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Mikrobiologie der Erdkruste
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Heribert Cypionka
Auf der Suche nach den Mikroben in
marinen Sedimenten
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→ 'Pictures' auf unserer Homepage
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Motivation
Anzahl der Prokaryoten auf der Erde 4 - 6 * 10 30 Anzahl Zellen im
Offener Ozean 1.2 * 10 29
Marine Sedimente 3.5 * 10 30
Erdboden 2.6 * 10 29
Sub-terrestrisch 0.5 – 2.5 * 10 30
Globale Biomasse der Prokaryoten 350 - 550 * 10 15 g C (60-100 % der Eukaryoten) Produktion von Zellen 1.7 10 30 a -1
Generationszeit in Sedimenten 1 - 2 * 10 3 a
Whitman WB, Coleman DC, Wiebe WJ (1998) Prokaryotes: The unseen majority. Proc. Natl,. Acad. Sci. USA 6578-6583
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'Kultivierbarkeit'
Weit über 99 % aller Bakterien an natürlichen Standorten gelten als 'unkultivierbar'.
Aber Mutter Natur hat sie an ihrem Standort wachsen lassen.
=> 'Unkultivierbarkeit' beschreibt eine Unfähigkeit von Wissenschaftlern.
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Erhaltungsstoffwechsel (Maintenance energy)
≈≈ 4 mmol ATP g -1 Trockenmasse h -1 = 4800 J d -1 (g Trockenmasse) -1
≈≈ 10 9 ATP-Cyclen pro Bakterium und Stunde
1 - 10 mM ATP im Cytoplasma, Zellvollumen 10 -16 - 10 -15 l
≈≈ 6 * 10 5 ATP-Moleküle pro Zelle
≈≈ 1 Cyclus pro sec für jedes ATP-Molekül
Seitz H-J, Cypionka H (1986) Arch Microbiol 146:63-67 Müller RH, Babel W (1996) Appl Environ Microbiol 62:147-151 Harder J (1997) FEMS Microbiol Ecol 23:39-44
Wir verstehen das (Über-)Leben in einer Population mit 10 000 Jahren Verdopplungszeit noch nicht
Erhaltungsstoffwechsel
Ein Beispiel: Aus dem Leben 'normaler' Bakterien
Ziele
Verstehen der Lebensgemeinschaft Wieviele sind da?
Wer ist da?
Wovon und wie leben sie?
Was leisten sie?
Voraussetzung: Methodische Arbeiten
Wie kann man Sedimentbakterien kultivieren?
Wie kann man die Populationen charakterisieren?
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Forschungsschiffe
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Senckenberg
Prof. Albrecht Penck
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Meteor
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JOIDES Resolution
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Kerngewinnung
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Multicorer
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Boxcorer
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Schwerelot
Bohrköpfe und Kernfänger
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Advanced Piston Corer
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Extended Core Barrel
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Mittelmeer-Sediment mit Sapropelschichten
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Mit XCB gewonnenes Kernstück
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Gasdruck
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Methanhydrat
Mit XCB gewonnene Kernstücke
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Kontaminationstests
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- Beads: fluoreszierende Kügelchen (0.5 µm Ø) als Indikatoren für Kontamination mit Drill- oder Meerwasser
- Appliziert als Päckchen mit Beads
entsprechend der Bakterienzahl in 25 m 3
Meerwasser
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Smith, D. C., Spivack, A. J., Fisk, M. R., Haveman, S. A., and Staudigel, H., 2000b. Tracer-based estimates of drilling-induced microbial contamination of deep sea crust. Geomicrobiol. J., 17: 207-219
Perfluorocarbon Tracer (PFT)
- Leicht flüchtiger, recht lipophiler Tracer, mit dem das Bohrwasser gesättigt war - Hochempfindlich im GC nachweisbar
Subcores
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Einfrieren der obersten Schicht mit Trockeneis
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Cutting device,
Modell Bristol
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ODP Cutter
'Sampling bucket', Modell Bristol
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Slurries
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Kultivierungsversuche
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Deepwell-Microtiter-Platten
Medien
- Künstliches Meerwasser
- FeS: Partikel und Reduktionsmittel
- Substratgemische in niedriger Konzentration
- [Mono] Monomere - [Poly] Polymere
- [Aro] Aromatische Verbindungen und Fettsäuren
- [Sed] Extrakt aus Wattenmeer-Sediment
- [Lac] Lactat
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Variationen
- Radiotracer-MPN
- Sulfatfreies Medium reduziert mit Ti 3+ oder Fe-Nagel - Pasteurisation, um sporulierte Zellen zu zählen - Sauerstoff für (fakultativ) aerobe Bakterien
- Background-Bakterien
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- Fe-reduzierte Kulturen mit H 2 -Blasen
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Background-Bakterien
- verbrauchen verbrauchen Sauerstoff (Reduktionsmittel) - Wasserstoff (syntrophe Hilfe für Gärer, Oxidationsmittel)
Gradienten-Kulturen
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ODP Leg 201
Deutsche ODP-Organisation:
www.bgr.de/odp
Texas: www-odp.tamu.edu
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Forschungsschiff JOIDES Resolution ODP - Ocean Drilling Program
Joint Oceanographic Institutions for Deep Earth Sampling (JOIDES)
Leg 201 C o n t r o l s o n M i c r o b i a l C o m m u n i t i e s i n D e e p l y B u r i e d S e d i m e n t s , E a s t e r n E q u a t o r i a l P a c i f i c a n d P e r u M a r g i n
This expedition of the Ocean Drilling Program will investigate the nature and extent of microbial activity in deeply buried sediments in several environments. Three fundamental questions will be addressed.
