• Keine Ergebnisse gefunden

1   Einleitung

4.3  Stabilität von Radiopeptiden

Kapitel  4.3).  Die  niedrigen  Knochenwerte  (siehe  Kapitel  3.2.7)  sowie  die  erfolgreiche Qualitätskontrolle der Markierung des CCK8‐Radiopeptides (siehe  Kapitel 2.7) sprechen jedoch in diesem Fall gegen eine Transchelation. Zweitens  liegen Hinweise auf eine direkte Metabolisierung kleinerer Peptide der Gastrin‐ 

und CCK‐Familie in der Leber vor,41,182 welche eine hepatische Anreicherung  zumindest  einiger  Gastrin‐  bzw.  CCK‐Analoga  erklären  können.  Die  wahrscheinlichste Erklärung für die erhöhte hepatische Radioaktivität beim in  vivo Einsatz des CCK8‐Radiopeptides ist der Lipophilieeffekt. Die Lipophilie des  Radiopeptides  spielt  eine  entscheidende  Rolle  bei  dessen  hepatischer  Metabolisierung.  Die  Substitution  einer  polaren  Tyrosingruppe  durch  eine  geladene Sulfatgruppe führt zu einem Lipophiliezuwachs des CCK8‐Peptides. 

Dies  könnte  einerseits  eine  Zunahme  der  unspezifischen  hepatischen  Akkumulation  des  Peptides  im  Rahmen  des  Fettstoffwechsels  bewirken. 

Andererseits  wird das lipophilere CCK8‐Peptid gegenüber dem  CCK8‐Peptid  weniger gut renal eliminiert (siehe Kapitel 3.2.7). Dies führt zu einer zeitlich  ausgedehnten Exposition dieses Peptides in der   Leber mit daraus folgender  erhöhter  Wahrscheinlichkeit  einer  unspezifischen  hepatischen  Aufnahme.  Es  scheinen  jedoch  weitere  Untersuchungen  nötig,  um  die  Auswirkung  der  Sulfatierung  des  CCK8‐Radiopeptides  auf  dessen  hepatische  Akkumulation  vollständig zu verstehen. 

   

würde – an das Eisentransportprotein Transferrin gebunden – darüber hinaus als  falsches „Substrat“ der Erythropoese das Knochenmark erreichen, wo es sich dann  in  unmittelbarer  Nachbarschaft  der  besonders  strahlungsempfindlichen  hämatopoetischen  Zellen  befinden  würde.  Eine  Nuklidverschleppung  wäre  darüber hinaus umso folgenreicher, wenn an Stelle von 111In der β‐Emitter 90Y zur  Markierung  von  DTPA‐Peptiden  für  den  therapeutischen  Bereich  verwendet  würde, da Yttrium neben der erhöhten Strahlenbelastung eine im Vergleich zur 

111In‐Markierung erniedrigte Stabilität aufweist.11 

Neben der Zweitorgantoxizität durch transcheliertes Radiometall sei auch auf die  Einschränkung  der  diagnostischen  Güte  durch  eine  unspezifische  hepatische  Radiopeptidanreicherung  bei  Vorliegen  einer  instabilen  Bindung  zwischen  Radionuklid  und  Peptid  hingewiesen.  So  würde  eine  unspezifische  Nuklidaufnahme durch die Leber unter anderem den Nachweis einer spezifischen  hepatischen Radiopeptidaufnahme erschweren – zum Beispiel beim Vorliegen von  CCK‐Rezeptor positiven Lebermetastasen. 

Das  von  Hnatowich  et  al.  1983  erstmals  beschriebene  Verfahren,  unter  Verwendung zyklischen DTPA‐Anhydrids monofunktionale DTPA‐Derivate zu  synthetisieren,  stellte  einen  Durchbruch  auf  dem  Gebiet  der  radioaktiven  Markierung von Proteinen und  Peptiden dar.72 Das monofunktionelle DTPA‐

Derivat 111In‐(DTPA0‐,DPhe1)‐Octreotid (Octreoscan®) ist kommerziell erhältlich  und  findet  in  der  Diagnostik  von  Somatostatin‐Rezeptor  exprimierenden  Tumoren, wie zum Beispiel dem Karzinoid, Verwendung (siehe Kapitel 1). Im  Rahmen der hier vorliegenden Arbeit wurde der offenkettige Chelator DTPA‐

Dianhydrid zur Markierung der untersuchten Peptide mit 111In verwendet (siehe  Abbildung  2.4). Dieses  neuartige Verfahren stellt eine  einfache  Methode  zur  Derivatisierung und Markierung von Peptiden mit verschiedenen Radiometallen  dar. 

