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SEA+Fraxini (0.15µg/mL)

5.3 Einfluss von Mistelpräparaten auf neutrophile Granulozyten

5.3.3 Fehlender Einfluss auf die Migration neutrophiler Granulozyten

Neutrophile Granulozyten sind die ersten Abwehrzellen, die im Falle einer adäquaten Stimulation durch ein entzündliches Geschehen in das Gewebe einwandern. Ein Einfluss von Mistelpräparaten auf das Migrationsvermögen von PMN könnte die Infektionsabwehr durch neutrophile Granulozyten beeinflussen. In den verschiedenen Untersuchungsansätze zur Beeinflussung des Migrationsvermögens von PMN durch Mistelinhaltsstoffe konnte jedoch allenfalls ein schwach signifikanter Einfluss auf die Zellen nachgewiesen werden (vgl. Kapitel 4.6). Die Tatsache, dass die PMN-Migrationsraten nur in sehr geringem Maße beeinflusst wurde in Ansätzen, in denen Mistelpräparat zum gewählten Chemotaktikum (rhCXCL8) in der unteren Kammer zugesetzt wurden, belegen zumindest, dass eine hemmende Interaktion mit dem in vivo wesentlichen Chemokin nicht stattfindet. Einzig in sehr hohen Konzentrationen kam es in dem Ansatz mit aufgereinigten PMN zu einer schwach signifikanten-, in dem Ansatz mit Leukozyten zu einer statistisch nicht relevanten Reduktion der Migrationsrate (vgl.

Abb. 25). Ansätze, in denen Mistelpräparat zu Leukozyten in der oberen Kammer zugesetzt wurden, blieben ebenfalls nahezu unbeeinflusst – neutrophile Granulozyten migrierten. Nur in dem Ansatz mit Gesamtleukozyten kam es zu einer schwach signifikanten Reduktion der Migrationsrate (vgl. Abb. 26). Dies lässt vordergründig den Schluss zu, dass Mistelpräparate keinen Einfluss auf die PMN-Chemotaxis besitzten, obwohl der Zelltod der monozytoiden und lymphozytären Zellen induziert wird (siehe Diskussion oben). Da zumindest Monozyten-Abkömmlinge eine Quelle des CXCL8 darstellen, könnten Mistelinhaltsstoffe durchaus in vivo zu einer Hemmung der Chemotaxis neutrophiler Granulozyten führen.

In der Literatur finden sich wenige und widersprüchliche Angaben über die Beeinflussung des Migrationsvermögens neutrophiler Granulozyten durch Mistelinhaltsstoffe. So beschrieb SCHMIDT (1989) eine Steigerung der Chemotaxis von Granulozyten nach Inkubation mit Mistelgesamtextrakt (Helixor®). Andere Untersuchungen kamen dagegen zu negativen Ergebnissen (WILDFEUER u.

MAYERHOFER 1994).

5.4 Ausblick

Mistelinhaltsstoffe beeinflussen im Wesentlichen bovine mononukleäre Zellen.

Dominiert zwar der zytotoxische Effekt höherer Konzentrationen, so können in niedrigen Dosen proliferationsmodulierende Effekte beobachtet werden.

Da ein Einsatz in der flankierenden Therapie neoplastischer Erkrankungen beim Rind eine eher untergeordnete Bedeutung besitzen dürfte, stellt sich die Frage eines möglichen Einsatzgebietes.

Die hier beobachteten Eigenschaften lassen diese Präparate durchaus als geeignete Modulatoren einer Immunantwort oder als adjuvante Zusatzstoffe im Rahmen von Impfungen erscheinen. Verschiedene Arbeitsgruppen haben sich mit dieser Fragestellung beschäftigt. Schon 1979 untersuchten BLOKSMA et al. die adjuvanten Eigenschaften der Mistelpräparation Iscador®. Sie fanden eine erhöhte Zellantwort in Mäusen auf eine intrakutane Immunisierung mit Schafs-Erythrozyten. Es kam zu einer schnelleren IgM-Bildung, gefolgt von einer Vermehrung der IgG- und IgA-sezernieren-den B-Zellen.

