Normovolämie Blutplasma
DURCHGANG 1 Blut 1
Blutserum
DURCHGANG 1 Blut 1
osmotischer Druck Plasma
DURCHGANG 1 Blut 1
kolloidosmotischer Druck Plasma
DURCHGANG 1 Blut 1
Plasmaproteine Gesamtkonzentration
DURCHGANG 1 Blut 1
α1-Globuline
DURCHGANG 1 Blut 1
Albumin
Blut - Blutzellen 4-6 l Blut
6-8 % des Körpergewichts
285 mosmol/kg Plasmawasser Blutplasma - Fibrin/Fibrinogen
25 mmHg
• Anteil: 60%
• Funktion: Transport von - Calcium
- Bilirubin - Fettsäuren
• Syntheseort: Leber
• Anteil: 4 %
• Beispiele:
- HDL (α1-Lipoprotein) - Prothrombin
• Syntheseort: Leber
ca. 70 g/l
α2-Globuline
DURCHGANG 1 Blut 1
Hämatopoiese pluripotente Stammzelle
Wachstumsfaktoren Aufteilung der Stammzelle
DURCHGANG 1 Blut 1
Erythropoiese
DURCHGANG 1 Blut 1
Oligozythämie DURCHGANG 1 Blut 1
γ-Globuline
DURCHGANG 1 Blut 1
Dysproteinämie β-Globuline
DURCHGANG 1 Blut 1
Polyzythämie
• Anteil: 8 %
• Beispiele:
- α2-Makroglobulin - α2-Haptoglobin - Caeruloplasmin
• Syntheseort: Leber
Änderung der
Plasmaproteinzusammensetzung bei Krankheit
pathologisch erhöhte Vermehrung der Blutzellen
• hämatopoietische Stammzelle: CD 34+
• Wachstumsfaktoren:
- Epo
- CSF (Colony-stimulating-factors)
• Aufteilung:
- lymphatische Stammzelle: Lymphozyten - myeloische Stammzelle:
‣ Erythrozyten
‣ Thrombozyten
‣ Monozyten
‣ Granulozyten
pathologisch verminderte Vermehrung der Blutzellen
• Bildungsort: rotes Mark
(Embryo: Dottersack, später Leber und Milz)
• Lebensdauer: ca. 120 Tage
• Abbauort: Milz (Makrophagen)
• Anteil: 12 %
• Beispiele:
- LDL (β-Lipoprotein) - Transferrin
- Fibrinogen
- C-reaktives Protein
• Syntheseort: Leber
• Anteil: 16 %
• Beispiele:
- Immunglobuline - Lysozym
• Syntheseort: Plasmazelle
Erythropoietin
DURCHGANG 1 Blut 1
Osmotische Eigenschaften des Erythrozyten
im hypertonen und hypotonen Medium
DURCHGANG 1 Blut 1
Mittlerer Erythrozytendurchmesser
DURCHGANG 1 Blut 1
Price-Jones-Kurve DURCHGANG 1 Blut 1
Poikilozytose
DURCHGANG 1 Blut 1
Membranaufbau des Erythrozyten Fluid mosaic Modell
Retikulozyten
DURCHGANG 1 Blut 1
Osmotische Resistenz minimal und maximal
Resistenzbreite
• Erythrozytenvorläufer
• RNA-Reste im Plasma
• Anteil: ca. 1%
• Anzahl: 0,07 x 1012/l
• Retikulozytose: erhöhte Retikulozytenzahl (= gesteigerte Erythropoiese)
• Membranskelett:
- Spectrinketten - Aktin
- Bande-4.1.-Protein
• Bande-3-Protein: Anionenkanal
• Aquaporin 1
• Ankyrin (verbindet Membranskelett und Bande-3- Protein)
• minimale osmotische Resistenz:
osmotischer Druck bei dem die ersten Erythrozyten platzen
• maximale osmotische Resistenz:
osmotischer Druck bei dem alle Erythrozyten geplatzt sind
• Resistenzbreite:
Bereich zwischen minimaler und maximaler osmoti- scher Resistenz
• hypertones Medium:
- Wasserausstrom
- Echinozyt (Stechapfelform)
• hypotones Medium:
- Wassereinstrom
- Sphärozyt (Kugelform)
bei einer Konzentration von 4,33 g/l NaCl sind 50% aller Erythrozyten osmotisch hämolysiert
• Glockenform
• Linksverschiebung: mikrozytäre Anämie
• Rechtsverschiebung: makrozytäre Anämie
• mehrere Maxima: Poikilozytose
7,5 μm
• Bildung:
- Gewebshypoxie → Aktivierung von HIF 1/2 (Hypoxie-induzierbarer Faktor)
- HIF stimuliert Epo-Expression
(peritubuläre fibroblastenähnliche Zellen)
• Wirkung:
- Bindung an Epo-Rezeptor
→ Aktivierung einer Tyrosinkinase - Apoptosehemmung der Vorläuferzellen - Stimulation der Erytrozytenproliferation
Vorkommen unterschiedlich geformter Erythrozyten
mehrere Maxima in der Price-Jones-Kurve
Erythrozytenzahl
DURCHGANG 1 Blut 1
MCV
DURCHGANG 1 Blut 1
MCH
DURCHGANG 1 Blut 1
MCHC DURCHGANG 1 Blut 1
Hämatokrit
DURCHGANG 1 Blut 1
Hämoglobin Polyglobulie
DURCHGANG 1 Blut 1
Anisozytose
erhöhte Erythrozytenzahl
: 140 : 160
g/l
gleichzeitiges Vorkommen von Mikro- und Makrozyten
85 fl
mittleres korpuskuläres Erythrozytenvolumen
•Normozyt = ca. 85 fl
• Mikrozyt < 80 fl
• Makrozyt > 96 fl
340 g/l
mittlere korpuskuläre Hämoglobinkonzentration
selten abweichend von der Norm
30 pg
mittlere korpuskuläre Hämoglobinmasse
•normochrom = ca. 30 pg
• hypochrom < 27 pg
• hyperchrom > 34 pg
: 4,8 : 5,3
x 1012/l
Wichtig: Trimenonreduktion bei Neugeborenen
: 0,42 : 0,47
Messung u.a. mittels Mikrohämatokrit-Methode
Eisenmangelanämie
DURCHGANG 1 Blut 1
Stoffwechsel der Erythrozyten
DURCHGANG 1 Blut 1
Erythrozytenzählung
DURCHGANG 1 Blut 1
Aufbau Hämoglobin DURCHGANG 1 Blut 1
Renale Anämie
DURCHGANG 1 Blut 1
Hämolytische Anämie Megaloblastäre Anämie
DURCHGANG 1 Blut 1
Panzytopenie
• hypochrome makrozytäre Anämie
• Ursache:
- Vitamin B12-Mangel (perniziöse Anämie) bei Magenerkrankungen
→ ↓ intrinsic factor (Resorption von Vit. B12) - Folsäuremangel
• veränderte Parameter:
- Hb, Erythrozyten- und Retikulozytenzahl (↓) - MCV und MCH (↑)
• Ursache:
- Thalassämie (v.a. im Mittelmeerraum) - mechanische Hämolyse
- Hämoglobinopathie
- Autoimmunreaktion gegen Erythrozyten
• verminderte Parameter:
- Erythrozytenzahl
Verminderung aller Knochenmarkszellen
• anaerob
• Glucoseaufnahme über GLUT1
• Produkte:
- NADH (für Reduktion des Methämoglobins) - NADPH (für Reduktion von Glutathion) - ATP
• aus 4 Untereinheiten
• Aufbau einer Untereinheit:
- 1 Globinkette
- 1 Häm (prosthetische Gruppe)
• Aufbau des Häms: Porphyrinring - aus 4 Pyrrolringen (mit 4 N-Atomen)
- kovalente Bindung mit proximalem Histidins des Globins
insgesamt: Anlagerung von 4 O2 möglich
• Durchflusszytometrie
• Leitfähigkeitsmessung
• hypochrome, mikrozytäre Anämie
• Ursache: Eisenmangel
- Resorptionsstörung, Mangelernährung - chronischer Blutverlust u.a.
