12.11.2008 AC – BPBS HS08 1
Analytische Chemie
für Biologie Pharmazie Bewegungs- wissenschaften und Sport
Teil Chromatographische und Elektrophoretische Trennverfahren
LC / HPLC
LC / HPLC
High-Pressure-Liquid-Chromatography High-Performance-Liquid-Chromatography
High-Price-Liquid-Chromatography
Hochdruck-Flüssigkeits-Chromatographie Hochleistungs-Flüssigkeits-Chromatographie
HPLC vs GC Apparatur Trennprinzip Mobile Phase
Säule und Stationäre Phase
Unterarten HPLC Detektoren
Dünnschichtchromatographie Wahl einer Methode
!
12.11.2008 AC – BPBS HS08 3
Warum HPLC ?
•! GC: nur Trennung von Substanzen, die sich bis ca. 300°C unzersetzt verdampfen lassen
•! Sehr polare und thermisch labile Substanzen
•! Ionische Verbindungen, Biopolymere und Polymere
•! Selektivität hängt ... ab
!!
von der stationären Phase
!!
von der mobilen Phase (Polarität, Gradientselution)
•! Stofftransport in flüssiger Phase ist deutlich langsamer (kleinere Diffusionskoeffizienten), Hochdruck ist nötig
•! Analytische, Präparative und Produktive
12.11.2008 AC – BPBS HS08 4
Apparatur
Schematisch HPLC
12.11.2008 AC – BPBS HS08 5
300 – 400 bar!
LM 10 ml/min!
(5) Vorsäule/Trennsäule!
(1b) LM Aufteilungsventil!
He/Ar
(1a) LM Behälter!
(6) Detektor!
(4) Injektorventil!
(3) Filter!
(2) Pumpe!
Eluentvorrat (Entgaser, Aufteilungsvalve)!
Pumpe (reproduzierbar und konstant Druck)!
Injektor (bestimmte Menge zur Säule)!
Filter/Vorsäule (fein Partikel)! Säule !
Detektor!
Vor- und Nach- Derivatisierungsteile!
6-Wege-Ventile
Probenschleife!
zur Säule! zur Säule!
Probe ein!
Probe aus!
Eluens! Eluens!
Probe ein!
Probe aus!
Laden ! Injizieren!
HPLC Säule
12.11.2008 AC – BPBS HS08 7
Physikalische Eigenschaften:!
•! Partikelgrösse, Form und Grössenverteilung
•! Porosität, Porengrösse, Oberfläche und Volumen
•! Stärke (mechanisch) gegen Druck und Lösungsmettel (Bruch und Deformation)
Stahlrohre porösen Partikeln (3-10 !m) HPLC Säule
L: 10-50 cm ID: 1-10 mm
SiO2: ideale SP (NP) Al2O3, ZrO2
Polymere: Copolymere von Styrol und Divinylbenzol
Trennprinzip
12.11.2008 AC – BPBS HS08 8
Normalphasenchromatographie – Adsorption/Verteilung Umkehrphasenchromatographie – Verteilung/Adsorption
Grössenausschlusschromatographie – Molekülgrösse
Ionenaustauschenchromatographie – Ionische Wechselwirkung Affinitätschromatographie – Ligand-Bindungsaffinität
Komplexierungschromatographie – Metal-Ligand-Komplexierung Chiralchromatographie – Diastereomere-Bildung
Stationäre Phase Mobile Phase Elutionsreihenfolge
der Analyten Bezeichnung
polar apolar (z.B. Hexan) apolar vor polar Normalphasen (NP) apolar Polar (z.B. Wasser) polar vor apolar Umkehrphasen
(RP: reversed-phase)
!
12.11.2008 AC – BPBS HS08 9
Klassische Theorie
!
K =
[ ]
A S[ ]
A M!
v = L t
R!
u = L t
M!
k = K V
sV
M!
k = t
R" t
Mt
M= t
R't
M!
" = K
BK
A!
" = k
Bk
A!
" = (t
R')
B(t
R')
A!