Dieser Arbeit vorausgegangene Stabilitätsstudien mit 111Indium‐markierten, N‐

terminal  DTPA‐derivatisierten  CCK‐Analoga  in  humanem  Plasma  und  Urin  zeigten  eine  ausreichende  Serumstabilität  der  untersuchten  Peptide  unter  Inkubationszeiten von mindestens 24 Stunden bei  37°C.22,146 Anders  als  beim  Somatostatin‐Analogon Octreotid scheinen daher Modifikationen dieser Peptide  zur  Erhöhung  der  Serumstabilität  nicht  notwendig  zu  sein.  Eine 

Peptidmodifikation hätte neben dem Zeit‐ und Kostenaufwand den Nachteil eines  möglichen  Affinitätsverlustes  für  bestimmte  Rezeptoruntergruppen;15,19  beim  Octreotid  führten  die  zur  Erhöhung  der  Serumstabilität  erforderlichen  molekularen  Modifikationen  –  unter  anderem  die  Einführung  von  D‐

Aminosäuren und so genannten Pseudo‐Peptidbindungen ins Radiopeptid76 –  zum  nahezu  vollständigen  Affinitätsverlust  des  Peptides  für  drei  der  fünf  Somatostatin‐Rezeptor‐Subtypen.86,133 

Die im Rahmen dieser Arbeit durchgeführten DTPA‐Inkubationstudien haben  gezeigt, dass der Austausch des Leuzin durch ein negativ geladenes Glutamat am  N‐terminalen  Ende  des  Minigastrins  einen  deutlichen  Stabilitätsgewinn  der  koordinativen  Bindung zwischen dem  radioaktiven Nuklid und dem ans  N‐

terminale Peptidende gebundenen Chelator bewirkt (siehe Kapitel 3.1.1). Dies  konnte  durch  die  Serum‐Inkubationsstudien  bestätigt  werden,  da  das  111In‐

markierten  DTPA‐[D‐Glu]1‐Minigastrin  zu  allen  Zeitpunkten  eine  deutlich  niedrigere 111In‐Transchelation auf Serumproteine zeigte (siehe Kapitel 3.1.2) bzw. 

mit 239 h eine deutlich erhöhte Halbwertzeit im Vergleich zum DTPA‐Minigastrin  (T½ = 91 h) aufwies. Auch im Rahmen der Bioverteilungsstudien im Mausmodell  konnten Hinweise auf eine verminderte unspezifische hepatische Anreicherung  des [D‐Glu]1‐substituierten Minigastrins im Sinne einer erhöhten Stabilität der  radioaktiven Markierung dieses Radiopeptides im Vergleich zum herkömmlichen  Minigastrin gezeigt werden (siehe Abbildung 4.11). Abbildung 3.4 zeigt darüber  hinaus  die  erste  durchgeführte  Ganzkörperszintigraphie  eines  gesunden  Probanden mit 111In‐DTPA‐Minigastrin und mit 111In‐DTPA‐[D‐Glu]1‐Minigastrin. 

Die deutlich verminderte hepatische Radionuklidanreicherung des 111In‐DTPA‐[D‐

Glu]1‐Minigastrins ist ein weiterer Hinweis auf dessen erhöhte Serumstabilität. 

Somit konnte sowohl in vitro als auch in vivo eine Erhöhung der kinetischen  Stabilität  der  Bindung  zwischen  Radionuklid  und  DTPA‐Minigastrin  durch  Substitution des N‐terminalen Leuzin durch Glutamat nachgewiesen werden. Eine  mögliche Erklärung für dieses Phänomen könnte eine Wechselwirkung zwischen  der positiven Ladung des Radiometalls und den negativen Ladungen des N‐

terminalen „polyGlu‐Schwanzes“ des Peptides sein. Dies würde zur Retention  von  dekomplexierten  Radiometall  mit  unmittelbar  darauf  folgender   Rekomplexierung führen. Es sind jedoch weiterführende Untersuchungen zur 

genauen Ergründung des Mechanismus des Stabilitätsgewinns durch Substitution  des N‐terminalen Leuzin durch Glutamat erforderlich. 

                                            

Abbildung 4.11  Vergleich  der  Leberclearances  von  Minigastrin  und  [D‐Glu]1‐Minigastrin.  Die  Substitution des N‐terminalen Leuzin durch Glutamat bewirkte eine (insignifikant)  erniedrigte hepatische Aufnahme. Fehlerbalken = Standardabweichungen, Statistik siehe  Kapitel 2.12. 

   

Die enzymatische Spaltung von Peptiden stellt ein physiologisches Prinzip dar,  um einen schnellen Wirkungsabbruch biologischer Botenstoffe im Organismus zu  ermöglichen. Beim klinischen Einsatz von Peptidhormonabkömmlingen ist daher  auch deren metabolische Stabilität zu berücksichtigen. Im Rahmen der In‐vitro‐

Inkubation von 111In‐DTPA‐Minigastrin und 111In‐DTPA‐[D‐Glu]1‐Minigastrin in  menschlichem Serum konnten keine wesentlichen Degradierungsmetabolite der  Radiopeptide nachgewiesen werden (siehe Kapitel 3.1.2). Dies deutet auf die  Abwesenheit  von  Radiopeptid  degradierenden  Peptidasen  im  menschlichen  Serum hin. Insbesondere  unter Berücksichtigung  der  zu erwartenden kurzen 

Leberclearance, Minigastrin vs [D-Glu]1-Minigastrin

Zeit (h)

0 5 10 15 20 25

%A0/g

0,0 0,5 1,0 1,5

Minigastrin [D-Glu]1-Minigastrin

p = 0,093

systemischen Verweildauer von Radiopeptiden ist somit eine ausreichend hohe  Serumstabilität gewährleistet. 