• verminderte Parameter:
- Hb
- Erythrozytenzahl - Hkt
- MCH - MCV
• normochrome, normozytäre Anämie
• Ursache: chronische Niereninsuffizienz
→ Epo-Mangel
• verminderte Parameter:
- Erythrozytenzahl
Adultes Hämoglobin
DURCHGANG 1 Blut 1
Hämoglobin bei Sichelzellenanämie
DURCHGANG 1 Blut 1
Gesetz von Lambert-Beer
DURCHGANG 1 Blut 1
Charakteristika des Hämoglobins in der Spektral- analyse
charakteristische Absorptionsbanden und - maxima
DURCHGANG 1 Blut 1
Hämoglobin-Isoform mit 2 δ-Ketten
DURCHGANG 1 Blut 1
Fetales Hämoglobin Glykiertes Hämoglobin
Hämoglobin mit gebundener Glucose
DURCHGANG 1 Blut 1
Hämoglobinstatus Erwachsener Neugeborenes
glykiert: HbA1
Glucose: HbA1C
α2β2
HbF α2γ2
Erwachsener: 98% HbA, 2% HbA2, < 1% HbF
Neugeborenes: 80% HbF, 20% HbA
in der β-Kette ist Glutamat an Position 6 durch Valin er- setzt worden
HbS α2β2
v.a. in der desoxygenierten Form schwer löslich
→ Gefahr bei niedrigem O2-Partialdruck (z.B. im Flugzeug)
• charakteristische Absorptionsbande des Porphyrinrings: 400 nm (Soret Bande)
• Absorptionsmaxima:
- oxygeniertes Hämoglobin: 541 und 577 nm - desoxygeniertes Hämoglobin: 555 nm
desoxygeniert absorbiert Hämoglobin langwelliges Licht (≙ rot) stärker als oxygeniert
Extinktion = ε x c x d
ε = Extinktionskoeffizient c = Stoffkonzentration
d = Schichtdicke der Messlösung HbA α2β2
HbA2
α2δ2
Eisenabsorption
DURCHGANG 1 Blut 1
Diapedese
DURCHGANG 1 Blut 1
Pathophysiologie Leukozyten
DURCHGANG 1 Blut 1
Granulozyten DURCHGANG 1 Blut 1
Eisenrecycling
DURCHGANG 1 Blut 1
Leukozytenanzahl Hepcidin
DURCHGANG 1 Blut 1
Chemotaxis
• vermehrt synthetisiert bei chronischer Entzündung
• hemmt Ferroportin
• Folge: Eisenmangelanämie
4-10 x 109/l
Leukozytenanlockung durch bestimmte Stoffe (z.B. In- terleukine)
Fähigkeit von Leukozyten, Gefäßwände zu passieren
• 60 % aller Leukozyten
• Neutrophile Granulozyten:
- Granulua: Lysozym und Laktoferrin - lösen Schmerz und Entzündung aus
• Eosinophile Granulozyten:
- Granula: Lipide, antiparasitäre Proteine - aktiv bei parasitärer Infektion
• Basophile Granulozyten:
- Granula: Heparin, Histamin
- lösen allergische Symptome aus (Histamin)
• Leukozytose:
- > 10 x 109/l
- bei akuten Infekten
• Leukozytopenie:
- < 4 x 109/l
- z.B. durch chemische Noxen
• Leukämie:
- unkontrollierte Leukozytenvermehrung - unterteilt in myeloisch und lymphatisch 1. HCl des Magens setzt Fe3+ frei
2. Reduktion von Fe3+ zu Fe2+
(durch Vitamin C und Ferrireduktase) 3. Anlagerung von Fe2+ an Muzin
4. Aufnahme in Enterozyten: DCT1 (Fe2+/H+-Symporter)
5. Bindung von Fe2+ an Mobilferrin 6. Ausschleusung über Ferroportin 7. Oxidation zu Fe3+ durch Ferrooxidase 8. Bindung an Plasma-Transferrin
9. Überschüssiges Eisen bindet an Apoferritin
1.Abbau alter Erythrozyten: Eisenfreisetzung 2.Bindung an Plasma-Transferrin
3.Bindung des Transferrins an TfR (Rezeptor) der Ery- throzyten-Vorläufer (Knochenmark)
4.Endozytose des Transferrin-TfR-Komplexes 5.Abspaltung des Eisens
6.Wiedereinbau des TfR in die Zellmembran 7.Ausschleusung des Apotransferrins
(Transferrin - Eisen = Apotransferrin)
Monozyten
DURCHGANG 1 Blut 1 DURCHGANG 1 Blut 1
Lymphozyten
DURCHGANG 1 Blut 1 DURCHGANG 1 Blut 1
Aggregation
DURCHGANG 1 Blut 1
Agglomeration
DURCHGANG 1 Blut 1
Agglutination
• 20-50% aller Leukozyten
• B-Zell-System:
- Prägung: im Knochenmark
- Funktion: humolare Immunreaktion (als Plasmazelle im Gewebe)
• T-Zell-System:
- Prägung: im Thymus
- Funktion: zelluläre Immunreaktion
• 2-10% aller Leukozyten
• nach wenigen Tagen: Auswanderung ins Gewebe → Gewebsmakrophagen
• Monozyten + Makrophagen
= Mononukleäres Phagozytensystem
• Zusammenballung der Erythrozyten bei langsamer Fließgeschwindigkeit
• Erythrozyten bilden eine „Geldrollenformation“
• reversibel
• Zusammenballung der Erythrozyten aufgrund groß- molekularer Proteine (Agglomerine)
• reversibel
• Zusammenballung der Erythrozyten aufgrund einer Antigen-Antikörper-Reaktion
• irreversibel
Normovolämie Blutplasma
DURCHGANG 1 Blut 2
Blutserum
DURCHGANG 1 Blut 2
Osmotischer Druck Plasma
DURCHGANG 1 Blut 2
Blutviskosität
DURCHGANG 1 Blut 2
Kolloidosmotischer Druck Plasma
DURCHGANG 1 Blut 2
Abhängigkeit der Absinkgeschwindigkeit eines Partikels
(Stoke)
DURCHGANG 1 Blut 2
BSG Referenzwerte
Blut - Blutzellen 4-6 l Blut
6-8 % des Körpergewichts
285 mosmol/kg Plasmawasser Blutplasma - Fibrin/Fibrinogen
25 mmHg 4,5
: 6-11 mm : 3-9 mm
Absinkgeschwindigkeit steigt:
• bei zunehmendem Radius
• bei abnehmender Viskosität
• bei zunehmender Differenz der Dichten von Partikel und Flüssigkeit
Anzahl Thrombozyten Rezeptor für Fibrinogen
DURCHGANG 1 Blut 2
Thrombopoiese
DURCHGANG 1 Blut 2
Thrombozythämie
DURCHGANG 1 Blut 2
Thrombozytenaufbau
DURCHGANG 1 Blut 2
vWF
Rezeptor und Plasmabindung
DURCHGANG 1 Blut 2
Thrombozytopenie
DURCHGANG 1 Blut 2
Rezeptor für subendotheliale Matrixproteine
Ib/IX
vWF bindet im Plasma an den Faktor VIII IIb/IIIa
wichtige Pathophysiologie: Glanzmann- Thrombasthenie