N =Neff " k+1 k
#
$ % &
' (
2
= tR'
)
#
$ % &
' (
2
" k+1 k
#
$ % &
' (
! 2
N= L H = tR2
"2 =16 tR w
#
$ % &
' (
2
!
t
R'= t
R" t
MTrennfaktor / Selektivätsfaktor Retentionsfaktor / Kapazitätsfaktor Retentionszeit / Geschwindigkeit Verteilungskoeffizient
Auflösung
!
H= L 16
w tR
"
# $ %
&
'
2
Bodenzahl und Bodenhöhe
!
R = t
B" t
Aw
B+ w
A2
= 2(t
B" t
A)
w
B+ w
A!
R = " # 1
"
$
% & ' ( ) * k
B1 + k
B* N 4
normierte Signalhöhe h
tM
tA tB
wA wB Zeit
B A
Van Deemter Gleichung
Minimaler H-Wert!
Theoretische Bodenhöhe H!
!
H = 2 " # d
p+ 2k
D# D
Mu + u # f (d
p2, d
c2)
D
M+ q # k # d
f2(1+ k)
2D
S$
% & '
( )
optimale u! Minimum H!
A! B! C!
12.11.2008 AC – BPBS HS08 11
Eddy Diffusion
A Term: die eddy Diffusion
(diese tritt nur bei gepackten Säulen auf)
! H = A + B
u + C " u
Wegen Umwanderung der Molekül durch die Partikel des Packungs-materials legen die Analyten unterschiedliche Weglängen zurück.
Ausmass Homogenität
Dichte
!
A = 2 " # " d
p dp Teilchendurchmesser! Packungsfaktor
1 2
1 2
! "
12.11.2008 AC – BPBS HS08 12
Longitudinale Diffusion
B Term: die longitudinale Diffusion
!
H = A + B
u + C " u
!
B
u = 2k
DD
Mu
DM: Diffusionskoeffizienten in der mobilen Phase, kD: Labyrinthfaktor, constant
In GC: B Term => einen entscheidenden Beitrag zu Peakverbreiterung leistet, insbesondere bei niedrigen
u
.In der LC kann der B-Term wegen der sehr
kleinen D
M-Werte ignoriert werden.12.11.2008 AC – BPBS HS08 13
Massentransport-Effekte
C Term: die Masstransfer zwischen den zwei Phasen
!
CM "u= f(dp2,dc2)u DM
In der mobilen Phase In HPLC, klein DM =>
grosse CM
!
C " u = C
S" u + C
M" u
Gleichgewichtseinstellung zwischen S/M Phasen benötigt Zeit => da die mobile Phase aber in Bewegung ist, kann sich der Gleichgewichtszustand nicht vollständig einstellen => Zunahme der Höhe eines theoretischen Boden (HETP)
!
H = A + B
u + C " u
!
C
S" u = qk " d
f2" u
(1 + k)
2" D
S!
C
S" u = 2t
d" k " u (1 + k)
2Gleichgewichts einstellung
In flüssigstationären Phase Filmdicke df und DS
In feststationären Phase
sehr klein Desorptions-
geschwindigkeit td "0 HETP
u
Mobile Phase
Reinheit, Inert, Preis
Korrosionsbeständigkeit, Toxizität
UV–Durchlässigkeit, Brechungsindex Mischbarkeit
Haltbarkeit
!!
Elutionsstärke
!!
Selektivität Polarität, Viskosität!
Reihenfolge der Lösungsmittel nach zunehmender Polarität
12.11.2008 AC – BPBS HS08 15
n-Heptan, n-Hexan, Cyclohexan, Isooctan Tetrachlorkohlenstoff
Toluen, Chlorbenzen, Benzen
Diethylether, Chloroform, Dichlormethan 1-Butanol, Pyridin, Acetonitril, 2-Propanol Ethylacetat, Dimethylsulfoxid, Aceton Ethanol, Methanol, Dimethylformamid Wasser, wässrige Pufferlösungen
Polarität von Molekülen
12.11.2008 AC – BPBS HS08 16
Eluent–Gradient
12.11.2008 AC – BPBS HS08 17
Gradiententrennung: Eluent wird während des Laufs verändert.