In weiteren Studien wurden Mistel-Lektine als potente Adjuvantien für die mukosale Immunisierung untersucht. Es konnte gezeigt werden, dass die intranasale Ko-applikation von Mistellektinen die Immunantwort auf Herpes simplex-Virusprotein gD2 oder Ovalbumin beeinflusst und zu höheren Titern an spezifischen Antikörpern in Seren und Sekreten führte. Alle drei Isoformen der Typ-2 Mistellektine von Viscum album L.

(ML I, ML II und ML III) erwiesen sich als effektive Adjuvantien bei intranasaler und oraler Applikation. ML I verstärkte die lokale und systemische Th-2-Antwort auf

Antigene mit einer gesteigerten antigenspezifische Proliferation und einer erhöhten IL-5-Produktion in der Milz und in zervikalen Lymphknoten. Bisher untersuchte Non-Typ-2-Lektine erwiesen sich als schlechte Antigene und Adjuvanzien bei intranasaler Applikation. (LAVELLE et al. 2000; LAVELLE et al. 2001). Auch bei der subkutanen Immunisierung erwiesen sich Mistellektine als adjuvant und die Immunantwort polarisierend (YOON 2001).

Um Miststelpräparate auf eventuelle immunstimulatorische oder immunmodulatorische Eigenschaften bei Rindern zu prüfen, wird vorgeschlagen Rinder mit einem Modellantigen mit und ohne Zusatz eines Mstelpräparates zu immunisieren. Antikörper gegen das Modellantigen sollten dann mittels ELISA nach IgG-Isotypen getrennt qualitativ und quantitativ analysiert werden.

6 Zusammenfassung

Angelika Fischer: Charakterisierung der immunmodulatorischen Wirkung von Mistelpräparaten auf Zellen des Immunsystems von Rindern

Mistelpräparate (Viscum album) besitzen immunmodulatorische Eigenschaften für humane und murine Zellen. Über die Wirkung von Mistelpräparaten auf bovine Immunzellen liegen noch keine Studien vor. In dieser Arbeit wurde daher der Einfluss von Mistelinhaltsstoffen auf Zellen des Immunsystems von Rindern geprüft. Die Beeinflussung von Absterbekinetik, Proliferationsverhalten und funktionellen Parametern boviner Leukozyten des peripheren Blutes (polymorphkernige neutrophile Granulozyten (PMN) und mononukleäre Zellen (MNC)) durch Mistelpräparate wurde untersucht. Zur Verfügung standen drei Mistelpräparate (ABNOBAviscum Mali-2, Fraxini-2 und Pini-2), die sich hinsichtlich ihres Gehaltes an Mistellektinen und Viscotoxinen unterscheiden.

Bindungsstudien zeigten, dass FITC-markierte Mistelinhaltsstoffe mit gleicher Affinität an PMN, lymphoide und monozytoide Zellen des peripheren Blutes banden.

Inhibitionsstudien mit spezifischen Zuckern belegten, dass in erster Linie Mistellektine für die Bindungsreaktionen an bovine Leukozyten verantwortlich waren.

Ein funktioneller Einfluss auf die PMN konnte nicht gezeigt werden. Die Sterberate dieser Zellen wurde in Anwesenheit der verschiedenen Mistelpräparate in unterschiedlichen Konzentrationen in Reinkulturen von PMN oder in Mischkulturen aus PMN und MNC untersucht. Keines der drei geprüften Mistelpräparate konnte nach 22 h Inkubationszeit einen beschleunigten PMN-Zelltod induzieren. Die Bildung reaktiver Sauerstoffspezies (ROS) nach rezeptorunabhängiger Stimulation mit Phorbol-Myristat-Acetat wurde nur in sehr hohen Konzentrationen schwach signifikant beeinflusst; Eine Beeinflussung der Fc-Rezeptor-abhängigen Stimulation mit opsonisierten Bakterien wurde nicht beobachtet. Auch das Migrationsvermögen der PMN, geprüft mit einem quantitativen Transmigrationsverfahren, wurde kaum beeinflusst. Dies war unabhängig

davon, ob das Mistelpräparat zusammen mit Zellen oben, oder zusammen mit dem Chemokin (rhCXCL8) unten in der Transmigrationskammer eingesetzt wurde.