150 - 400 x 109/l
Thrombopoietin aus Hepatozyten
→ Megakaryozyten
→ Proplättchen
→ Zerfall in Thrombozyten
> 600 x 109/l
Hyalomer: Aktin, Myosin
= kontraktile Filamente Granulomer: Organellzone, Granula
< 150 x 109/l
wichtiges Krankheitsbild:
thrombozytopenische Purpura Ia/IIa
Abschnitte der primären Hämostase Faktor II
DURCHGANG 1 Blut 2
Hemmstoffe der primären Hämostase
DURCHGANG 1 Blut 2
Faktor III
DURCHGANG 1 Blut 2
Vitamin K- abhängige Faktoren
DURCHGANG 1 Blut 2
Faktor IV
DURCHGANG 1 Blut 2
Faktor I
DURCHGANG 1 Blut 2
Abschnitte der sekundären Hämostase
Prothrombin
1. Thrombozytenadhäsion 2. Thrombozytenaktivierung
3. Reversible Thrombozytenaggregation 4. Irreversible Thrombozytenaggregation
(wichtig: Thrombospondin)
Gewebsthromboplastin
körpereigen:
• NO
• Prostazykline pharmakologisch:
• Acetylsalicylsäure (Aspirin)
• Antagonisten des ADP-Rezeptors
• Antikörper gegen IIb/IIIa-Rezeptor
freies Ca2+
• II
• VII
• IX
• X
Merke: 1972
Wichtig: Protein C und S werden ebenfalls Vitamin-K- abhängig in der Leber synthetisiert
1. Aktivierungsphase 2. Koagulationsphase 3. Retraktionsphase
Fibrinogen
Prothrombinaktivator Partielle Thromboplastinzeit
DURCHGANG 1 Blut 2
körpereigene
Hemmstoffe der sekundären Hämostase
DURCHGANG 1 Blut 2
Hämophilie
DURCHGANG 1 Blut 2
Thromboplastinzeit QUICK-Test
DURCHGANG 1 Blut 2
Aktivatoren des Plasminogens
DURCHGANG 1 Blut 2
INR
DURCHGANG 1 Blut 2
Hemmstoffe der Fibrinolyse
• Systemtest: intrinsisch
• Zusammensetzung:
Zitratplasma + Oberflächenaktivator + Ca2+
•
• Phospholipide
• Ca2+
• Va
• Xa
Betroffene Faktoren:
• Hämophilie A: VIII
• Hämophilie B: IX
• Antithrombin III
(hemmt: IIa, IXa-XIIa und Kallikrein)
• Thrombomodulin
(bindet Thrombin → aktiviert Protein C)
• α2-Makroglobulin
(hemmt: IIa, Plasmin und Kallikrein)
• α1-Antitrypsin
(hemmt: IIa und Plasmin)
• Gewebe-Plasminogenaktivator (t-PA)
• Urokinase
• Blutaktivatoren
(XIIa, Lysokinase, Streptokinase)
• Systemtest: extrinsisch
• Zusammensetzung:
Zitratplasma + Gewebsthromboplastin + Ca2+
• Normwert: 12 s → QUICK: 100 %
körpereigen:
• α2-Antiplasmin
• Plasminogenaktivatorinhibitoren therapeutisch:
• synthetisierte Proteasehemmstoffe z.B. Aproteinin, ε-Aminocapronsäure
• internationale Normierung des Quickwerts
• ISI = Indexangabe des Thromboplastins (Standardisierung des Thromboplastins)
• Normwert: 1
• INR = 2 → doppelt so lange Gerinnungszeit
• unter Marcumartherapie: INR erhöht
Aggregation Blutgruppe B
DURCHGANG 1 Blut 2
Agglomeration
DURCHGANG 1 Blut 2
Blutgruppe 0
DURCHGANG 1 Blut 2
Agglutination
DURCHGANG 1 Blut 2
Blutgruppe AB
DURCHGANG 1 Blut 2
Blutgruppe A
DURCHGANG 1 Blut 2
Antikörperaufbau
• spezifischer Zuckerrest: Galaktose
• Antikörper Serum: Anti-A
• Zusammenballung der Erythrozyten bei langsamer Fließgeschwindigkeit
• Erythrozyten bilden eine „Geldrollenformation“
• reversibel
• spezifischer Zuckerrest: nur Fucose-Stamm
• Antikörper Serum: Anti-A und B
• Häufigkeit: 42%
• Universalspender
• Zusammenballung der Erythrozyten aufgrund großmolekularer Proteine (Agglomerine)
• reversibel
• spezifischer Zuckerrest:
N-Acetylgalactosamin und Galaktose
• Antikörper Serum: keine
• Häufigkeit: 4% (am seltensten)
• Universalempfänger
• Zusammenballung der Erythrozyten aufgrund einer Antigen-Antikörper-Reaktion
• irreversibel
leichte Kette
schwere Kette
schwere Kette leichte Kette
variable Domäne konstante Domäne
Disulfid- bindungen
SL Grundstruktur des IgG-Antikörpers
Fc-Fragment Fab-Fragment
Antigenbindung Bindung an:
• Fc-Rezeptor
von Makrophagen,Neutrophilen, Killerzellen
• Komplementfaktor C1
• spezifischer Zuckerrest:
N-Acetylgalactosamin
• Antikörper Serum: Anti-B
• Häufigkeit: 44% (am häufigsten)
Komplementsystem Gerinnungskaskade
DURCHGANG 1 Blut 2
Protein C
DURCHGANG 1 Blut 2
Pharmakologische
Hemmstoffe der sekundären Hämostase
DURCHGANG 1 Blut 2
Zonen der Nebennierenrinde
DURCHGANG 1 Blut 2
Synthese der Glucocorticoide
DURCHGANG 1 Blut 2 DURCHGANG 1 Blut 2
! Prothrombinaktivator!
Xa Va Ca2+
Phospholipid
Prothrombin (II) Thrombin (IIa)
Fibrinogen Fibrinlöslich
Fibrinfest XIIIa
Aktivierungsphase
Koagulationsphase
Retraktionsphase
Plasminogen Plasmin Fibrinolyse
Fibrinopeptidelöslich Extrinsisches System Intrinsisches System
negativ geladene Oberflächen Präkallikrein → Kallikrein
Kininogen XIIa XII
XIa XI
IXa IX
IXa VIIIa Ca2+
Phospholipid VIII
Xa X
XIII
V Ca2+, Phospholipide aus
primärer Hämostase (Thrombozytenaktivierung)
Gewebsthromboplastin (Tissue-factor + Phospholipide)
Ca2+
VIIa VII
VIIa Phospholipid
Ca2+
Positive Rückkoppelung:
Aktivierung von V, VIII, XI und XIII
SL Blutaktivatoren
Gewebe-Plasminogenaktivator Urokinase
XII Bruchstücke Präkallikrein
C1
C2 C4
C2a
C4b C3
C3b
C2a C4b C3b
C5 C5b
C6 C7 C8 C9
C5b C6 C7 C8 C9
klassischer Weg:!
Antigen-Antikörper-Komplex
alternativer Weg:!
bakterielle Oberflächen- polysaccharide
B
D
Membranangriffskomplex mannosebindender Weg:!