Die  vorliegenden  Bioverteilungsstudien  demonstrieren  eine  überwiegende  Elimination aller untersuchten Radiopeptide aus dem systemischen Blutkreislauf  bereits eine Stunde nach Verabreichung (siehe Abbildung 3.3.3). Aufgrund dieser  schnellen Blutclearance können beim klinischen Einsatz der untersuchten CCK‐

Rezeptor‐Liganden  Nebenwirkungen  als  Folge  einer  möglichen    biologischen  Aktivität der Radiopeptide verhindert werden. Dies ist als ein entscheidender  Vorteil  gegenüber  größeren  Molekülen  –  wie  zum  Beispiel  Antikörpern  –  anzusehen (siehe Kapitel 1). Mit Ausnahme des CCK8‐Peptides (siehe Kapitel 4.2)  zeigten  alle  untersuchten  Radiopeptide  eine  schnelle  Abnahme  der  initial  hämatogen  bedingten  hepatischen  Anreicherung (siehe  Abbildung 3.3.5)  und  zeigten somit keine unerwünschte hepatische Akkumulation. Daher kann auch  aufgrund der Bioverteilungsdaten von einer ausreichend hohen Serumstabilität  der 111In‐Markierung der untersuchten DTPA‐Peptide ausgegangen werden. 

Die kombinierte Verwendung von monofunktionellem DTPA als Chelator und  insbesondere  [D‐Glu]1‐substituierten  DTPA‐Minigastrin‐Analoga  als  Peptidbestandteil  von  Radiopharmaka  stellt  daher  eine  Möglichkeit  dar,  Nebenwirkungen als Folge einer systemischen Nuklidverschleppung aufgrund  von  Radiometall‐Transchelation  und  plasmatischer  Radiopeptid‐Degradierung  wesentlich zu minimieren. 

 

 

  1.   Allannic H. [Screening for the familial form of medullary cancer of the thyroid]. Bull Cancer. 

1984;71:125‐129. 

  2.   Bagutti C, Stolz B, Albert R, et al. [111In]‐DTPA‐labeled analogues of alpha‐melanocyte‐stimulating  hormone for melanoma targeting: receptor binding in vitro and in vivo. Int J Cancer. 1994;58:749‐755. 

  3.   Baidoo KE, Lin KS, Zhan Y, et al. Design, synthesis, and initial evaluation of high‐affinity technetium  bombesin analogues. Bioconjug Chem. 1998;9:218‐225. 

  4.   Bakker  WH,  Krenning  EP,  Breeman  WA,  et  al. Receptor scintigraphy with  radioiodinated  somatostatin analogue: radiolabeling, purification, biologic activity, and in vivo application in  animals. J Nucl Med. 1990;31:1501‐1509. 

  5.   Baldwin GS, Chandler R, Scanlon DB, et al. Identification of gastrin binding protein in porcine  gastric  mucosal  membranes  by  covalent  cross‐linking  with  iodinated  gastrin.  Biol  Chem. 

1986;261:12252‐12257. 

  6.   Bard DR. An improved imaging agent for malignant melanoma, based on [Nle4,D‐Phe7]alpha‐

melanocyte stimulating hormone. Nucl Med Commun. 1995;16:860‐866. 

  7.   Bardfeld PA, Chervu LR, Murty DR. The organ distribution of 131I‐tyrosyl somatostatin. Br J Radiol. 

1976;49:381‐382. 

  8.   Beauchamp RD, Townsend CM, Jr., Singh P, et al. Proglumide, a gastrin receptor antagonist, inhibits  growth of colon cancer and enhances survival in mice. Ann Surg. 1985;202:303‐309. 

  9.   Becker W, Bair J, Behr T, et al. Detection of soft‐tissue infections and osteomyelitis  using  technetium‐99m‐labeled anti‐granulocyte monoclonal antibody fragment. Nucl Med. 1994;35:1436‐

1443. 

  10.   Becker W, Goldenberg DM, Wolf F. The use of monoclonal antibodies and antibody fragments in the  imaging of infectious lesions. Semin Nucl Med. 1994;24:142‐153. 

  11.   Behe M, Becker W, Gotthardt M, et al. Improved kinetic stability of DTPA‐dGlu as compard with  conventional monofunctional DTPA in chelating indium and yttrium: preclinical and intial clinical  evaluation of radiometal labelled mingastrin derivatives. Eur J Nucl Med Mol Imaging. 2003;30:1140‐

1146. 