Die Mistelpräparate reduzierten dosisabhängig stark die Zahl vitaler boviner mononukleärer Zellen in vitro. Am potentesten erwiesen sich die Präparate V. Fraxini und V. Mali, welche schon in einer Konzentration von 0,15 µg/mL die Anzahl vitaler Zellen signifikant reduzierten. V. Pini bewirkte erst in einer Konzentration von 150 µg/mL einen signifikanten Zellverlust. Ob MNC in Reinkultur oder zusammen mit PMN inkubiert wurden, hatte bei V. Pini auf die mistelinduzierte MNC-Absterbekinetik keinen Einfluss, V. Fraxini und V. Mali wirkten in Kokulturen erst ab 1,5 µg/mL zelltoxisch. Der zytotoxische Effekt konnte durch lektinspezifische Zucker gehemmt werden. Die Zytotoxizität bei 1,5 µg/mL betraf signifikant CD14+ Monozyten und CD8+ T-Zellen. Weniger empfindlich erwiesen sich CD4+ T-Zellen und nonT/non-B-Zellen, die erst ab 5µg/mL signifkant verstärkt abstarben.

Die durchflusszytometrische, quantitative Analyse vitaler Zellen und Blasten nach in vitro Stimulation boviner MNC belegte zunächst keinen proliferationsfördernden Einfluss subapoptotischer Mistelpräparatkonzentrationen. Nach Analyse der Zellteilungsraten mit Hilfe Carboxy-Fluorescein-succimidyl-Ester-gefärberter MNC erwies sich eine V. Fraxini-Konzentration von 0,15 µg/mL als teilungsfördernd für Superantigen-, nicht jedoch für Mitogen (Concanavalin A)-stimulierte MNC. Dies deutet darauf hin, dass Mistellektine die T-Zellrezeptor-abhängige Stimulation modulieren können.

Das beobachtete Wirkungsspektrum der untersuchten Mistelpräparate für bovine PMN und MNC weist teilweise deutliche Unterschiede zu humanen und murinen Zellen auf.

Gemeinsam ist jedoch die subtile Beeinflussung der zellulären Aktivierung besonders in niedrigen Konzentrationsbereichen. Diese Eigenschaft lassen Mistelpräparate durchaus als geeignete Modulatoren einer Immunantwort oder als adjuvante Zusatzstoffe für Impfungen erscheinen, was bereits in murinen Modellen erfolgreich belegt wurde.

7 Summary

Angelika Fischer: Characterization of immunmodulatory effects of mistletoe products on bovine immune cells

Mistletoe preparations (Viscum album) have immunomodulatory properties for human and murine cells. Up to now, no studies have been performed with bovine immune cells.

Therfore this work focuses on such effects concerning three different mistletoe preparations (ABNOBAviscum Mali-2, Fraxini-2 und Pini-2) containing varying contents of mistletoe lectins and viscotoxins.

The investigations covered the induction of cellular death, cellular proliferation and other functional properties of bovine blood leukocytes (neutrophilic granulocytes, PMN, and mononuclear cells, MNC). Inhibition assays revealed that specific sugars compete with binding of mistletoe compounds, proving that mainly lectins account for the binding to bovine leukocytes. Labelling studies proved that mistletoe lectins bind with comparable affinity and strength to all bovine leukocyte subsets.

Mistletoe products reduced significantly the numbers of viable bovine mononuclear cells. The most potent appeared to be V. Fraxini and V. Mali, killing the cells significantly at 0.15 µg/mL, followed by V. Pini (effective concentration: 150 µg/mL).

Neither MNC monoculture nor in coculture with PMN had effects on the killing induced by V. Pini. In cocultures V.Fraxini and V. Mali revealed a cytotoxic effect at a concentration higher than 1.5 µg/mL. The cytotoxic effect could be inhibited significantly by mistletoe lectin-specific sugars. Cytotoxicity at 1.5 µg/mL affected significantly CD14+ monocytes and CD8+ T cells, and at higher concentrations (5µg/mL) also CD4+ T cells and nonT/non-B cells.