mannosebindende Proteine
• Ca2+-Komplexbildner (z.B. EDTA)
• Heparin
• Kumarine
• Hemmt: Va und VIIIa
• Aktiviert durch: Thrombomodulin-gebundenes Thrombin
• wird Vitamin-K-abhängig in der Leber synthetisiert
• Kontrolle: Hypothalamus und Hypophyse
• Hypothalamus bildet: CRH
• Hypophyse bildet: ACTH
• Bildungsort ACTH:
POMC-Zellen des Vorderlappens
alle Hormone der Nebennierenrinde sind Steroidhormone
von außen nach innen:
Zona glomerulosa: Mineralcorticoide (Aldosteron) Zona fasciculata: Glucocorticoide
(Cortisol) Zona reticularis: Sexualhormone
Na+-Konzentrationen und
Gleichgewichtspotenzial
DURCHGANG 1 Nerv 1
Cl--Konzentrationen
DURCHGANG 1 Nerv 1
Ficksches Diffusionsgesetz
DURCHGANG 1 Nerv 1
Na+/K+-ATPase
DURCHGANG 1 Nerv 1
Nernst-Gleichung DURCHGANG 1 Nerv 1
Na+/Ca2+-Antiporter
K+-Konzentrationen und
Gleichgewichtspotenzial
DURCHGANG 1 Nerv 1
Ca2+-Konzentrationen
• intrazellulär: 12 mmol/l
• extrazellulär: 120 mmol/l
• erhält Energie aus der Hydrolyse von ATP
• pumpt:
- 3 Na+ von intra nach extrazellulär - 2 K+ von extra nach intrazellulär
•
• intrazellulär: 0,5 x 10-4 mmol/l
• extrazellulär: 1 (frei)
2,5 (gesamt) mmol/l
• D = Diffusionskoeffizient
(Maß für die Teilchenbeweglichkeit)
• F = Diffusionsfläche
• d = Dicke der Membran
• Δc = Konzentrationsunterschied des diffundierenden
Stoffes
Passiver Transport
• für den passiven Transport ist immer ein Gradient notwendig (Konzentration, Druck, elektrische Spannung) Diffusion
• Teilchenbewegung vom Ort hoher Konzentration zum Ort niedrigerer Konzentration
• Ursache: Brown-Molekularbewegung (Teilchen stoßen am Ort hoher Konzentration öfter zusammen)
→ Teilchen weichen gerichtet zum Ort niedrigerer Konzentration
Ficksches-Diffusionsgesetz: beschreibt die Abhängigkeit des Diffusionsstroms I von mehreren Faktoren:
• D = Diffusionskoeffizient (Maß für die Teilchenbeweglichkeit)
• F = Diffusionsfläche
• d = Dicke der Membran
• Δc = Konzentrationsunterschied des diffundierenden Stoffes Nichtionische und ionische Diffusion:
• nichtionische Diffusion: Diffusionspotenzial entsteht durch einen Konzentrationsgradienten
• ionische Diffusion: Diffusionspotenzial entsteht durch:
- Konzentrationsgradienten (chemisches Potenzial)
- elektrische Spannung durch unterschiedliche Ladungsverteilung (elektrisches Potenzial)
→ elektrochemisches Potenzial Diffusionsformen:
• einfache Diffusion: freie Diffusion eines Stoffes durch eine Membran ohne Transportprotein - gilt für lipophile Substanzen und Gase
- nicht sättigbar
• erleichterte Diffusion: Diffusion eines Stoffes mit Hilfe eines Transportproteins - ermöglicht Membranpassage für Ionen und hydophile Stoffe
- Transporter sind sättigbar (Transportrate pro Kanal ist begrenzt) → s. passive Membrantransportproteine Konvektion
• Transport von Teilchen mit Hilfe eines Trägerstoffs (z.B. O
2-Transport im Blut) Filtration
• Transport eines Stoffes entlang eines hydrostatischen Druckgradienten
• Ursache: Wasser wird parazellulär oder transzellulär durch das Epi-/Endothel „gedrückt“
• Solvent drag: durch den Wasserausstrom werden kleinmolekulare gelöste Stoffe mitgerissen
Aktiver Transport
• aktiver Transport ermöglicht den Transport von Stoffen gegen einen Gradienten mithilfe von Carriern/Pumpen
• für den „bergauf“-Transport ist Energie nötig
Transportform Prinzip Energie
primär
aktiver Transport ATPasen pumpen Stoffe gegen ihren Gradienten
aus ATP-Verbrauch
sekundär
aktiver Transport chemischer Gradient eines Stoffes wird ausgenutzt, um einen anderen Stoff gegen seinen Gradienten zu transportieren
chemische Energie eines bereits bestehenden Gradienten
(aus primär aktivem Transport) tertiär
aktiver Transport
chemischer Gradient eines Stoffes wird ausgenutzt, um einen anderen Stoff gegen seinen Gradienten zu
transportieren chemische Energie eines bereits
bestehenden Gradienten
(aus sekundär aktivem Transport) Durchgang 1: Nerv 1
49
• Verhältnis: 3 Na+ : 1 Ca2+
→ elektrogener Transport (1 positive Ladung)
• bei stark negativer Membranspannung:
→ starker Na+-Gradient nach intrazellulär
→ starker Antiport von Ca2+
→ Verringerung der intrazellulären Ca2+-Konzentration
Achtung bei mehrwertigen Ionen: z.B. Ca2+
z = 2
• intrazellulär: 12 mmol/l
• extrazellulär: 145 mmol/l
Gleichgewichtspotenzial: + 65 mV
• intrazellulär: 145 mmol/l
• extrazellulär: 4 mmol/l
Gleichgewichtspotenzial: - 92 mV
Ruhemembranpotenziale Neuron
Herzmuskelzelle Skelettmuskelzelle
Gliazelle
Aktivität eines Ionenkanals 2 Faktoren
DURCHGANG 1 Nerv 1
Spannungsgesteuerte Na+-Kanäle Aufbau
DURCHGANG 1 Nerv 1
Leitfähigkeit einer Membran für das Ion X
DURCHGANG 1 Nerv 1
Spannungsgesteuerte K+-Kanäle Aufbau und wichtige Funktionen
DURCHGANG 1 Nerv 1
Spannungsgesteuerte Ca2+-Kanäle Aufbau und wichtige Funktionen
DURCHGANG 1 Nerv 1
Glutamat-Rezeptoren iGluR
DURCHGANG 1 Nerv 1
Spannungsgesteuerte Cl--Kanäle Aufbau
• Untereinheit(en): 1
• Domänen: 4
• Transmembransegmente: 6 (α-Helizes)
• Selektivitätsfilter: zwischen S5 und S6
• Spannungssensor: S4
• Inaktivierung: IFM-Motiv
• Passage: kleines Na+ hat Passagevorteil
• Ionenstromrichtung: einwärts
• Aufbau vgl. Na+-Kanäle
wichtige Funktionen:
• Transmitterfreisetzung (P, Q, N-Typ Ca2+-Kanäle)
• elektromechanische Koppelung (L-Typ-Ca2+-Kanal)
•
abhängig von 3 Faktoren:
• Einzelkanalstromamplitude für X
• Offenwahrscheinlichkeit für X
• Anzahl der Ionenkanäle für X
• Untereinheit(en): 4
• Domänen: /
• Transmembransegmente: 6 (α-Helizes) Achtung Kir-Kanäle: 2 Transmembranhelizes
• Selektivitätsfilter: zwischen S5 und S6
• Spannungssensor: S4
• Inaktivierung: N-Typ-Inaktivierung
• Passage: Abstreifung der Hydrathülle von K+
• Ionenstromrichtung: auswärts
• Blockademechanismus: Spermin oder Mg2+
• Untereinheit(en): 2
• Domänen: /
• Transmembransegmente: 18 (α-Helizes)
• Poren: 2
• Spannungssensor: /
• Ionenstromrichtung: einwärts alle: permeabel für Na+ und K+
• NMDA-Rezeptor:
- zusätzlich aktiviert durch Glyzin - leitet auch Ca2+
