidotischen Pansensaft (in-vitro).

Hannover, Tierärztl. Hochsch., Diss.

DE VRIES, W., W. M. C. VAN WIJCK-KAPTEIJN u. A. H. STOUTHAMER (1972):

Influence of oxygen on growth, cytochrome synthesis and fermentation pattern in propionic acid bacteria.

J. Gen. Microbiol. 71, 515 – 524

DE VRIES, W., W. M. C. VAN WIJCK-KAPTEYN u. S. K. H. OOSTERHUIS (1974):

The presence and function of cytochromes in Selenomonas ruminantium, Anaerovibrio lipolytica and Veillonella alcalescens.

J. Gen. Microbiol. 81, 69 – 78

DEHORTY, B. A., H. W. SCOTT u. P. KOWALUK (1967):

Volatile fatty acid requirements of cellulolytic rumen bacteria.

J. Bacteriol. 94, 537 – 543 DEL MAESTRO, R. F. (1980):

An approach to free radicals in medicine and biology.

Acta Physiologica Scandinavica, Supplementum 492, 153 – 168 DEMEYER, D. I., C. J. VAN NEVEL u. C. HENDERSON (1972):

Stoichiometry of oxygen utilization by rumen contents.

Proceedings of the 2nd World Congress on Animal Feeding 5, 33 – 37 DEMEYER, D. I., u. C. J. VAN NEVEL (1979):

Effect of defaunation on the metabolism of rumen microorganisms.

Br. J. Nutr. 42, 515 – 524

DI GUISEPPI, J., u. I. FRIDOVICH (1982):

Oxygen toxicity in Streptococcus sanguis.

J. Biol. Chem. 257, 4046 – 4051

DICKERSON, R. E., H. B. GRAY, M. Y. DARENSBOURG u. D. J. DARENSBOURG (1988):

Prinzipien der Chemie.

2. Aufl. Verlag de Gruyter, Berlin, New York DIRKSEN, A. (1990 a):

Einfluß von Magnesiumoxid auf die in-vitro-Fermentation im Pansensaft des Rindes.

Hannover, Tierärztl. Hochsch., Diss.

DIRKSEN, G. (1990 b):

Verdauungsapparat.

in: DIRKSEN, G., H. GRUENDER u. M. STOEBER (Hrsg.): Die klinische Untersuchung des Rindes.

3. Aufl. Verlag Parey, Berlin, Hamburg, S. 288 – 400

DOBSON, M. J., W. C. B. BROWN, A. DOBSON u. A. T. PHILLIPSON (1956):

Q. Jl. Exp. Physiol. 41, 247, zit. nach: CZERKAWSKI u. BRECKENRIDGE (1969) DOUGHERTY, R. W. (1961):

The physiology of eructation in ruminants.

in: D. LEWIS (Hrsg.): Digestive Physiology and Nutrition of the Ruminant.

Butterworths, S. 79 – 87.

DURAND, M., u. R. KAWASHIMA (1980):

Influence of minerals in rumen microbial digestion.

in: RUCKEBUSCH, Y., u. P. THIVEND (Hrsg.): Digestive physiology and metabolism in ruminants.

MTP Press, Lancaster, England, S. 375 – 408 ELIAS, K. (1999):

Ruminale Fermentation unter chronisch-azidotischen Bedingungen (in-vitro) bei unterschiedlicher Vitamin-B1-Verfügbarkeit.

Hannover, Tierärztl. Hochsch., Diss.

ELLEFSON, W. L., u. R. S. WOLFE (1980):

Role of component C in the methylreductase system of methanobacterium.

J. Biol. Chem. 255, 8388 – 8389

ELLIS, J. E., D. G. LINDMARK, A. G. WILLIAMS u. D. LLOYD (1994):

Polypeptides of hydrogenosome-enriched fractions from rumen ciliate protozoa and trichomonads: immunological studies.

FEMS Microbiol. Lett. 117, 211 – 216

ELLIS, J. E., D. LLOYD u. A. G. WILLIAMS (1989 b):

Protozoal contribution to ruminal oxygen utilization.

in: LLOYD, D., G. H. COOMBS u. T. A. P. PAGET:

Biochemistry and molecular biology of “anaerobic“ protozoa.

Harwood academic publishers, S. 32 – 286

ELLIS, J. E., K. HILLMAN, A. G. WILLIAMS u. D. LLOYD (1990 a):

in: BELAICH, J.-P., M. BRUSCHI u. J.-L. GARCIA: Microbiology and biochemistry of strict anaerobes involved in interspecies hydrogen transfer.