Do different microbial communities populate different sedimentary
geochemical regimes, or do these communities differ only in degree and
kinds of community activity? How does the flow of electron acceptors
through deeply buried sediments affect microbial communities and
sediment geochemistry? To what extent do paleooceanographic conditions
as preserved in deeply buried ocean sediments affect microbial
communities currently inhabiting this part of the Earth's biosphere?
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m
10 - 420 m
Temperaturen
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Aufschlämmungen
der Proben aus Site 1231
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Sulfatkonzentrationen
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Methankonzentrationen
Sedimenttiefe (m)
Methankonzentration (mM)
0 1 2
Sulfatkonzentration (mM)
0
10 20 30
Wasser Sediment
50
100
150 0
Chemische Gradienten als Hinweis auf Lebewesen
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Diffusion
F = D * A * δc/δx (1. Fick'sches Gesetz) F = Fluss
D = Diffusionskoeffizient (Durchlässigkeit) A = Fläche
δc/δx = Konzentrationsänderung (1. Ableitung)
Gradienten
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Beispiel: Diffusiver Fluss von Sauerstoff durch Wasser
Die O 2 -Konzentration ändere sich auf 4 mm von 280 µM auf 210 µM
• Diffusionskoeffizient D von O 2 in Wasser, 25 °C: 0.0792 cm 2 h -1
• A: Fläche: 1 cm 2
• Gradient δc/δx: -70 µM/0.4 cm = -175 nmol cm -4 (1 µM = 1 nmol/ml = 1 nmol cm -3 )
• Fluss F = D * A * δc/δx
= 0.0792 cm 2 h -1 * -175 nmol cm -4 = -13.9 nmol O 2 cm -2 und h -1
Gradienten
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Eine Änderung der Steigung (im steady state) zeigt Verbrauch oder Produktion des diffusiblen Stoffes an. Berechnung der
Verbrauchsrate aus der zweiten Ableitung des Gradienten.
Diffusion
Gradienten
Berechnung der O 2 - Aufnahme s. 2 Folien vorher
Sand- korn
Gradienten
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Bakterienzahlen (Acridin-Orange)
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Site 1229
© Heribert Cypionka www.icbm.de/pmbio Wovon leben die Mikroorganismen in den Tiefseesedimenten?
Sulfatreduzierende Bakterien reduzieren in einem anaeroben Atmungsprozess Sulfat zu Schwefelwasserstoff. Dazu können Wasserstoff oder organische Verbindungen als Elektronendonatoren dienen.
Gleichung 1: Sulfatreduktion
4 H2 + SO42- + 2 H+ →→ H2S + 4 H2O ∆G'0 = -158 kJ/mol
Methanogene Archaeen reduzieren in einem anaeroben Atmungsprozess Kohlendioxid zu Methan. Dazu kann ebenfalls Wasserstoff als Elektronendonator genutzt werden.
Gleichung 2: Methanogenese
4 H2 + CO2 →→ CH4 + 2 H2O ∆G'0 = -131 kJ/mol
Wie könnten diese Mikroorganismen für den Verlauf der Gradienten von Methan und Sulfat mitverantwortlich sein?
Anaerob Methan oxidierende Konsortien
Methankonzentration (mM)
0 1 2
Sulfatkonzentration (mM)
0
10 20 30
Wasser Sediment 50
100
150 0
107
Gesamtzahl der Prokaryoten pro cm3Sediment 0
Wasser Sediment 50
100
150
1081091010
Konsortium von methanogenenen Archaeen (grün) und sulfatreduzierenden Bakterien (rot) im Fluoreszenzmikroskop, Maßstab = 5 µm.
(Foto K. Ishii und R. Amann, Max Planck-Institut für marine Mikrobiologie, Bremen) Links: Tiefenprofile von Sulfat und Methan in einem Sediment vor der Küste von Peru.
In einer Tiefe von 90 m gibt es hier einen Zustrom sulfathaltigen Wassers. Rechts:
Gesamtzahl der Zellen, die nach Anfärbung der Nukleinsäuren im Fluoreszenz- Mikroskop gezählt wurden.
Sedimenttiefe (m)
Anaerobe Methanoxidation
CH4 + 2 H2O →→ 4 H2 + CO2 ∆G'0 = +131 kJ/mol 4 H2 + SO42- + 2 H+ →→ H2S + 4 H2O ∆G'0 = -158 kJ/mol Summe
CH4 + 2 H2O + SO42- + 2 H+ →→ H2S + 4 H2O + CO2 ∆G'0 = -27 kJ/mol Tatsächlich scheint nicht H2 das reduzierte Zwischenprodukt zu sein!