- Mg2+- Block bei negativem Membranpotenzial
• AMPA-Rezeptor
• Kainat-Rezeptor
• Neuron: -70 mV
• Herzmuskelzelle: - 90 mV
• Skelettmuskelzelle: - 90 mV
• Gliazelle: - 90 mv Abhängig von 2 Faktoren:
• Einzelkanalstromamplitude
• Offenwahrscheinlichkeit
Ligandaktivierte exzitatorische Ionenkanäle
Ligandaktivierte inhibitorische Ionenkanäle
DURCHGANG 1 Nerv 1
Gq-Protein gekoppelte Rezeptoren DURCHGANG 1 Nerv 1
Metabotrope Rezeptoren
DURCHGANG 1 Nerv 1
Gi-Protein gekoppelte Rezeptoren
DURCHGANG 1 Nerv 1
Gs-Protein gekoppelte Rezeptoren
DURCHGANG 1 Nerv 1 DURCHGANG 1 Nerv 1
Serotonin-Rezeptoren
Signalkaskade Gq-Protein:
1. Aktivierung des metabotropen Rezeptors 2. Zerfall des G-Proteins
3. Untereinheiten aktivieren Phospholipase C 4. Second-messenger Kaskade über IP3, DAG und
Ca2+
wichtige Rezeptoren mit Gq-Koppelung:
• α1-Rezeptor
• V1-Rezeptor (ADH)
Signalkaskade Gs-Protein:
1. Aktivierung des metabotropen Rezeptors 2. Zerfall des G-Proteins
3. Untereinheiten aktivieren Adenylatzyklase 4. Second-messenger-Kaskade über cAMP
wichtige Rezeptoren mit Gs-Koppelung:
• β-Rezeptoren
• V2-Rezeptor (ADH)
• an ein G-Protein gekoppelt
• bei Aktivierung zerfällt G-Protein in βγ- und α-Unter- einheit
• Untereinheiten vermitteln Signale (v.a. second messenger-Kaskaden)
Signalkaskade Gi-Protein:
1. Aktivierung des metabotropen Rezeptors 2. Zerfall des G-Proteins
3. Untereinheiten inaktivieren Adenylatzyklase
4. verminderte second-messenger Kaskade über cAMP
wichtige Rezeptoren mit Gi-Koppelung:
• α2-Rezeptoren
• M2-Rezeptor (Acetylcholin)
5-HT-Rezeptoren
• 5-HT1, 5-HT2, 5-HT4 und 5-HT5: metabotrop
• 5-HT3: ionotrop
• Glutamat-Rezeptoren (NMDA, AMPA, Kainat)
• nikotinischer Acetylcholin-Rezeptore wichtig: aktiviert durch 2 Moleküle Acetylcholin
• GABA-Rezeptoren - GABAA
- GABAC
• Glyzin-Rezeptoren
Aktionspotenzial Rheobase
DURCHGANG 1 Nerv 2
Chronaxie
DURCHGANG 1 Nerv 2
Refraktärzeit
DURCHGANG 1 Nerv 2
Aktionspotenzialdauer Neuron
Skelettmuskel Herzmuskel
DURCHGANG 1 Nerv 2
Leitungsgeschwindigkeit bestimmende Faktoren
DURCHGANG 1 Nerv 2
Membranzeitkonstante
DURCHGANG 1 Nerv 2
Membranlängskonstante
minimale Reizspannung (mV) mit welcher eine Zelle überschwellig depolarisiert werden kann
absolute Refraktärzeit:
• ca. 2 ms
• Na+-Kanäle sind noch inaktiviert
• kein Aktionspotenzial möglich
relative Refraktärzeit:
• Na+-Kanäle sind teilweise wieder aktivierbar
• Aktionspotenzial ist nur mit stärkeren Reizen aus- lösbar und hat kleinere Amplitude
• allgemein: dicke Faser → schnelle Leitung
hohe Leitungsgeschwindigkeit bei:
• ↑ Membranwiderstand Rm
• ↓ innerer Längswiderstand Ri
• ↓ Membrankapazität Cm
• Neuron: ca. 1 ms
• Skelettmuskelzelle: ca. 10 ms
• Herzmuskelzelle: 200-300 ms
Entfernung der Reizweiterleitung, bei der noch 37%
des Potenzial-Ausgangswerts vorhanden sind
Zeit, in der das Membranpotenzial auf 63% des Maxi- malwerts ansteigt (Aufladung) bzw. Zeit, in der das Membranpotenzial auf 37% des Maximalwerts abfällt
(Entladung) 1. Stimulus → Vordepolarisation
2. Blockade von Kir+-Kanälen durch Spermin 3.Schwellenpotenzial (- 50 mV) wird erreicht 4. Aktivierung von Nav-Kanälen
(v.a. am Axon/Axonhügel)
5. Aufstrich und Overshoot (+ 30 mV) 6. Inaktivierung der Na+-Kanäle
Aktivierung von Kv+-Kanälen 7. Repolarisation auf -70 mV 8. Aufhebung der Sperminblockade
minimale Reizdauer, bei der ein doppelter Rheobase- Reiz noch überschwellig ist
Leitungsrichtung Fortleitungsarten von Erregung
DURCHGANG 1 Nerv 2
Leitungsblocks
DURCHGANG 1 Nerv 2
Gliazellen an Synapsen
DURCHGANG 1 Nerv 2
Signalübertragung chemische Synapse
DURCHGANG 1 Nerv 2
Beendigung der Transmitterwirkung
DURCHGANG 1 Nerv 2
Cotransmitter
DURCHGANG 1 Nerv 2
Interaktion an Synapsen
• bei unmyeliniserten Fasern: elektrotonisch (passiv/kontinuierlich)
• bei myelinisierten Fasern: saltatorisch - Internodien: passive Leitung
- Ranvier-Schnürringe: aktive Leitung (viele Nav-Kanäle)
Wichtig: die aktive Leitungsgeschwindigkeit ist propor- tional zur Wurzel des Faserradius
Astrozyten
• Umhüllung der Synapse
• Transmitteraufnahme
• Abbau des Transmitters
• Rücktransport in die Präsynapse
• Aufnahme in Astrozyten
• Diffusion ins Interstitium
• Aktionspotenzial trifft an der Präsynapse ein
• Öffnung von Cav-Kanälen
• 4 Ca2+ binden an Synaptotagmin
• Bildung des SNARE-Komplexes
• Exozytose der Transmitter
• Endozytose des leeren Vesikels durch Clathrin und Dynamin
• Transmitter binden an postsynaptische Rezeptoren
→ EPSP oder IPSP (je nach Rezeptor)
• Konvergenz und Divergenz
• Hemmung - vorwärts - rückwärts - lateral
- präsynaptisch
• Summation - räumlich - zeitlich
Neuromodulatoren:
• Neuropeptide
• ATP
• NO
- Synthese ausgelöst durch Ca2+-Einstrom - gasförmig → Diffusion durch die Membran - NO aktiviert die Guanylatzyklase
(Bildung von cGMP)
• orthodrom - physiologisch
- in Richtung des unerregten Bereichs
• antidrom
- Ausbreitung in Bereiche, die schon erregt worden sind
- wird physiologisch durch Refraktärzeit verhindert
• pathophysiologisch: Markscheideerkrankungen (z.B. Multiple Sklerose)
• pharmakologisch: Lidocain
• toxikologisch: TTX
Elektrische Synapse
SNARE-Komplex
DURCHGANG 1 Nerv 2
Myelinbildung PNS und ZNS
DURCHGANG 1 Nerv 2
DURCHGANG 1 Nerv 2 DURCHGANG 1 Nerv 2
DURCHGANG 1 Nerv 2 DURCHGANG 1 Nerv 2
• Zellen sind über Gap-junctions verbunden - 2 zusammengelagerte Konnexone
- Konnexone: aus 6 Connexin-Untereinheiten
• Potenzialänderungen der 1. Zelle bewirken Ionenstrom zwischen den Zellen
• Unterschiede zur chemischen Synapse:
- schnellere Weiterleitung - fast keine Modulation möglich - 2 mögliche Leitungsrichtungen
- geringer ausgeprägt (wichtig: Herzmuskel)
PNS: durch Schwann-Zellen
ZNS: durch Oligodendrozyten
Stammzellen der Skelettmuskulatur Aufbau der Skelettmuskulatur
DURCHGANG 1 Skelettmuskel
Zellmembran der Skelettmuskulatur
DURCHGANG 1 Skelettmuskel
Zytoplasma der Skelettmuskulatur
DURCHGANG 1 Skelettmuskel
Gleichgewichtslänge des Sarkomers
DURCHGANG 1 Skelettmuskel
Anordnung der Aktin- und Myosinfilamente