Isokratische Trennung: Eluent bleibt während des Laufs unverändert.
Stationäre Phase
Original SiO
2, Al
2O
3: Polare OH-Gruppe
Si OH
Si R2
Cl R
R1
Modifikation:
Si R1
R2 R Si
O
Si
OH HN[Si(CH3)3]2
Entcapping:
Si(CH3)3 Si
O
19.11.2008 AC – BPBS HS08 19
Normalphase (NP)
O Si R1
R2
CN
O Si R1
R2
NH2
O Si R1
R2
O OH
OH
Cyano (C3–CN)
Modifizierte polare NP:
Amino (C3–NH2)
Diol (C3–OCH2CH(OH)CH2(OH)
12.11.2008 AC – BPBS HS08 20
Modifizierte NP-Säule
Nonpolare Mobile Phase
z.B., Kohlenwasserstoff
Hydrophile Eigenschaft
12.11.2008 AC – BPBS HS08 21
Umkehrphase (RP)
O Si R1
R2 R
R = C1 – C18
Straight-chain hydrocarbons (C18, C12, C8 C6, C4, C3, C2, C1)!
Cyclohexyl, Phenyl, Alkylphenyl!
O Si R1
R2 O Si
R1
R2
O Si R1
R2
Unpolare Modifikation durch Kohlenwasserstoffketten
Umkehrphase (Reversed Phase, RP)
Si CH3
CH3 (CH2)17
R = CH3
Hydrophobe Eigenschaft
12.11.2008 AC – BPBS HS08 23
Spezialphase: IC-Harze
Kationentrennung Anionentrennung
Sulfonsäuren: –SO3– H+ Quartäre Amine: –N(CH3)3+ OH– Carbonsäuren: -CO2– H+ Primäre Amine: –NH3+ OH–
!
Alkylketten + Endgruppe Austauschharze:
Si OH
Si R2
Cl R
R1
Modifikation:
Si R1
R2 R Si
O
12.11.2008 AC – BPBS HS08 24
Detektoren für HPLC
•! Brechungsindex-Detektor (RID)
•! UV/Vis-Absorption-Detektor (UVD)
•! Lichtstreudetektor (ELSD)
•! Fluoreszenzdetektor
•! Elektrische Leitfähigkeitsdetektor (für Ionen)
•! Massenspektrometrie (MS)
•! IR, NMR (stop-flow technique)
"!
Nachweisgrenze
"!
Linearer Messbereich
"! Kompatibilität mit der mobilen Phase
"!
Selektivität
"!
Flexibilität, Robustheit, Preis
12.11.2008 AC – BPBS HS08 25
UV/vis-Detektor
Variiert # oder PDA (Photodiodenarray) um ein ganzes UV- Spektrum aufzu- nehmen
Br, I, S Carbonyl Konjugierte Aromatische
Fluoreszenzdetekor
Nachweisgrenze +++
Linearbereich +++
Nur einsetzbar für:
•! Nativ
fluoreszierenden Substanzen
•! Nach derivati- sierung nicht- fluoreszierender Analyten mit einem Fluoreszenz-
marker
12.11.2008 AC – BPBS HS08 27
Massenspektrometrische Detektor
Interface – LC und MS!
Senkrecht!
Offline!
räumlich
zeitlich
12.11.2008 AC – BPBS HS08 28
Brechungsindex-Detektor
refractive index detectors, RID
Universell, aber geringe Empfindlichkeit wegen kleiner RID-Unterschied von LM und Analytenmolekülen
12.11.2008 AC – BPBS HS08 29
Verdampfungs-Lichtstreudetektor ELSD
EBULIZE ELUENT AND SELECT SMALL
DROPLETS TO MINIMIZE BACKGROUND NOISE
EVAPORATE AT LOW TEMPERATURE
DETECT LIGHT SCATTERING
Universell einsetzbarer Detektor, wenn"
•! Analytmolekül keine UV-Absorbtion "
•! Mit einem Brechungsindex-Detektor nicht detektierbar"
•! Eine Gradientenelution anstatt
isokratischen Laufmittel Partikelgrösse und -anzahl"
Partikelgrösse und -anzahl!