In contrast none of the mistletoe products showed cytotoxic effects on PMN whether they were cultured alone or in combination with MNC. In addition, the generation of reactive oxygen species after receptor independent stimulation with phorbol myristate acetate was only moderately reduced by high concentrations of mistletoe products. No effects were seen on the Fc receptor-dependent stimulation with opsonised bacteria. The in vitro transmigration towards recombinant human CXCL8 remained largely unaffected, whether mistletoe products were used in combination with cells in the upper chamber or with rhCXCL8 in the lower chamber.

Quantitative flow cytometric analysis did not reveal a proliferation-enhancing effect of subapoptotic mistletoe product concentrations for in vitro stimulated MNC. However, analysis of cellular division rates after carboxy-fluorescein-succimidyl-ester labelling revealed that a low V. Fraxini concentration (0.15 µg/mL) enhanced the cellular division rate for superantigen-, but not for mitogen-stimulated MNC. These still preliminary data are pointing towards a modulation of the T-cell receptor-mediated stimulation by mistletoe lectins.

The observed effects on MNC are in part comparable to published findings in humans, whereas the complete lack of PMN modulation seems to be unique for cattle. The differential modulation of activation, proliferation and apoptosis of cells of the adaptive immune response indicate that mistletoe products interfere with key structures in activating and sustaining immunological responses in cattle – eventually advantageous as novel adjuvant compounds in vaccines or as mediators of immune polarization as successfully proved in murine models.

8 Literaturverzeichnis

ANTONY, S., R. KUTTAN u. G. KUTTAN (1997):

Effect of viscum album in the inhibition of lung metastasis in mice induced by B16F10 melanoma cells.

J. Exp. Clin. Cancer Res. 16, 159-162

ANTONY, S., R. KUTTAN u. G. KUTTAN (1999):

Inhibition of lung metastasis by adoptive immunotherapy using Iscador.

Immunol. Invest. 28, 1-8

ANTONY, S., R. KUTTAN u. G. KUTTAN (2000):

Role of natural killer cells in iscador mediated inhibition of metastasis by adoptive immunotherapy.

Immunol. Invest. 29, 219-231

BANTEL, H., I. H. ENGELS, W. VOELTER, K. SCHULZE-OSTHOFF u. S.

WESSELBORG (1999):

Mistletoe lectin activates caspase-8/FLICE independently of death receptor signaling and enhances anticancer drug-induced apoptosis.

Cancer Res. 59, 2083-2090

BARBIERI, L., M. G. BATTELLI u. F. STIRPE (1993):

Ribosome-inactivating proteins from plants.

Biochim. Biophys. Acta 1154, 237-282

BARBIERI, L., P. VALBONESI, E. BONORA, P. GORINI, A. BOLOGNESI u. F.

STIRPE (1997):

Polynucleotide:adenosine glycosidase activity of ribosome-inactivating proteins: effect on DNA, RNA and poly(A).

Nucleic Acids Res. 25, 518-522 BECKER, H. (1986):

Botany of European mistletoe (Viscum album L.).

Oncology 43 Suppl 1, 2-7

BECKER, H. u. J. EXNER (1980):

Vergleichende Untersuchung von Misteln verschiedener Wirtsbäume anhand der Flavonoide und Phenolcarbonsäuren.

Z. Pflanzenphysiol. 97, 417-428

BERTON, P. u. HOPKINS, J. (1996):

Ruminant cluster CD14.

Vet. Immunol. Immunpathol. 4, 245-248

BEUTH, J., H. L. KO, H. J. GABIUS u. G. PULVERER (1991):

Influence of treatment with the immunomodulatory effective dose of the

beta-galactoside-specific lectin from mistletoe on tumor colonization in BALB/c-mice for two experimental model systems.

In Vivo 5, 29-32

BLOKSMA, N., P. SCHMIERMANN, R. M. DE, D. H. VAN u. J. WILLERS (1982):

Stimulation of humoral and cellular immunity by Viscum preparations.