DURCHGANG 1 Skelettmuskel
A-Bande
DURCHGANG 1 Skelettmuskel
• aus vielen parallel angeordneten Bündeln von Muskelfasern
Muskelfaser
•
vielkernige einzelne Muskelzelle (randständige Kerne)• nicht mehr teilungsfähig
• in der Embryonalentwicklung aus teilungsfähigen, einkernigen Myoblasten entstanden
• Skelettmuskelregeneration nur über teilungsfähige Satellitenzellen (Stammzellen zwischen den Muskelzellen)
•
Durchmesser: 10 - 100 μm•
Länge: bis zu mehrere cm• besteht aus einem Bündel von Myofibrillen
• wird vom sog. Endomysium umhüllt (Bindegewebe, in dem Nerven und Gefäße zur Muskelfaser ziehen)
Besonderheiten in der Nomenklatur
• Zellmembran: Sarkolemm
• Zytoplasma: Sarkoplasma (zwischen den Myofibrillen)
• Endoplasmatisches Retikulum: sarkoplasmatisches Retikulum (sER)
Myofibrillen
•
Durchmesser: 1 μm•
Länge: bis zu mehrere cm(erstrecken sich über gesamte Muskelfaserlänge)
• zusammengesetzt aus vielen Sarkomeren
• sog. „Kontraktiler Apparat“
Sarkomer
•
Länge: 2,2 μm (Gleichgewichtslänge)• kleinste kontraktile Einheit
• enthält dünne Aktinfilamente
• enthält halb so viele dicke Myosinfilamente
• 1 Myosinfilament wird im Querschnitt von 6 Aktinfilamenten umgeben
• das Sarkomer besitzt mehrere charakteristische Abschnitte (im Mikroskop als Querstreifung zu erkennen) -
A-Bande: Abschnitt mit überlappenden Aktin- und Myosinfilamenten (anisotrop = doppelbrechend, dunkel)-
I-Bande: Abschnitt ohne Myosinfilamente (isotrop = weniger doppelbrechend, hell)-
H-Zone: heller Bereich im Zentrum der A-Bande‣
wird in der Mitte durch M-Linie geteilt
‣
Myosinfilamente über Myomesin an M-Linie verankert
‣
von M-Linie zieht Titin bis zur Z-Scheibe (s.u.) -
Z-Scheibe: Trennlinie in der Mitte der I-Bande‣
Abschnitt zwischen zwei Z-Scheiben = Sarkomer
‣
enthält α-Aktinin
‣
Aktinfilamente sind über α-Aktinin an der Z-Scheibe befestigt
‣
Myosinfilamente sind über Titin (größtes bekanntes Molekül) in der Z-Scheibe verankert
‣
Verbindung der Z-Scheiben über Intermediärfilamente (v.a. Desmin)
78
Muskelzelle/Muskelfaser
Myofibrille
Myofibrille
Sarkomer
Muskelzelle/Muskelfaser
Myofibrille
Myofibrille
Sarkomer
A-Bande I-Bande
I-Bande
M-Linie
H-Zone Z-Scheibe
Titin Aktinfilament Myosinfilament
Sarkomer
• parallel angeordnete Muskelfasern
• Muskelfaser = Bündel von Myofibrillen
• Myofibrillen = aus Sarkomeren
• Sarkomer = aus Aktin- und halb so vielen Myosinfilamenten
1 dickes Myosinfilament wird im Querschnitt von 6 dünnen Aktinfilamenten umgeben
2,2 μm
DURCHGANG 1: Skelettmuskel
AUFBAU DER SKELETTMUSKULATUR
• aus vielen parallel angeordneten Bündeln von Muskelfasern
Muskelfaser
• vielkernige einzelne Muskelzelle (randständige Kerne)
• nicht mehr teilungsfähig
• in der Embryonalentwicklung aus teilungsfähigen, einkernigen Myoblasten entstanden
• Skelettmuskelregeneration nur über teilungsfähige Satellitenzellen (Stammzellen zwischen den Muskelzellen)
• Durchmesser: 10 - 100 μm
• Länge: bis zu mehrere cm
• besteht aus einem Bündel von Myofibrillen
• wird vom sog. Endomysium umhüllt (Bindegewebe, in dem Nerven und Gefäße zur Muskelfaser ziehen)
Besonderheiten in der Nomenklatur
• Zellmembran: Sarkolemm
• Zytoplasma: Sarkoplasma (zwischen den Myofibrillen)
• Endoplasmatisches Retikulum: sarkoplasmatisches Retikulum (sER)
Myofibrillen
• Durchmesser: 1 μm
• Länge: bis zu mehrere cm
(erstrecken sich über gesamte Muskelfaserlänge)
• zusammengesetzt aus vielen Sarkomeren
• sog. „Kontraktiler Apparat“
Sarkomer
• Länge: 2,2 μm (Gleichgewichtslänge)
• kleinste kontraktile Einheit
• enthält dünne Aktinfilamente
• enthält halb so viele dicke Myosinfilamente
• 1 Myosinfilament wird im Querschnitt von 6 Aktinfilamenten umgeben
• das Sarkomer besitzt mehrere charakteristische Abschnitte (im Mikroskop als Querstreifung zu erkennen) - A-Bande: Abschnitt mit überlappenden Aktin- und Myosinfilamenten (anisotrop = doppelbrechend, dunkel) - I-Bande: Abschnitt ohne Myosinfilamente (isotrop = weniger doppelbrechend, hell)
- H-Zone: heller Bereich im Zentrum der A-Bande
‣ wird in der Mitte durch M-Linie geteilt
‣ Myosinfilamente über Myomesin an M-Linie verankert
‣ von M-Linie zieht Titin bis zur Z-Scheibe (s.u.) - Z-Scheibe: Trennlinie in der Mitte der I-Bande
‣ Abschnitt zwischen zwei Z-Scheiben = Sarkomer
‣ enthält α-Aktinin
‣ Aktinfilamente sind über α-Aktinin an der Z-Scheibe befestigt
‣ Myosinfilamente sind über Titin (größtes bekanntes Molekül) in der Z-Scheibe verankert
‣ Verbindung der Z-Scheiben über Intermediärfilamente (v.a. Desmin)
78
Muskelzelle/Muskelfaser
Myofibrille
Myofibrille
Sarkomer
Muskelzelle/Muskelfaser
Myofibrille
Myofibrille
Sarkomer
A-Bande I-Bande
I-Bande
M-Linie
H-Zone Z-Scheibe
Titin Aktinfilament Myosinfilament
Sarkomer
• anisotrope Bande (dunkel)
• überlappende Aktin- und Myosinfilamente Satellitenzellen
Sarkolemm Sarkoplasma
I-Bande H-Zone
DURCHGANG 1 Skelettmuskel
M-Linie Ankermoleküle
DURCHGANG 1 Skelettmuskel
Z-Scheibe Ankermoleküle
DURCHGANG 1 Skelettmuskel
Aufbau eines Myosinmoleküls
DURCHGANG 1 Skelettmuskel
Troponinkomplex
DURCHGANG 1 Skelettmuskel
Aufbau eines Aktinfilaments
DURCHGANG 1 Skelettmuskel
Verbindung des kontraktilen Apparats mit der ex- trazellulären Matrix
• Troponin C: Calcium-bindend
• Troponin I: inhibitorisch
• Troponin T: Tropomyosin-assoziiert
• 2 schwere Myosinketten
- Kopfdomäne bindet ATP und Aktin - Schwanzteil
• 4 leichte Myosinketten
(pro schwerer Kette: 2 leichte Myosinketten)
• doppelsträngige Helix aus ca. 400 Aktinmonomeren
• in den Längsrillen der Helix:
- Tropomyosin - Troponinkomplex
• isotrope Bande (hell)
• ohne Myosinfilamente
• im Zentrum der A-Bande
• in der Mitte durch M-Linie geteilt
• Myomesin verankert Myosinfilamente an der M-Linie
• Titin zieht von M-Linie zur Z-Scheibe
• α-Aktinin verankert Aktinfilamente an der
Z-Scheibe
• Titin verankert Myosinfilamente an der Z-Scheibe
• Sarkomer = Abschnitt zwischen 2 Z-Scheiben
Neuronale Erregung der Muskelfaser Neuron, Transmitter, Rezeptor,