Charakteristika der Detektoren
Detektor Nachweisgrenze Linearer Bereich
Spezielle Eigenschaften des Analytmoleküls oder Bulk-Eigenschaften von Analytmolekül und Lösungsmittel: Nachweisgrenze, Linearer Messbereich, Kompatibität mit MP, Selektivität, Flexibilität und Robustheit, Preis.!
UV/Vis 10
–11g 10
4Fluoreszenz 10
–14g 10
5Leitfähigkeit 10
–8g.mL
–110
5MS 10
–7– 10
–9g 10
5AAS 10
–9– 10
–12g 10
3ICP-MS 10
–12– 10
–15g 10
5HPLC Trennprinzipien und Unterarten
12.11.2008 AC – BPBS HS08 31
Normalphasenchromatographie – Adsorption/Verteilung Umkehrphasenchromatographie – Verteilung/Adsorption
Grössenausschlusschromatographie – Molekülgrösse
Ionenaustauschenchromatographie – Ionische Wechselwirkung Affinitätschromatographie – Ligand-Bindungsaffinität
Komplexierungschromatographie – Metal-Ligand-Komplexierung Chiralchromatographie – Diastereomere-Bildung
Stationäre Phase Mobile Phase Elutionsreihenfolge der Analyten
Bezeichnung
polar apolar (z.B. Hexan) apolar vor polar Normalphasen (NP) apolar Polar (z.B. Wasser) polar vor apolar Umkehrphasen
(RP: reversed-phase)
!
12.11.2008 AC – BPBS HS08 32
Adsorptionschromatographie
Elutrope Reihe:
Hexan < Cyclohexan < Toluol <Dichlormethan
< Tetrahydrofuran < Acetonitril < Ethanol <
Methanol < Wasser
Probenmoleküle Reihenfolge:
Fluorierte, gesättigte Kohlenwasserstoffe <
gesättigte Kohlenwasserstoffe
< Aromaten < halogenierte Verbindungen
< Äther < Nitrile < Nitroverbindung < Ester
< Ketone < Aldehyde < primäre Amine
< Amide < Phenole < Carbonsäuren
Präparative Trennung im Labor
Feste stationäre Phase12.11.2008 AC – BPBS HS08 33
Verteilungschromatographie
Flüssige stationäre Phase
Nur chemisch-verbundene flüssige Filme
Wechselwirkungsmechanismus
schwach
stark schwach
stark
Hydrophob Hydrophil Dipol-Dipol
12.11.2008 AC – BPBS HS08 35
Trennung bei NP/RP Säulen
Unpolare Analyten erst eluiert Polare Analyten erst eluiert
12.11.2008 AC – BPBS HS08 36
Ionenchromatographie (IC)
"! Ionenaustauschchromatographie (Ion Exchange Chromatography)
"! Ionenpaarchromatographie (Ion Pair Chromatography)
"! Ionenausschlusschromatographie (Ion Exclusion Chromatography)
Schnelligkeit, Empfindigkeit, Selektiivität, und Simultanität
Organische Polymere als Trägermaterial, hohen pH-Stabilität; frei vom ionische Verunreinigungen aus Edelstahl und korrosive
Elutionsmittel zu vermeiden
Detektor – Leitfähigkeitsdetektor häufig, aber alle andere Detektoren auch einsetzen können
Suppressor: Reduktion der Grundleitfähigkeit auf minimalen Wert und Erhöhung des Signal/Untergrund Verhältnisse
Mobile Phase: Wasser oder Puffer (mit pH)
12.11.2008 AC – BPBS HS08 37
Ionenaustauschchromatographie (IC)
Stationäre Phase mit funktionellen Gruppen
•! SO3–H+ (Sulfonsäure): stark saurer Kationenaustauscher, pH 2 – 14
•! COO–H+ (Carbonsäure): schwach saurer Kationenaustauscher, pH 8 – 14
•! NR3+OH– (quaternäres Amin): stark basischer Anionenaustauscher, pH 0 – 10
•! NR2 (tertiäres Amin): schwach basischer Anionenaustauscher, nur bei niedrigem, pH 0 – 6.