Planta Med. 46, 221-227

BLOKSMA, N., D. H. VAN, P. KORST u. J. M. WILLERS (1979):

Cellular and humoral adjuvant activity of mistletoe extract.

Immunobiology 156, 309-318

BRAUN, J. M., H. L. KO, J. M. SCHIERHOLZ, D. WEIR, C. C. BLACKWELL u. J.

BEUTH (2001):

Application of standardized mistletoe extracts augment immune response and down regulates metastatic organ colonization in murine models.

Cancer Lett. 170, 25-31 BÜSSING, A. (2001):

Viscum album L.-Mechanismen der Zytotoxizität.

In: Die Mistel in der Tumortherapie. Grundlagenforschung und Klinik Herausg.: R. Scheer, R. Bauer, H. Becker, P. A. Berg, V. Fintelmann KCV Verlag, Essen, 121-134

BÜSSING, A. u. M. SCHIETZEL (1999):

Apoptosis-inducing properties of Viscum album L. extracts from different host trees, correlate with their content of toxic mistletoe lectins.

Anticancer Res. 19, 23-28

BÜSSING, A., M. SCHIETZEL, M. SCHINK u. G. STEIN (2005):

Keine Stimulation in vitro kultivierter Tumorzellen durch Mistellektine.

In: Fortschritte in der Misteltherapie

Herausg.: R. Scheer, R. Bauer, H. Becker, V. Fintelmann, F. H. Kemper, H. Schilcher KVC Verlag Essen 2005, 281-290

BÜSSING, A., G. M. STEIN, U. PFÜLLER u. M. SCHIETZEL (1999):

Induction of Fas ligand (CD95L) by the toxic mistletoe lectins in human lymphocytes.

Anticancer Res. 19, 1785-1790

BÜSSING, A., K. SUZART u. K. SCHWEIZER (1997):

Differences in the apoptosis-inducing properties of Viscum album L. extracts.

Anticancer Drugs 8, 9-14

CLIFFORD, D. P. u. J. E. REPINE (1982):

Hydrogen peroxide mediated killing of bacteria.

Mol. Cell Biochem. 49, 143-149

COLIGAN, J. E., A. M. KRUISBEEK, MARGULIES D.H, SHEVACH E.M. u.

STROBER W. (Herausg.) (1992):

Current protocols in immunologie.

Verlag Johan Wiley & Sons, New York, Chichester, Brisbane, Toronto, Singapore DANIELS, M.A., K. A. HOGQUIST u. S.C. JAMESON (2002):

Sweet 'n' sour: the impact of differential glycosylation on T cell responses.

Nat. Immunol. 10, 903-910

DEBRAY, H., J. MONTREUIL u. H. FRANZ (1994):

Fine sugar specificity of the mistletoe (Viscum album) lectin I.

Glycoconj. J. 11, 550-557

DOSER, C., M. DOSER, H. HULSEN u. F. MECHELKE (1989):

Influence of carbohydrates on the cytotoxicity of an aqueous mistletoe drug and of purified mistletoe lectins tested on human T-leukemia cells.

Arzneimittelforschung 39, 647-651

EDLUND, U., A. HENSEL, D. FROSE, U. PFULLER u. A. SCHEFFLER (2000):

Polysaccharides from fresh Viscum album L. berry extract and their interaction with Viscum album agglutinin I.

Arzneimittelforschung 50, 645-651

ELSÄSSER-BEILE, U., S. LUSEBRINK, T. GRUSSENMEYER, U. WETTERAUER u. W. SCHULTZE-SEEMANN (1998):

Comparison of the effects of various clinically applied mistletoe preparations on peripheral blood leukocytes.

Arzneimittelforschung 48, 1185-1189

ELSÄSSER-BEILE, U., M. VOSS, R. SCHUHLE u. U. WETTERAUER (2000):

Biological effects of natural and recombinant mistletoe lectin and an aqueous mistletoe extract on human monocytes and lymphocytes in vitro.