  12.   Behr TM, Becker WS, Bair HJ, et al. Comparison of complete versus fragmented technetium‐99m‐

labeled anti‐CEA monoclonal antibodies for immunoscintigraphy in colorectal cancer. Nucl Med. 

1995;36:430‐441. 

  13.   Behr TM, Becker WS, Sharkey RM, et al. Reduction of renal uptake of monoclonal antibody  fragments by amino acid infusion. J Nucl Med. 1996;37:829‐833. 

  14.   Behr TM,  Behe M, Angerstein  C,  et  al. Cholecystokinin‐B/gastrin  receptor  binding  peptides: 

preclinical development and evaluation of their diagnostic and therapeutic potential. Clin Cancer Res. 

1999;5:3124s‐3138s. 

  15.   Behr  TM,  Behe  M,  Becker  W.  Diagnostic  applications  of  radiolabeled  peptides  in  nuclear  endocrinology. Q J Nucl Med. 1999;43:268‐280. 

  16.   Behr TM, Behe M, Kluge G, et al. Nephrotoxicity versus anti‐tumour efficacy in radiopeptide  therapy: facts and myths about the Scylla and Charybdis. Eur J Nucl Med Mol Imaging. 2002;29:277‐

279. 

  17.   Behr TM, Behe MP. Cholecystokinin‐B/Gastrin receptor‐targeting peptides for staging and therapy of  medullary thyroid cancer and other cholecystokinin‐B receptor‐expressing malignancies. Semin Nucl  Med. 2002;32:97‐109. 

  18.   Behr TM, Goldenberg DM, Becker W. Reducing the renal uptake of radiolabeled antibody fragments  and peptides for diagnosis and therapy: present status, future prospects and limitations. Eur J Nucl  Med. 1998;25:201‐212. 

  19.   Behr TM, Gotthardt M, Barth A, et al. Imaging tumors with peptide‐based radioligands. Nucl  Med. 2001;45:189‐200. 

  20.   Behr TM, Gratz S, Markus PM, et al. Enhanced bilateral somatostatin receptor expression in  mediastinal lymph nodes (ʺchimney signʺ) in occult metastatic medullary thyroid cancer: typical  site of tumour manifestation? Eur J Nucl Med. 1997;24:184‐191. 

  21.   Behr TM, Gratz S, Markus PM, et al. Anti‐carcinoembryonic antigen antibodies versus somatostatin  analogs in the detection of metastatic medullary thyroid carcinoma: are carcinoembryonic antigen  and somatostatin receptor expression prognostic factors? Cancer. 1997;80:2436‐2457. 

  22.   Behr TM, Jenner N, Behe M, et al. Radiolabeled peptides for targeting cholecystokinin‐B/gastrin  receptor‐expressing tumors. J Nucl Med. 1999;40:1029‐1044. 

  23.   Behr TM, Jenner N, Radetzky S, et al. Targeting of cholecystokinin‐B/gastrin receptors in vivo: 

preclinical and initial clinical evaluation of the diagnostic and therapeutic potential of radiolabelled  gastrin. Eur J Nucl Med. 1998;25:424‐430. 

  24.   Behr TM, Memtsoudis S, Sharkey RM, et al. Experimental studies on the role of antibody fragments  in cancer radio‐immunotherapy: Influence of radiation dose and dose rate on toxicity and anti‐tumor  efficacy. Int J Cancer. 1998;77:787‐795. 

  25.   Behr TM, Sharkey RM, Juweid ME, et al. Reduction of the renal uptake of radiolabeled monoclonal  antibody fragments by cationic amino acids and their derivatives. Cancer Res. 1995;55:3825‐3834. 

  26.   Berridge MJ. Inositol trisphosphate and diacylglycerol: two interacting second messengers. Annu Rev  Biochem. 1987;56:159‐193. 

  27.   Bold RJ, Ishizuka J, Yao CZ, et al. Bombesin stimulates in vitro growth of human breast cancer  independent of estrogen receptors status. Anticancer Res. 1998;18:4051‐4056. 

  28.   Breeman WA, de Jong M, Erion JL, et al. Preclinical comparison of (111)In‐labeled. Nucl Med. 

2002;43:1650‐1656. 

  29.   Breeman WA, Hofland LJ, de Jong M, et al. Evaluation of radiolabelled bombesin analogues for  receptor‐targeted scintigraphy and radiotherapy. Int J Cancer. 1999;81:658‐665. 

  30.   Breeman WA, VanHagen MP, Visser‐Wisselaar HA, et al. In vitro and in vivo studies of substance P  receptor expression in rats with the new analog [indium‐111‐DTPA‐Arg1]substance P. Nucl Med. 

1996;37:108‐117. 

  31.   Burckhardt B, Delco F, Ensinck JW, et al. Cholecystokinin is a physiological regulator of gastric acid  secretion in man. Eur J Clin Invest. 1994;24:370‐376. 