Plenum Press, New York, S. 373 – 376

ELLIS, J. E., K. HILLMAN, A. G. WILLIAMS u. D. LLOYD (1990 b):

in: BELAICH, J.-P., M. BRUSCHI u. J.-L. GARCIA: Microbiology and biochemistry of strict anaerobes involved in interspecies hydrogen transfer.

Plenum Press, New York, S. 377 – 379

ELLIS, J. E., P. S. MC INTYRE, M. SALEH, A. G. WILLIAMS u. D. LLOYD (1991 a):

Influence of CO2 and low concentrations of O2 on fermentative metabolism of the rumen ciliate Dasytricha ruminantium.

J. Gen. Microbiol. 137, 1409 – 1417

ELLIS, J. E., P. S. MC INTYRE, M. SALEH, A. G. WILLIAMS u. D. LLOYD (1991 b):

Influence of CO2 and low concentrations of O2 on fermentative metabolism of the rumen ciliate Polyplastron multivesiculatum.

Appl. Environ. Microbiol. 57, 1400 – 1407

ELLIS, J., A. G. WILLIAMS u. D. LLOYD (1989 a):

Oxygen consumption by ruminal microorganisms: protozoal and bacterial contributions.

Appl. and Environ. Microbiol. 55, 2583 – 2587 ELSTNER, F. E. (1990):

Der Sauerstoff: Biochemie, Biologie, Medizin.

Wissenschaftsverlag, Mannheim, Wien, Zürich

ENDER, F., I. W. DISHINGTON u. A. HELGEBOSTAD (1971):

Calcium balance studies in dairy cows under experimental introduction and prevention of hypocalcemic paresis puerperalis.

Z. Tierphysiol., Tierernähr. u. Futtermittelkde. 28, 233 – 256 EPEL, B. L., u. J. NEUMANN (1973):

The mechanism of the oxidation of ascorbate and Mn2+ by chloroplasts. The role of the radical superoxide.

Biochim. Biophys. Acta 325, 520 – 529 FEE, J. A. (1980):

Is superoxide toxic?

in: BANNISTER, W. H., u. J. V. BANNISTER:

Biological and clinical aspects of superoxide and superoxide dismutase.

Dev. Biochem. 11 B

Elsevier, New York, 41 – 48 FELDMANN, M. (1992):

Auswirkungen von Aktivkohle auf die Fermentationsvorgänge im Pansensaft des Rindes (in-vitro).

Hannover, Tierärztl. Hochsch., Diss.

FOOTE, C. S. (1979):

Detection of singlet oxygen in complex systems: a critique.

in: CAUGHEY, W. S. (Hrsg.): Biochemical and clinical aspects of oxygen.

Academic Press, New York, S. 603 – 626 FRANK, A. (1998):

Einfluß einer durch Fusarien verdorbenen Heucharge auf Keimzahlen ruminaler Bakteriengruppen (in-vitro).

Hannover, Tierärztl. Hochsch., Diss.

FRANK, L., J. R. BUCHER u. R. J. ROBERTS (1978):

Oxygen toxicity in neonatal and adult animals of various species.

J. Appl. Physiol. 45, 699 – 704

FREDERICKS, W. W., u. E. R. STADTMAN (1965):

The role of ferredoxin in the hydrogense system from Clostridium kluyveri.

J. Biol. Chem. 240, 4065 – 4071

FREEDEN, A. H., E. J. DE PETERS u. R. L. BALDWIN (1988):

Characterization of acid-base disturbances and effects on calcium and phosphorus balances of dietary fixed ions in pregnant or lactating does.

J. Anim. Sci. 66, 159 – 173 FRIDOVICH, I. (1972):

Superoxide radical and superoxide dismutase.

Acc. Chem. Res. 5 (10), 321 – 326 FRIDOVICH, I. (1974):

Superoxide dismutases.

Relat. Subj. Biochem. 41, 35 – 97 FRIDOVICH, I. (1975):

Superoxide dismutases.

Annu. Rev. Biochem. 44, 147 – 159 FRIDOVICH, I. (1978):

The biology of oxygen radikals.

Science 201, 875 – 880 FRIMER, A. A. (1983):

The chemistry of peroxides.

in: PATAI, S. (Hrsg.): The chemistry of functional groups.

Verlag Wiley, Chichester, S. 429 – 461

FULGHUM, R. S., u. J. M. WORTHINGTON (1984):

Superoxide dismutase in ruminal bacteria.