J. Clin. Lab Anal. 14, 255-259

EMMENDÖRFFER, A., M. HECHT, M. L. LOHMANN-MATTHES u. J. ROESLER (1990):

A fast and easy method to determine the production of reactive oxygen intermediates by human and murine phagocytes using dihydrorhodamine 123.

ENDO, Y., K. TSURUGI u. H. FRANZ (1988):

The site of action of the A-chain of mistletoe lectin I on eukaryotic ribosomes. The RNA N-glycosidase activity of the protein.

FEBS Lett. 231, 378-380

FISCHER, S., A. SCHEFFLER u. D. KABELITZ (1997):

Oligoclonal in vitro response of CD4 T cells to vesicles of mistletoe extracts in mistletoe-treated cancer patients.

Cancer Immunol. Immunother. 44, 150-156

FISCHER, S., A. SCHEFFLER u. D. KABELITZ (1996):

Reaktivität von T-Lymphozyten gegenüber Mistelinhaltstoffen.

In: Grundlagen der Misteltherapie. Aktueller Stand der Forschung und klinische Anwendung

Herausg.: R. Scheer, H. Becker, P. A. Berg Hippokrates Verlag GmbH, Stuttgart, 213-223 FRANZ, H. (1985):

Ingredients of mistletoe (Viscum album L.) as potential drugs.

Pharmazie 40, 97-104 FRANZ, H. (1986):

Mistletoe lectins and their A and B chains.

Oncology 43 Suppl 1, 23-34

FRANZ, H., A. KINDT, P. ZISKA, H. BIELKA, R. BENNDORF u. L. VENKER (1982):

The toxic A-chain of mistletoe lectin I: isolation and its effect on cell-free protein synthesis.

Acta Biol. Med. Ger. 41, K9-K16

FRANZ, M., S. VOLLMER, R. WACKER, S. JAGER, R. SCHEER, S. STOEVA u. W.

VOELTER (2004):

Isolation and quantification of chitin-binding mistletoe lectin from mistletoe extracts and validation of this method.

Arzneimittelforschung 54, 230-239

GARCIA, G. G., S. B. BERGER, A. A. SADIGHI AKKA u. R. A. MILLER (2005) Age-associated changes in glycosylation of CD43 and CD45 on mouse CD4 T cells.

Eur. J. Immunol. 35, 622-631 GASCOIGNE, N. R. J. (1993):

Interaction of the T cell receptor with bacterial superantigens.

Semin. Immunol. 5, 13.

GÖCKERITZ, W., R. EIFLER, R. ZIMMERMANN u. U. PFÜLLER (1995):

Mistletoe lectin targets on lymphozytes - cytofluorimetric measurements.

In: Lectins: Biology, Biochemistry, Clinical Biochemistry Textop (Dänemark) Hellerup 11 321-325

GÖCKERITZ, W., I.-J. KÖRNER, J. KOPP, J. BERGMANN, K. PFÜLLER; R.

EIFLER, u. U. PPÜLLER. (1994):

Mistletoe lectins: comparative studies on cytotoxicity, receptor binding and their effect on the cytosolic calcium content in human lymphocytes.

In: Lectins: Biology, Biochemistry, Clinical Biochemistry,

Herausg.: E. van Driessche, J. Fischer, S. Beeckmans, T. C. Bog-Hansen Textop, (Dänemark) Hellerup 10, 345-354

GOLDSCHMIDT, W. (1966):

Über die Abschätzung der granulozytären Funktionsreserve des Knochenmarkes mit Hilfe eines Extraktes aus Mistelbeeren (Viscum album L.).

Albert-Ludwigs-Universität Freiburg i. Brsg. 1-56, Diss.

HAAS, H. (1989):

Parabeln der Kräutermedizin. Geschichte der Heilpflanzenkunde.

Innovationsverlags-Ges. 1989 Seeheim

HAJTO, T., K. HOSTANSKA, K. FREI, C. RORDORF u. H. J. GABIUS (1990):

Increased secretion of tumor necrosis factors alpha, interleukin 1, and interleukin 6 by human mononuclear cells exposed to beta-galactoside-specific lectin from clinically applied mistletoe extract.