  32.   Carroll RE, Carroll R, Benya RV. Characterization of gastrin‐releasing peptide receptors aberrantly  expressed by non‐antral gastric adenocarcinomas. Peptides. 1999;20:229‐237. 

  33.   Chave HS, Gough AC, Palmer K, et al. Bombesin family receptor and ligand gene expression in  human colorectal cancer and normal mucosa. Br J Cancer. 2000;82:124‐130. 

  34.   Chen  J,  Giblin MF, Wang N, et al.  In vivo evaluation of  99mTc/188Re‐labeled linear  alpha‐

melanocyte  stimulating  hormone  analogs  for  specific  melanoma  targeting.  Nucl  Med  Biol. 

1999;26:687‐693. 

  35.   Chhajlani V, Muceniece R, Wikberg JE. Molecular cloning of a novel human melanocortin receptor. 

Biochem Biophys Res Commun. 1993;195:866‐873. 

  36.   Corjay MH, Dobrzanski DJ, Way JM, et al. Two distinct bombesin receptor subtypes are expressed  and functional in human lung carcinoma cells. J Biol Chem. 1991;266:18771‐18779. 

  37.   Cusack B, Stanton T, Richelson E. Developmental regulation of neurotensin receptor expression and  function in murine neuroblastoma clone N1E‐115. Eur J Pharmacol. 1991;206:339‐342. 

  38.   de Jong M, Bakker WH, Krenning EP, et al. Yttrium‐90 and indium‐111 labelling, receptor binding  and  biodistribution  of [DOTA0,d‐Phe1,Tyr3]octreotide,  promising  somatostatin analogue for  radionuclide therapy. Eur J Nucl Med. 1997;24:368‐371. 

  39.   de Jong M, Breeman WA, Bernard BF, et al. Evaluation in vitro and in rats of 161Tb‐DTPA‐octreotide,  a somatostatin analogue with potential for intraoperative scanning and radiotherapy. Eur J Nucl Med. 

1995;22:608‐616. 

  40.   Dockray  GJ.  Immunochemical  evidence  of  cholecystokinin‐like  peptides  in  brain.  Nature. 

1976;264:568‐570. 

  41.   Doyle JW, Wolfe MM, McGuigan JE. Hepatic clearance of gastrin and cholecystokinin peptides. 

Gastroenterology. 1984;87:60‐68. 

  42.   Duan RD, Wagner AC, Yule DI, et al. Multiple inhibitory effects of genistein on stimulus‐secretion  coupling in rat pancreatic acini. Am J Physiol. 1994;266:G303‐G310. 

  43.   Duncan JR, Behr TM, DeNardo SJ. Intracellular fate of radiometals. J Nucl Med. 1997;38:829. 

  44.   Eberlein GA, Eysselein VE, Davis MT, et al. Patterns of prohormone processing. Order revealed by a  new procholecystokinin‐derived peptide. J Biol Chem. 1992;267:1517‐1521. 

  46.   Fathi Z, Way JW, Corjay MH, et al. Bombesin receptor structure and expression in human lung  carcinoma cell lines. J Cell Biochem Suppl. 1996;24:237‐246. 

  47.   Firestone RB, Shirley VS, Baglin CM, et al. Table of Isotopes. New York: John Wiley & Sons, Inc.; 1996. 

  48.   Fischman AJ, Babich JW, Strauss HW. ticket to ride: peptide radiopharmaceuticals. Nucl Med. 

1993;34:2253‐2263. 

  49.   Fishburn CS, Belleli D, David C, et al. A novel short isoform of the D3 dopamine receptor generated  by alternative splicing in the third cytoplasmic loop. J Biol Chem. 1993;268:5872‐5878. 

  50.   Fritsch HW. Klinische Nuklearmedizin (Internet‐Kommunikation). 1998. 

  51.   Gagel RF, Melvin KE, Tashjian AH, Jr., et al. Natural history of the familial medullary thyroid  carcinoma‐pheochromocytoma syndrome and the identification of preneoplastic stages by screening  studies: a five‐year report. Trans Assoc Am Physicians. 1975;88:177‐191. 

  52.   Ghanem GE, Comunale G, Libert A, et al. Evidence for alpha‐melanocyte‐stimulating hormone  (alpha‐MSH) receptors on human malignant melanoma cells. Int J Cancer. 1988;41:248‐255. 

  53.   Giacchetti S, Gauville C, de Cremoux P, et al. Characterization, in some human breast cancer cell  lines, of gastrin‐releasing peptide‐like receptors which are absent in normal breast epithelial cells. Int  J Cancer. 1990;46:293‐298. 

  54.   Giblin MF, Wang N, Hoffman TJ, et al. Design and characterization of alpha‐melanotropin peptide  analogs cyclized through rhenium and technetium metal coordination. Proc Natl Acad Sci A. 

1998;95:12814‐12818. 

  55.   Gillespie J, Dye JF, Schachter M, et al. Inhibition of pancreatic cancer cell growth in vitro by the  tyrphostin group of tyrosine kinase inhibitors. Br J Cancer. 1993;68:1122‐1126. 