Ionenaustauschschromatographie
Beispiel stark saurer Kation- enaustauscher:
Harz-SO3H + M+(aq) " Harz- SO3M + H+(aq)
Der Selektivitätskoeffizient S für den Austausch zweier verschiedener Metallionen ist gegeben durch den Quotienten der entsprechend- en Gleichgewichtskonstanten K:
S(M1/M2) = K(M1)/K(M2) More highly charged
molecules are more tightly bound to the resin, and so travel slowly and are eluted later.
Moderately charged molecules equilibrating between the resin and the moving buffer more readily.
Less charged molecules bind less strongly to the resin, equilibrate with the moving buffer more readily, and so travel rapidly and are eluted faster.
12.11.2008 AC – BPBS HS08 39
Elutionsreihenfolge
Elutionsreihenfolge für Kationen:
Ba2+ < Ca2+ < Zn2+ < Mg2+ < Cs+ < Rb+ < K+ < NH4+ < Na+ < H+ < Li+
Elutionsreihenfolge für Anionen:
Citrat (COO
–)
3< Sulfat < Oxalat (COO
–)
2< Iodid < Nitrat (NO
3–) <
Phosphat < Bromid < Nitrit (NO
2–) < Chlorid <Acetat < Hydroxid
MP: Wasser, Puffer (gewisser pH-Werte einstellen) Leitfähigkeitsdetektor mit Supressionsäulen
12.11.2008 AC – BPBS HS08 40
Leitfähigkeitsdetektor
•! Universell für Ionenchromatographie
•! Grundleitfähigkeit des Eluenten wird durch Suppressortechnik erniederigt, um die Nachweisgrenzen zu senken.
!
" = "
0# $ % C
Harz-NR3OH + H+ + Cl– ––> Harz-Cl + H2O Harz-SO3H + Na+ + HCO3– ––> Harz-Na + H2CO3
Für Kationenanalytik, Suppressorsäule mit OH– beladen : Für Aionenanalytik, Suppressorsäule mit Protonen beladen:
Harz-SO3H + Na+ + Cl– ––> Harz-Na + H++ Cl– Harz-SO3H + Na+ + Br– ––> Harz-Na + H++ Br–
12.11.2008 AC – BPBS HS08 41
Suppressor
Suppressor (Kation-Typ)
Harz-SO3H + Na+ + HCO3– ––> Harz-Na + H2CO3 Harz-SO3H + Na+ + Cl– ––> Harz-Na + H+ + Cl– Harz-SO3H + Na+ + Br– ––> Harz-Na + H+ + Br– Grundleitigkeit zu erniedrigen
Analyt-signal zu verstärken
# (H+) = 350
# (Na+) = 50 Beispiel von Cl– and Br–
NaHCO3– als Eluent
Gelpermeationschromatographie (GPC)
Grössenausschluss-Chromatographie/Size Exclusion Chromatography
Mechanismus: Grösse / Molekularer Radius
SP:
5 – 100,000 nm Ausschluss-Limit Eindringen-Limit Geeignet für
10% Unterschied in MW
Kein Wechselwirkung
Biopolymer, Polymer
Organische Moleküle
12.11.2008 AC – BPBS HS08 43
12.11.2008 AC – BPBS HS08 44
Größenausschlusschromatographie
!
t
R" 1 log
10MW
CH
3(CH
2)
nCOOH
12.11.2008 AC – BPBS HS08 45
Dünnschichtchromatographie (HPTLC)
DC-laufmitteltest
Wahl der DC Platte
Probeauftragen Laufmitteltest
Entwicklung Detektion
Normal Silica / Alumina TLC, HPTLC plates C 18-50 (50% silanization) and C–18-100 (100% silanization) with fluorescent indicator
Entwicklung der DC
Laufmittel
Wahl des Laufmittels
(Rein oder Gemisch)
Entwicklung
12.11.2008 AC – BPBS HS08 47