Cancer Res. 50, 3322-3326

HAMPRECHT, K., R. HANDGRETINGER, W. VOETSCH u. F. A. ANDERER (1987):

Mediation of human NK-activity by components in extracts of Viscum album.

Int. J. Immunopharmacol. 9, 199-209

HEDLUND, G., M. DOHLSTEN, P.A. LANDO u. T. KALLAND (1990):

Staphylococcal enterotoxins direct and trigger CTL killing of autologous HLA-DR+

mononuclear leucocytes and freshly prepared leukemia cells.

Cell. Immunol. 129, 426-434 HENDRICKS, A. (1998):

Funktionelle Charakterisierung der Interaktion zwischen bakteriellen Superantigenen und bovinen MHC-Klasse II-Molekülen.

Tierärztliche Hochschule Hannover, Diss.

HENDRICKS, A., G. OVERESCH, W. LEIBOLD u. H.-J. SCHUBERTH (1997):

Differential zellular dynamics and cytokine induction following superantigen stimulation of bovine mononuclear cells are determined by the concentration of the Staphylococcus aureus superantigens (SEA, SEB, SEE).

Immunobiol. 197, 361-365

HOSTANSKA, K., T. HAJTO, G. C. SPAGNOLI, J. FISCHER, H. LENTZEN u. R.

HERRMANN (1995):

A plant lectin derived from Viscum album induces cytokine gene expression and protein production in cultures of human peripheral blood mononuclear cells.

Nat. Immun. 14, 295-304

HOSTANSKA, K., T. HAJTO, K. WEBER, J. FISCHER, H. LENTZEN, B.

SUTTERLIN u. R. SALLER (1996):

A natural immunity-activating plant lectin, Viscum album agglutinin-I, induces apoptosis in human lymphocytes, monocytes, monocytic THP-1 cells and murine thymocytes.

Nat. Immun. 15, 295-311

HOWARD, C. J., G. TAYLOR, u. J. BROWNLIE (1980):

Surface receptors for immunoglobulin on bovine polymorphonuclear neutrophils and macrophages.

Res. Vet. Sci. 29, 128-130

JANSSEN, O., A. SCHEFFLER u. D. KABELITZ (1993):

In vitro effects of mistletoe extracts and mistletoe lectins. Cytotoxicity towards tumor cells due to the induction of programmed cell death (apoptosis).

Arzneimittelforschung 43, 1221-1227 JORDAN, E. u. H. WAGNER (1986):

Structure and properties of polysaccharides from Viscum album (L.).

Oncology 43 Suppl 1, 8-15

JOSHI, S. S. u. H.-J. GABIUS (1993):

Measurement of intracellular calcium levels by flow cytometry following treatment of murine macrophage/monocytes.

In: Lectins and Glycobiology.

Herausg.: H.-J. Gabius, S. Gabius

Springer Verlag, Berlin, Heidelberg, New York, 362-364

JUNG, M.-L., M. FRANTZ, G. RIBEREAU-GAYON u. R. ANTON (1996):

Die Mistellektine: Einfluss von Serum und Kohlenhydraten auf die Zytotoxizität und Stimulierung der Zytokinproduktion.

In: Grundlagen der Misteltherapie. Aktueller Stand der Forschung und klinische Anwendung.

Herausg.: R. Scheer, H. Becker, P. A. Berg) Hippokrates Verlag GmbH, Stuttgart, 302-314

KAYSER, K., H. J. GABIUS, S. GABIUS u. O. HAGEMEYER (1992):

Analysis of tumour necrosis factor alpha-specific, lactose-specific and mistletoe lectin-specific binding sites in human lung carcinomas by labelled ligands.

Virchows Arch. A Pathol. Anat. Histopathol. 421, 345-349 KELTER, G. u. H.-H. FIEBIG (2005):

Ausschluss einer Tumorstimulation durch Iscador-Präparate in vitro in einem Panel von 26 humanen Tumorzelllinien.