  56.   Goldenberg DM. New developments in monoclonal antibodies for cancer detection and therapy. CA  Cancer J Clin. 1994;44:43‐64. 

  57.   Goldenberg DM. Cancer Therapy with Radiolabeled Antibodies. Boca Raton, Ann Arbor, London, Tokyo: 

CRC Press; 1995. 

  58.   Goldenberg DM, DeLand F, Kim E, et al. Use of radiolabeled antibodies to carcinoembryonic antigen  for the detection and localization of diverse cancers by external photoscanning. Engl Med. 

1978;298:1384‐1386. 

  59.   Goldenberg DM, DeLand FH, Bennett SJ, et al. Radioimmunodetection of prostatic cancer. In vivo  use of radioactive antibodies against prostatic acid phosphatase for diagnosis and detection of  prostatic cancer by nuclear imaging. JAMA. 1983;250:630‐635. 

  60.   Goldenberg DM, Gaffar SA, Bennett SJ, et al. Experimental radioimmunotherapy of xenografted  human colonic tumor (GW‐39) producing carcinoembryonic antigen. Cancer Res. 1981;41:4354‐4360. 

  61.   Goldenberg  DM,  Goldenberg  H,  Sharkey  RM,  et  al.  Imaging  of  colorectal  carcinoma  with  radiolabeled antibodies. Semin Nucl Med. 1989;19:262‐281. 

  62.   Goldenberg DM, Kim EE, DeLand F, et al. Clinical studies on the radioimmunodetection of tumors  containing alpha‐fetoprotein. Cancer. 1980;45:2500‐2505. 

  63.   Goldenberg DM,  Kim  EE,  DeLand  FH, et  al.  Clinical  radioimmunodetection of  cancer  with  radioactive antibodies to human chorionic gonadotropin. Science. 1980;208:1284‐1286. 

  64.   GREGORY H, HARDY PM, JONES DS, et al. THE ANTRAL HORMONE GASTRIN. STRUCTURE  OF GASTRIN. Nature. 1964;204:931‐933. 

  65.   Gregory RA, Dockray GJ, Reeve JR, Jr., et al. Isolation from porcine antral mucosa of hexapeptide  corresponding to the C‐terminal sequence of gastrin. Peptides. 1983;4:319‐323. 

  66.   Gugger M, Reubi JC. Gastrin‐releasing peptide receptors in non‐neoplastic and neoplastic human  breast. Am J Pathol. 1999;155:2067‐2076. 

  67.   Hajri A, Koenig M, Balboni G, et al. Expression and characterization of gastrin‐releasing peptide  receptor in normal and cancerous pancreas. Pancreas. 1996;12:25‐35. 

  68.   Halmos G, Pinski J, Szoke B, et al. Characterization of bombesin/gastrin‐releasing peptide receptors  in membranes of MKN45 human gastric cancer. Cancer Lett. 1994;85:111‐118. 

  69.   Hammond PJ, Wade AF, Gwilliam ME, et al. Amino acid infusion blocks renal tubular uptake of an  indium‐labelled somatostatin analogue. Br J Cancer. 1993;67:1437‐1439. 

  70.   Hennig IM, Laissue JA, Horisberger U, et al. Substance‐P receptors in human primary neoplasms: 

tumoral and vascular localization. Int J Cancer. 1995;61:786‐792. 

  71.   Hessenius C, Bader M, Meinhold H, et al. Vasoactive intestinal peptide receptor scintigraphy in  patients with pancreatic adenocarcinomas or neuroendocrine tumours. Eur J Nucl Med. 2000;27:1684‐

1693. 

  72.   Hnatowich DJ, Layne WW, Childs RL, et al. Radioactive labeling of antibody: a simple and efficient  method. Science. 1983;220:613‐615. 

  73.   Hoosein NM, Kiener PA, Curry RC, et al. Evidence for autocrine growth stimulation of cultured  colon tumor cells by a gastrin/cholecystokinin‐like peptide. Exp Cell Res. 1990;186:15‐21. 

  74.   Ishii K, Nishiyama S, Oyamada H, et al. [Radioimmunoimaging of malignant melanoma with In‐111  labeled monoclonal antibody 96.5 and ZME‐0.18]. Gan To Kagaku Ryoho. 1989;16:1194‐1203. 

  75.   Ivy AC, Oldberg E. American Journal of Physiology. 1928;‐599. 

  76.   Jakubke H‐D. Peptide. Chemie und Biologie. Heidelberg; Berlin; Oxford: Spektrum Akademischer  Verlag; 1996. 

  77.   Jena BP, Padfield PJ, Ingebritsen TS, et al. Protein tyrosine phosphatase stimulates Ca(2+)‐dependent  amylase secretion from pancreatic acini. J Biol Chem. 1991;266:17744‐17746. 