Appl. Environ. Microbiol. 48, 675 – 677

FÜRLL, M., L. JÄKEL, J. BAUERFELD u. B. GROPPEL (1996):

Gebärpareseprophylaxe mit Anionenrationen.

Prakt. Tierarzt, Collegium veterinarium XXVI, S. 31 - 34

FÜRLL, M., T. SATTLER, M. N. DABBAGH, C. SPIELMANN u. B. FÜRLL (1999):

Ätiologie und Prophylaxe von Reperfusionsschäden.

Dtsch. tierärztl. Wschr. 106, 389 – 393 GÄBEL, G., u. H. MARTENS (1991):

Transport of Na+ and Cl- across the forestomach epithelium: Mechanisms and interactions with short-chain fatty acids.

in: TSUDA, T., Y. SASAKI u. R. KAWASHIMA (Hrsg.): Physiological aspects of digestion and metabolism in ruminants.

Academic Press, San Diego, USA, S. 129 – 154

GEISSLER, C., M. HOFFMANN u. B. HICKEL (1976):

Ein Beitrag zur Bestimmung flüchtiger Fettsäuren.

Arch. Tierernähr. 26, 123 – 129

GIBSON, C. M., T. C. MALLETT, A. CLAIBORNE u. M. G. CAPARON (2000):

Contribution of NADH oxidase to aerobic metabolism of Streptococcus pyogenes.

J. Bacteriol. 182, 448 – 455 GIESECKE, D. (1967):

Gaschromatographische Bestimmung flüchtiger Fettsäuren und ihrer Produkte im Pansen.

Z. Tierphysiol. 22, 354 – 364 GILBERT, D. L. (1963):

The role of pro-oxidants and antioxidants in oxygen toxicity.

Radiation Res. Suppl. 3, 44 – 53 GILBERT, D. L. (1964):

Atmosphere and evolution.

in: Dickens, F., u. E. Neil (Hrsg.): Oxygen in the animal organismen.

Macmillan, New York, S. 641 – 654

GILBERT, D. L., R. GERSCHMAN, J. COHEN u. W. SHERWOOD (1957):

The influence of high oxygen pressures on the viscosity of solutions of sodium desoxyribonucleic acid and of sodium alginate.

J. Am. Chem. Soc. 79, 5677 – 5680

GILBERT, D. L., R. GERSCHMAN, K. B. RUHM u. W. E. PRICE (1958):

The production of hydrogen peroxide by high oxygen pressures.

J. Gen. Physiol. 41, 989 – 1003

GOLDBERG, B., u. A. STERN (1976):

Superoxid anion as a mediator of drug-induced oxidative hemolysis.

J. Biol. Chem. 251, 6468 – 6470 GRAMZOW, S. (2001):

Effekte von Antioxidantien bei landwirtschaftlichen Nutztieren.

Lohman Information Fa. LOHMANN u. Co., Cuxhaven, 3/2001, S. 23 – 28 GREGORY, E. M., B. J. VELTRI, D. L. WAGNER u. T. D. WILKINS (1977 b):

Carbohydrate repression of catalase synthesis in Bacteroides fragilis.

J. Bacteriol. 129, 534 – 535

GREGORY, E. M., J. B. KOWALSKI u. L. V. HOLDEMAN (1977 a):

Production and some properties of catalase and superoxide dismutase from the anaerobe Bacteroides distasonis.

J. Bacteriol. 129, 1298 - 1302

GREGORY, E. M., S. A. GOSCIN u. I. FRIDOVICH (1974):

Superoxide dismutase and oxygen toxicity in a Eukaryote.

J. Bacteriol. 117, 456 – 460

GREGORY, E. M., u. I. FRIDOVICH (1973):

Oxygen toxicity and the superoxide dismutase.

J. Bacteriol. 114, 1193 – 1197

GREGORY, E. M., W. E. C. MOORE u. L. V. HOLDEMAN (1978):

Superoxide dismutase in anaerobes: survey.

Appl. Environ. Microbiol. 35, 988 – 991 HABER, F., u. J. WEISS (1934):

The catalytic decomposition of hydrogen peroxide by iron salts.

Proc. Roy. Soc. London A 147, 332 – 351

HALLIWELL, B., R. RICHMOND, S. F. WONG u. J. M. C. GUTTERIDGE (1980):

The biological significance of the Haber-Weiss reaction.

in: BANNISTER, W. H., u. J. V. BANNISTER (Hrsg.):

Biological and clinical aspects of superoxide and superoxide dismutase.

Dev. Biochem. 11 B

Dev. Biochem. 11 B