In: Fortschritte in der Misteltherapie

Herausg.: R. Scheer, R. Bauer, H. Becker, V. Fintelmann, F. H. Kemper, H. Schilcher KVC Verlag Essen, 291-302

KHWAJA, T. A., C. B. DIAS u. S. PENTECOST (1986):

Recent studies on the anticancer activities of mistletoe (Viscum album) and its alkaloids.

Oncology 43 Suppl 1, 42-50

KHWAJA, T. A., J. C. VARVEN, S. PENTECOST u. H. PANDE (1980):

Isolation of biologically active alkaloids from Korean mistletoe Viscum album, coloratum.

Experientia 36, 599-600 KIENE, H. (1989):

Klinische Studien zur Misteltherapie karzinomatöser Erkrankungen - eine Übersicht.

Therapeutikon 33, 347-353

KLEIJNEN, J. u. P. KNIPSCHILD (1994):

Mistletoe treatment for cancer-review of controlled trials in humans.

Phytomedicine 1, 255-260

KLEIN, R., K. CLASSEN, P. A. BERG, R. LUDTKE, M. WERNER u. R. HUBER (2002a):

In vivo-induction of antibodies to mistletoe lectin-1 and viscotoxin by exposure to aqueous mistletoe extracts: a randomised double-blinded placebo controlled phase I study in healthy individuals.

Eur. J. Med. Res. 7, 155-163

KLEIN, R., K. CLASSEN, S. FISCHER, M. ERRENST, A. SCHEFFLER, G. M.

STEIN, R. SCHEER u. H. B. VON LAUE (2002b):

Induction of antibodies to viscotoxins A1, A2, A3, and B in tumour patients during therapy with an aqueous mistletoe extract.

Eur. J. Med. Res. 7, 359-367

KLETT, C. Y. u. F. A. ANDERER (1989):

Activation of natural killer cell cytotoxicity of human blood monocytes by a low molecular weight component from viscum album extract.

Arzneimittelforschung 39, 1580-1585

KOHLWEG, E., A. DIJNO, E. GALLENT, R. SCHUSSING u. R. HAMMERSCHLAG (1987):

In-vitro-Nachweis der lymphozytenstimulierenden Eigenschaften von Extrakten aus Viscum album mali.

Dtsch. Zschr. Onkol. 5, 124-126 KOVACS, E. (2000):

Serum levels of IL-12 and the production of IFN-gamma, IL-2 and IL-4 by peripheral blood mononuclear cells (PBMC) in cancer patients treated with Viscum album extract.

Biomed. Pharmacother. 54, 305-310 KOVACS, E. u. J. J. KUEHN (2002):

Measurements of IL-6, soluble IL-6 receptor and soluble gp130 in sera of B-cell lymphoma patients. Does viscum album treatment affect these parameters?

Biomed. Pharmacother. 56, 152-158 KRÜGER, C. (2001):

Funktionelle Charakterisierung der Interaktion zwischen bakteriellen Superantigenen und bovinen neutrophilen Granulozyten.

Hannover, Tierärztliche Hochschule, Diss.

KÜHN, U., U. LEMPERTZ, J. KNOP u. D. BECKER (1995):

A new method for phenotyping proliferating cell nuclear antigen positive cells using flow cytometry: implications for analysis of the immune response in vivo.

J. Immunol. Methods 179, 215-222

KUNZE, E., H. SCHULZ u. H. J. GABIUS (1998)

Inability of galactosid-spezific mistletoe lectin to inhibit N-methyl-N-nitrosourea-induced tumor development in the urinary bladder of rats and to mediate a local cellular immune response after long-term administration.

J. Cancer Res. Clin. Oncol. 124 (2), 73-87 KUO, S. M. (1996):

Antiproliferative potency of structurally distinct dietary flavonoids on human colon cancer cells.

Cancer Lett. 110, 41-48

KUTTAN, G. (1993):

Tumoricidal activity of mouse peritoneal macrophages treated with Viscum album extract.

Immunol. Invest. 22, 431-440

KUTTAN, G. u. R. KUTTAN (1992):

KUTTAN, G. u. R. KUTTAN (1992):