  78.   Johnsen AH. Phylogeny of the cholecystokinin/gastrin family. Front Neuroendocrinol. 1998;19:73‐99. 

  79.   Johnson LR, Guthrie PD. Secretin inhibition of gastrin‐stimulated deoxyribonucleic acid synthesis. 

Gastroenterology. 1974;67:601‐606. 

  80.   Johnson LR, Guthrie PD. Mucosal DNA synthesis: a short term index of the trophic action of gastrin. 

Gastroenterology. 1974;67:453‐459. 

  81.   Jorpes E, Mutt V. Cholecystokinin and pancreozymin, one single hormone? Acta Physiol Scand. 

1966;66:196‐202. 

  82.   Karlson P, Doenecke D, Koolman J. Biochemie für Mediziner und Naturwissenschaftler. Stuttgart; New  York: Georg Thieme Verlag; 1994. 

  83.   Kobilka BK, Kobilka TS, Daniel K, et al. Chimeric alpha 2‐,beta 2‐adrenergic receptors: delineation of  domains involved in effector coupling and ligand binding specificity. Science. 1988;240:1310‐1316. 

  84.   Kobori O, Vuillot MT, Martin F. Growth responses of rat stomach cancer cells to gastro‐entero‐

pancreatic hormones. Int J Cancer. 1982;30:65‐67. 

  85.   Kohler G, Milstein C. Continuous cultures of fused cells secreting antibody of predefined specificity. 

Nature. 1975;256:495‐497. 

  86.   Krenning EP, Kwekkeboom DJ, Pauwels S, et al. Somatostatin receptor scintigraphy in : Nuclear Medicine  Annual. New York: Raven Press; 1995. 

  87.   Krenning EP, Bakker WH, Breeman WA, et al. Localisation of endocrine‐related tumours with  radioiodinated analogue of somatostatin. Lancet. 1989;1:242‐244. 

  88.   Kurtaran A, Raderer M, Muller C, et al. Vasoactive intestinal peptide and somatostatin receptor  scintigraphy for differential diagnosis of hepatic carcinoid metastasis. J Nucl Med. 1997;38:880‐881. 

  89.   Kwekkeboom DJ, Krenning EP, Bakker WH, et al. Somatostatin analogue scintigraphy in carcinoid  tumours. Eur J Nucl Med. 1993;20:283‐292. 

  90.   Lamberts SW, Bakker WH, Reubi JC, et al. Somatostatin‐receptor imaging in the localization of  endocrine tumors. N Engl J Med. 1990;323:1246‐1249. 

  91.   Lamberts SW, Bakker WH, Reubi JC, et al. Treatment with Sandostatin and in vivo localization of  tumors with radiolabeled somatostatin analogs. Metabolism. 1990;39:152‐155. 

  92.   Lamberts SW, Hofland LJ, van Koetsveld PM, et al. Parallel in vivo and in vitro detection of  functional somatostatin receptors in human endocrine pancreatic tumors: consequences with regard  to diagnosis, localization, and therapy. J Clin Endocrinol Metab. 1990;71:566‐574. 

  93.   Lamberts SW, Krenning EP, Klijn JG, et al. The clinical use of somatostatin analogues in the  treatment of cancer. Baillieres Clin Endocrinol Metab. 1990;4:29‐49. 

  94.   Lamberts SW, Krenning EP, Reubi JC. The role of somatostatin and its analogs in the diagnosis and  treatment of tumors. Endocr Rev. 1991;12:450‐482. 

  95.   Lechleiter J, Hellmiss R, Duerson K, et al. Distinct sequence elements control the specificity of  protein activation by muscarinic acetylcholine receptor subtypes. EMBO J. 1990;9:4381‐4390. 

  96.   Lee YM, Beinborn M, McBride EW, et al. The human brain cholecystokinin‐B/gastrin receptor. 

Cloning and characterization. J Biol Chem. 1993;268:8164‐8169. 

  97.   Lutz MP, Sutor SL, Abraham RT, et al. role for cholecystokinin‐stimulated protein tyrosine  phosphorylation in regulated secretion by the pancreatic acinar cell. Biol Chem. 1993;268:11119‐

11124. 

  98.   Luxton RW. Radiation nephritis. A long‐term study of 54 patients. Lancet. 1961;2:1221‐1224. 

  99.   Madrazo AA, Churg J. Radiation nephritis. Chronic changes following moderate doses of radiation. 

Lab Invest. 1976;34:283‐290. 

many human colon cancer cell lines but not in normal colonic epithelium: binding studies and RT‐

PCR experiments. Biochem Biophys Res Commun. 1994;203:465‐471. 

  101.   Markwalder R, Reubi JC. Gastrin‐releasing peptide receptors in the human prostate: relation to  neoplastic transformation. Cancer Res. 1999;59:1152‐1159. 

  102.   Marvik R, Johnsen AH, Rehfeld JF, et al. Effect of cionin on histamine and acid secretion by the  perfused rat stomach. Scand J Gastroenterol. 1994;29:591‐594. 