Transmitterabbau
Motorische Endplatte
DURCHGANG 1 Skelettmuskel
Motorische Einheit
DURCHGANG 1 Skelettmuskel
Elektromechanische Koppelung
DURCHGANG 1 Skelettmuskel
T-Tubuli
DURCHGANG 1 Skelettmuskel
L-Tubuli
DURCHGANG 1 Skelettmuskel
Querbrückenzyklus Ablauf
DURCHGANG 1 Skelettmuskel
Querbrückenzyklus Ruhestellung
Kontaktstelle zwischen α-Motoneuron und Muskelfaser
1. Aktionspotenzial
2. Leitung über das T-Tubuli-System 3. Öffnung von Dihydropyridinrezeptoren
(DHPR; in den T-Tubuli)
4. Molekulare Umlagerung des DHPR 5. Aktivierung des Ryanodinrezeptors 1
(RyR1; in den L-Tubuli) 6. Ca2+-Einstrom aus dem sER 7. Querbrückenzyklus
• Zisternen des sarkoplasmatischen Retikulums (sER)
• verlaufen parallel zur Faseroberfläche
• bildet mit T-Tubuli eine Triadenstruktur
• sER = Ca2+-Speicher
• besitzen in ihrer Membran: RyR1 - Ryanodin-Rezeptor 1
- bei Aktivierung: Ca2+-Einstrom ins Sarkoplasma
• Sarkolemmeinstülpungen
• verlaufen senkrecht zur Faseroberfläche
• besitzen in ihrer Membran DHPR:
- Dihydropyridinrezeptoren - spannungsgesteuerte Ca2+-Kanäle - lagern sich bei Aktivierung um
• ATP am Myosinkopf gebunden
• Tropomyosin und Troponinkomplex blockieren Myo- sinbindungsstelle
• Neuron: α-Motoneuron
• Transmitter: Acetylcholin
• Rezeptor: nikotinischer Acetylcholinrezeptor
→ aktiviert durch 2 Moleküle Acetylcholin)
• Transmitterabbau: Cholinesterase Acetylcholin → Acetat + Cholin
alle Muskelfasern, die 1 α-Motoneuron gemeinsam in- nerviert
1. ↑ Ca2+-Konzentration: 10-7 → 10-5 mol/l 2. Ca2+ bindet Troponin C
3. Tropomyosin gibt Myosinbindungsstelle frei 4. Bindung des Myosinkopfes an Aktin 5. ATP-Hydrolyse
6. Abklappen des Myosinkopfes (90°) 7. Kraftschlag:
- Abgabe des Phosphats → 1. Teil (50°) - Abgabe des ADP → 2. Teil (45°) 8. Bindung von ATP an Myosinkopf
Änderung der Banden bei Kontraktion Ende der Kontraktion
DURCHGANG 1 Skelettmuskel
Titin
DURCHGANG 1 Skelettmuskel
Anschlagszuckung
DURCHGANG 1 Skelettmuskel
Isotonische Kontraktion
DURCHGANG 1 Skelettmuskel
Isometrische Kontraktion DURCHGANG 1 Skelettmuskel
Muskelatrophie
DURCHGANG 1 Skelettmuskel
Muskelhyperplasie
• Ca2+-ATPase pumpt Ca2+ zurück in das sER
• Auflösung der Ca2+-Bindung an Troponin C
• Tropomyosin blockiert wieder Myosinbindungsstelle
• Relaxation
• verankert Myosinfilamente an der Z-Scheibe
• größtes bekanntes Molekül
• bildet bei Dehnung passive Rückstellkräfte
erst isotonische, dann isometrische Kontraktion
z.B. Kieferschluss
Muskelverkürzung
bei gleich bleibender Muskelspannung
iso-tonisch = gleiche Spannung
• H- und I-Bande: werden schmaler (bei Dehnung breiter)
• A-Bande: bleibt konstant
Wichtig: Keine Verkürzung der Aktin- und Myosinfil- amente!
Spannungsentwicklung bei gleich bleibender Muskellänge
iso-metrisch = gleiche Länge
Zunahme der Muskelzellzahl (pathologisch)
Abnahme des Muskelvolumens (z.B. bei verminderter Belastung)
Unterstützungszuckung auxotone Kontraktion
DURCHGANG 1 Skelettmuskel
Muskelarbeit
DURCHGANG 1 Skelettmuskel
Muskelleistung
DURCHGANG 1 Skelettmuskel
Verkürzungsgeschwindigkeit (VG) bei unterschiedlichen Lasten
DURCHGANG 1 Skelettmuskel
Tetanus
DURCHGANG 1 Skelettmuskel
Verschmelzungsfrequenz
DURCHGANG 1 Skelettmuskel
Muskelhypertrophie
W/t Arbeit pro Zeit
bzw.
Last x Verkürzungsgeschwindigkeit
Leistungsmaximum:
bei Lasten, die ⅓ der maximalen isometrischen Kraft entsprechen
• Last < max. mögliche Kraft: + VG
→ konzentrische Kontraktion
• Last = max. mögliche Kraft: VG = 0
→ keine Kontraktion möglich
• Last > max. mögliche Kraft: - VG
→ exzentrische Kontraktion
Aktionspotenzialsfrequenz, bei welcher der unvollständige zum vollständigen
Tetanus wird
40 ms
Zeit 200 ms
Einzelzuckung
100 ms
unvollständiger Tetanus vollständiger Tetanus DR
Überlagerung (Superposition) von Einzelzuckungen
• unvollständiger Tetanus:
neu ausgelöste Zuckung währen der abfallenden Phase der 1. Zuckung
• vollständiger Tetanus:
neu ausgelöste Zuckung währen der aufsteigenden Phase der 1. Zuckung
Last x Hubhöhe
Rechteck im Arbeitsdiagramm
Arbeitsmaximum:
im mittleren Last-Bereich erst isometrische, dann isotonische Kontraktion
z.B. Gewichtheben gleichzeitige Änderung von
Muskelspannung und Muskellänge
z.B. bei Dehnung einer Feder
Zunahme des Muskelvolumens (z.B. durch Sprinttraining)
Rekrutierung Muskelfaser Typ I
Kontraktion, Myoglobingehalt, Farbe, Ermüdbarkeit, Training
DURCHGANG 1 Skelettmuskel
Energetik der Skelettmuskulatur
DURCHGANG 1 Skelettmuskel DURCHGANG 1 Skelettmuskel
Muskelfaser Typ IIb
Kontraktion, Myoglobingehalt, Farbe, Ermüdbarkeit, Training
DURCHGANG 1 Skelettmuskel DURCHGANG 1 Skelettmuskel
DURCHGANG 1 Skelettmuskel
• Abbau von Kreatinphosphat (Lohmann-Reaktion): anaerob
• Glucoseabbau aus Glykogen:
anaerob oder aerob
• Abbau von Triglyzeriden: aerob
Aktivierung weiterer motorischer Einheiten zur Kraft- steigerung
tonisch, Haltemuskulatur
• Kontraktion: langsam
• Myoglobingehalt: hoch
• Farbe: rot
• Ermüdbarkeit: gering
• Reaktion auf Training: Steigerung der Kapillarisie- rung und des Myoglobingehalts
→ keine deutliche Volumenzunahme
phasisch
• Kontraktion: schnell
• Myoglobingehalt: niedrig
• Farbe: weiß
• Ermüdbarkeit: schnell
• Reaktion auf Training: Zunahme der Fibrillenzahl → Zunahme des Zellvolumens
Wichtig: keine Zunahme der Zellzahl!
Ruhemembranpotenzial des Arbeitsmyokards
DURCHGANG 1 Herz 2
Aktionspotenzial an der Schrittmacherzelle
DURCHGANG 1 Herz 2
Na+-K+-ATPase DURCHGANG 1 Herz 2
Aktionspotenzial am Arbeitsmyokard
DURCHGANG 1 Herz 2
Kanäle/Ionenströme am Arbeitsmyokard
DURCHGANG 1 Herz 2
Refraktärphase des Arbeitsmyokards Ruhemembranpotenzial
der Schrittmacherzellen
DURCHGANG 1 Herz 2
Kanäle/Ionenströme der Schrittmacherzelle
- 60 mV instabil
keine K+-Einwärtsgleichrichter
• K+-Einwärtsgleichrichter: iK1
• spannungsgesteuerter Na+-Kanal:
- Aktivierung: - 70 mV - Inaktivierung: ab - 40 mV
• K+-Kanal partielle Repolarisation: ito
• Cl--Kanal partielle Repolarisation: iCl
Achtung: gilt als elektrischer Auswärtsstrom!