  103.   Matozaki T, Sakamoto C, Nagao M, et al. protein in stimulation of PI hydrolysis by CCK in  isolated rat pancreatic acinar cells. Am J Physiol. 1988;255:E652‐E659. 

  104.   McGregor DB, Jones RD, Karlin DA, et al. Trophic effects of gastrin on colorectal neoplasms in the  rat. Ann Surg. 1982;195:219‐223. 

  105.   Merritt JE, Taylor CW, Rubin RP, et al. Isomers of inositol trisphosphate in exocrine pancreas. 

Biochem J. 1986;238:825‐829. 

  106.   Milhaud G, Ribeiro FM, Calmettes C, et al. [Tests of stimulation of calcitonin secretion. Value in  medullary cancer of the thyroid]. Nouv Presse Med. 1975;4:1793‐1795. 

  107.   Moody TW, Murphy A, Mahmoud S, et al. Bombesin‐like peptides elevate cytosolic calcium in small  cell lung cancer cells. Biochem Biophys Res Commun. 1987;147:189‐195. 

  108.   Moyer MP, Armstrong A, Aust JB, et al. Effects of gastrin, glutamine, and somatostatin on the in  vitro growth of normal and malignant human gastric mucosal cells. Arch Surg. 1986;121:285‐288. 

  109.   Mulholland  MW,  Debas  HT.  Physiology  and  pathophysiology  of  gastrin:  review.  Surgery. 

1988;103:135‐147. 

  110.   Mutt V, Jorpes JE. Structure of porcine cholecystokinin‐pancreozymin. 1. Cleavage with thrombin  and with trypsin. Eur J Biochem. 1968;6:156‐162. 

  111.   Nakagawa Y, Higashida H, Miki N. single class of neurotensin receptors with high affinity in  neuroblastoma glioma NG108‐15 hybrid cells that mediate facilitation of synaptic transmission.  Neurosci. 1984;4:1653‐1661. 

  112.   Nilsson S, Reubi JC, Kalkner KM, et al. Metastatic hormone‐refractory prostatic adenocarcinoma  expresses somatostatin receptors and is visualized in vivo by [111In]‐labeled DTPA‐D‐[Phe1]‐

octreotide scintigraphy. Cancer Res. 1995;55:5805s‐5810s. 

  113.   OʹDowd BF, Hnatowich M, Regan JW, et al. Site‐directed mutagenesis of the cytoplasmic domains of  the human beta 2‐adrenergic receptor. Localization of regions involved in protein‐receptor  coupling. J Biol Chem. 1988;263:15985‐15992. 

  114.   Otte A, Herrmann R, Heppeler A, et al. Yttrium‐90 DOTATOC: first clinical results. Eur J Nucl Med. 

1999;26:1439‐1447. 

  115.   Otte A, Mueller‐Brand J, Dellas S, et al. Yttrium‐90‐labelled somatostatin‐analogue for cancer  treatment. Lancet. 1998;351:417‐418. 

  116.   Pang IH, Sternweis PC. Purification of unique alpha subunits of GTP‐binding regulatory proteins (G  proteins)  by  affinity  chromatography  with  immobilized  beta  gamma  subunits.  Biol  Chem. 

1990;265:18707‐18712. 

  117.   Pansky A, Peng F, Eberhard M, et al. Identification of functional GRP‐preferring bombesin receptors  on human melanoma cells. Eur J Clin Invest. 1997;27:69‐76. 

  118.   Pearse HD. The kidney. In: Cox JD, ed. Mossʹ radiation oncology – rationale, technique, results. St. Louis: 

Mosby; 1994:499‐517. 

  119.   Pimm MV, Gribben SJ. Prevention of renal tubule re‐absorption of radiometal (indium‐111) labelled  Fab fragment of a monoclonal antibody in mice by systemic administration of lysine. Eur J Nucl Med. 

1994;21:663‐665. 

  120.   Pollo DA, Baldassare JJ, Honda T, et al. Effects of cholecystokinin (CCK) and other secretagogues on  isoforms of protein kinase C (PKC) in pancreatic acini. Biochim Biophys Acta. 1994;1224:127‐138. 

  121.   Press OW, Eary JF, Appelbaum FR, et al. Radiolabeled‐antibody therapy of B‐cell lymphoma with  autologous bone marrow support. N Engl J Med. 1993;329:1219‐1224. 

  122.   Press OW, Eary JF, Appelbaum FR, et al. Phase II trial of 131I‐B1 (anti‐CD20) antibody therapy with  autologous stem cell transplantation for relapsed B cell lymphomas. Lancet. 1995;346:336‐340. 

  123.   Preston SR, Woodhouse LF, Gokhale J, et al. Characterization of bombesin/gastrin‐releasing  peptide receptor on a human gastric‐cancer cell line. Int J Cancer. 1994;57:734‐741. 

  124.   Preston SR, Woodhouse LF, Jones‐Blackett S, et al. High affinity binding sites for gastrin releasing  peptide on human gastric cancer and Menetrierʹs mucosa. Cancer Res. 1993;53:5090‐5092.