• L-Typ-Ca2+-Kanal: iCaL
- Aktivierung: - 40 mV
• K+-Auswärtsgleichrichter: iKs(slow) und iKr (rapid)
• absolute Refraktärphase = Plateauphase
• relative Refraktärphase = ab - 40 mV in der Repola- risationsphase
→ vulnerable Phase
(kreisende Erregungen möglich)
• HCN-Kanal: if (funny current)
- Aktivierung: durch Hyperpolarisation und cyclische Nukleotide (z.B. cAMP) - Na+-Einwärtsstrom
• T-Typ-Ca2+-Kanal: iCaT
- Aktivierung: ab - 55 mV
• L-Typ-Ca2+-Kanal: iCaL
- Aktivierung: - 40 mV
• K+-Auswärtsgleichrichter: iKs(slow)
• transportiert unter ATP-Spaltung:
- 3 Na+ aus der Zelle - 2 K+ in die Zelle
→ schafft Na+-Gradienten (außen → innen)
→ elektrogener Transport
• wird durch Digitalis (Herzglykosid) inhibiert
→ geringerer Na+-Gradient für Na+/Ca2+-Antiport
→ ↑ Ca2+ intrazellulär
→ gesteigerte Kontraktionskraft
- 90 mV stabilisiert durch K+-Einwärtsgleichrichter
1. Leichte Depolarisation auf - 70 mV 2. Aufstrich und Overshoot auf + 20 mV
- schneller iNa
3. Partielle Repolarisation auf 0 mV - ito und iCl
4. Plateauphase bei 0 mV - iCaL und ito
5. Repolarisation auf - 90 mV - iKs(slow) und iKr (rapid)
6. Stabilisierung bei - 90 mV: iK1
1. Spontane Depolarisation - if
2. Potenzialanstieg - iCaT
3. Aufstrich und Overshoot auf + 20 mV - iCaL
4. Repolarisation auf - 60 mV - iKs(slow)
Relaxations-Mechanismen am Herzmuskel
DURCHGANG 1 Herz 2
EKG Definition: Strecke
DURCHGANG 1 Herz 2
EKG Q-Zacke
DURCHGANG 1 Herz 2
EKG P-Welle
Elektromechanische Koppelung an der Herzmuskelzelle
DURCHGANG 1 Herz 2
EKG Definition: Intervall DURCHGANG 1 Herz 2
Vegetative Regulation Sympathikus
DURCHGANG 1 Herz 2
Vegetative Regulation Parasympathikus
1. Öffnung der L-Typ-Ca2+-Kanäle (Plateau-Phase) 2. Ca2+-Einstrom aktiviert Ca2+-Kanäle (RyR2) 3. Ca2+-Ausstrom aus dem sER
4. Erhöhung der intrazellulären Ca2+-Konzentration von 10-7 auf 10-5 mol/l
5. Bindung von Ca2+ an Troponin C 6.Aktin-Myosin-Interaktion
7.Kontraktion des Herzmuskels
Abschnitte, die Zacken/Wellen und Strecken enthalten Spanne zwischen Zacken oder Wellen
Vorhoferregung in Richtung Herzspitze
PQ-Strecke = vollständige Vorhoferregung
→ keine Potenzialdifferenz messbar
Ableitungsrichtung
−
+
[mV]
P-Welle
−
+
[mV]
Q-Zacke
PQ-Srecke Erregung des Ventrikelmyokards
zuerst in Richtung Herzbasis
Ableitungsrichtung
−
+
[mV]
P-Welle
−
+
[mV]
Q-Zacke PQ-Srecke
• Senkung der intrazellulären Ca2+-Konzentration - SERCA (ATPase in der sER-Membran)
- Na+/Ca2+-Antiport (Transport nach extrazellulär) - Ca2+-ATPase (Transport nach extrazellulär)
• Transmitter: Noradrenalin
• Rezeptor: β1
• Mechanismus: Aktivierung der Adenylatzyklase
→ aktiviert die PKA
→ Phosphorylierung von:
- L-Typ-Ca2+-Kanälen - RyR2
- Phospholamban (Inhibitor der SERCA)
• außerdem: Förderung des if
→ positiv chrono-, dromo-, ino-, lusitrop
• Transmitter: Acetylcholin
• Rezeptor: M2
• Mechanismus: Hemmung der Adenylatzyklase
→ verhindert Phosphorylierung von:
- L-Typ-Ca2+-Kanälen - RyR2
• außerdem: Förderung des iKAch
= hyperpolarisierender Strom
→ negativ chrono-, dromo-, inotrop
EKG S-Zacke
DURCHGANG 1 Herz 2
Goldberger-Ableitung Polarität Messebene Ableitungsrichtungen
DURCHGANG 1 Herz 2
Einthoven-Ableitung Polarität Messebene Ableitungsrichtungen DURCHGANG 1 Herz 2
PQ-Intervall Dauer
DURCHGANG 1 Herz 2
QRS-Komplex Dauer
EKG R-Zacke
DURCHGANG 1 Herz 2
EKG T-Welle DURCHGANG 1 Herz 2
QT-Intervall Dauer
Erregung des Ventrikelmyokards in Richtung Herzspitze
große Muskelmasse
−
+
[mV]
R-Zacke
< 100 ms
Repolarisation des Ventrikels
ausgehend von der Herzspitze
−
+
[mV]
QRS-Komplex S-Zacke
−
+
[mV]
T-Welle ST-Strecke
DR
< 400 ms
• Extremitätenableitung
• bipolar
• misst in der Frontalebene
• I. Ableitung: rechter Arm (-) → linker Arm (+)
• II. Ableitung: rechter Arm (-) → linker Fuß (+)
• III. Ableitung: linker Arm (-) → linker Fuß (+)
• am rechten Fuß: Erdungselektrode
• Extremitätenableitung
• unipolar (2 Extremitäten über hochohmigen Wider- stand zusammengeschlossen)
→ indifferente Elektrode
• misst in der Frontalebene
• aV = augmented voltage
• avF = rechter + linker Arm → linker Fuß
• avR = linker Arm + linker Fuß → rechter Arm
• avL = rechter Arm + linker Fuß → linker Arm Erregung des posterobasalen Teils
des linken Ventrikels von der Herzspitze weg
ST-Strecke: vollständige Ventrikel-Erregung
−
+
[mV]
QRS-Komplex S-Zacke
−
+
[mV]
T-Welle ST-Strecke
DR
< 200 ms
Indifferenztyp
DURCHGANG 1 Herz 2
Überdrehter Rechtstyp
DURCHGANG 1 Herz 2
Bradykardie Polarität Messebene Ableitungsrichtungen
DURCHGANG 1 Herz 2
Steiltyp
DURCHGANG 1 Herz 2
Rechtstyp DURCHGANG 1 Herz 2
Überdrehter Linkstyp
DURCHGANG 1 Herz 2
Linkstyp
• Brustwandableitung (V1-6)
• unipolar (Referenz in der Thoraxmitte)
• misst in der Horizontalebene
• Integralvektor senkrecht auf Elektrode
→ positiver Ausschlag
• Integralvektor von Elektrode weg
→ negativer Ausschlag
- 30° bis + 30°
+ 90° bis + 120° < - 30°
• Herzfrequenz < 50/min
• physiologisch: durch ↑ Vagotonus bei Sportlern
• pathologisch: u.a.
- durch Erkrankungen des Sinusknotens (Sick-Sinus-Syndrom)
- Störungen der AV-Überleitung
> 120°
+ 30° bis + 60°
+ 60° bis + 90°
Vorhofflattern/-flimmern
DURCHGANG 1 Herz 2
DURCHGANG 1 Herz 2 DURCHGANG 1 Herz 2
DURCHGANG 1 Herz 2 DURCHGANG 1 Herz 2
Kammerflattern/-flimmern Tachykardie
DURCHGANG 1 Herz 2
Nodale Extrasystole