• Keine Ergebnisse gefunden

4. Diskussion

4.6 Wachstumshemmung oder vorzeitige Alterung

gemessen werden, Aoshiba beschreibt aber auch, dass diese Vergrößerung nach einigen Wochen reversibel war. Dennoch wurde hier von einem Emphysem gesprochen.

So kann auch spekuliert werden, dass bei Stavert, der Ratten über 25 Tage mit 35 ppm NO2

exponiert hatten und keine emphysemtypischen Veränderungen beobachten konnte (Stavert DM et al 1986), der späte Zeitpunkt der Untersuchung, zehn Wochen nach Beendigung der Exposition, für die beobachteten geringen Unterschiede zwischen Versuchstieren und Kontrolltieren in seinen Versuchen verantwortlich ist.

Aus der Beobachtung, dass es nach Erholung zu einer Angleichung des Volumen-gewichteten Alveolarvolumens gekommen ist, können wir schließen, dass der Untersuchungszeitpunkt bei der Feststellung eines Emphysem im Tiermodell maßgeblichen Einfluß hat. Dieses ist bisher aber nur in wenigen Untersuchungen berücksichtigt worden.

Die Untersuchungen wurden meist unmittelbar nach der Schädigung durchgeführt und eine eventuelle Reversibilität nicht berücksichtigt.

Lungen der Versuchstiere, eine Proliferations-Apoptose-Imbalance dennoch für die Vergrößerung verantwortlich sein, da bei geringer Ausprägung eine längere Einflusszeit besteht.

-Wachstumshemmung oder vorzeitige Alterung: Das Volumen-gewichtete Alveolarvolumen vergrößerte sich bei den Versuchstieren gegenüber den Kontrolltieren über die Dauer der Exposition. Da sich beim Volumen-gewichtete Alveolarvolumen zwischen der Versuchsgruppe, die nach 21 Tagen Exposition und nachfolgend 28 Tagen Erholung untersucht wurde und deren altersgleichen Kontrollgruppe nahezu gleiche Werte (21d NO2 ++ 7,15 x 106 ± 0,73 x 106 µm3 vs. 49d Co 6,36 x 106 ± 1,93 x 106 µm3) fanden, kann auch ein beschleunigtes Wachstum bzw. vorzeitige Alterung für diese Vergrößerung verantwortlich gemacht werden, welches sich in der Phase unter Raumluft wieder verlangsamt. Wir gehen hier von einer Annäherung der Werte des Volumen-gewichteten Alveolarvolumens aus. Da zur Charakterisierung etwaiger Wachstumsprozesse auch die Messung der Gesamtalveolaroberfläche und des Septumvolumens nötig ist, um Vergleiche zwischen den einzelnen Gruppen ziehen zu können, kann über eine Beeinflussung eines Wachstumsvorganges durch die Exposition keine genaue Aussage getroffen werden. Da aber eine Erweiterung der gesamten Gasräume ein charakteristisches Merkmal beim Altern der Ratte (Burri PH 1997), aber auch beim Menschen (Pinkerton KE et Green FHY 2004) ist und diese Erweiterung mit Zerstörung oder gar teilweise Verlust der Alveolarwandstruktur einhergeht, wäre die in unseren Versuchen gemessene Vergrößerung am ehesten einer Adaptation oder einer vorzeitige Alterung entsprechend.

So kann man festhalten, dass die Exposition mit NO2 zwar zum Verlust an Gasaustauschfläche führt, dieses aber auch in der Kontrollgruppe auftritt.

Die Gründe dieser strukturellen Veränderungen sind nicht geklärt. So kann die Proliferations-Apoptose-Imbalance nicht nur eine Rolle bei der Emphysemgenese einnehmen, sondern auch bei Adaptations- oder Alterungsvorgängen. So kann vermutet werden, dass Stickstoffdioxid durch Induktion der Apoptose oder auch direkt, durch seine oxidativen Effekte, die vorzeitige Alterung einleitet. Zudem muss berücksichtig werden, dass die Tiere in den Versuchsgruppe, deutlich wenige Gewichtszunahme als die Kontrolltiere hatten und hierdurch Reparaturvorgänge verlangsamt ablaufen können und es dadurch zu Vergrößerungen des Gasraumvolumens kommen kann.

Auch muss berücksichtigt werden, dass es Hinweise gibt, dass es im Rahmen des Alterns der Ratte auch noch fokal zur Neubildung von Alveolen bei ausgewachsenen Tieren kommen kann. Die Bedeutung dieser Neubildung von Alveolen scheint aber gering zu sein (Burri PH 2006).

Unter der Berücksichtung der erhobenen Befunde muss in unserer Untersuchungen

- 72 -

ausgegangen werden, dass die Exposition mit Stickstoffdioxid nicht zu einen Emphysem geführt hatte, sondern am ehesten zu einer vorzeitigen Alterung geführt hatte.

- 73 -

Zusammenfassung

Die chronisch obstruktive Lungenerkrankung und das Lungenemphysem werden weltweit mit steigender Tendenz diagnostiziert. Als Hauptursache für die Entwicklung eines Emphysems wird das Zigarettenrauchen verantwortlich gemacht. Doch bisher ist nicht klar, wie der Zigarettenrauch die Lunge schädigt und letztendlich bei nur 15 % der Rauchern zum Emphysem führt. Eine Theorie der Emphysemgenese besagt, dass das gehäufte Vorkommen von Apoptose für den progredienten Verlust an Alveolen mitverantwortlich ist.

Da NO2 als einer der Inhaltstoffe des Zigarettenrauchs in vitro bei Lungenepithelzellen zur Apoptose führt, galt es zu untersuchen, ob sich dies so auch in vivo darstellt. Zusätzlich galt es zu klären, ob neben dem gehäuften Vorkommen von Apoptose auch Proliferation vermehrt auftritt und ob infolge der Exposition ein Emphysem beobachtet werden kann.

Hierzu hatten wir 8-12 Wochen alte männliche Fischer 344 Ratten über 3, 7 und 21 Tage mit 10 ppm NO2 exponiert. Zusätzlich wurde eine Gruppe über 21 Tage exponiert und für 4 Wochen unter Raumluft gehalten. Es wurden jeweils altersgleiche Kontrollgruppen unter Raumluft geführt. Die Lungen wurden standardisiert über die Trachea fixiert und nach immun- bzw. enzymhistochemischer Markierung auf Proliferation (Ki67) bzw. Apoptose (TUNEL) an Paraffinschnitten quantitativ untersucht. Zur Klärung der Frage, welche Zellen der Alveolarwand apoptotisch werden, wurden apoptotische Zellen mittels Doppelmarkierung auf Alveolarepithelzellmarker und Endothelzellmarker untersucht. Die strukturellen Veränderungen des Lungenparenchyms wurden mithilfe des volume-weighted mean volume (volumen-gewichtetes mittleres Alveolarvolumen) an Methacrylat-Schnitten quantifiziert.

Durch die Exposition konnte eine gesteigerte Proliferation und Apoptose in den Versuchgruppen beobachtet werden. Dieser Anteil proliferierender bzw. apoptotischer Zellen reduzierte sich im Verlauf der Expositionsdauer. Mithilfe der Doppelmarkierung konnte gezeigt werden, dass es sich bei den apoptotischen Zellen um Alveolarepithelzellen Typ II handelt.

Das Volumen-gewichtete Alveolarvolumen der exponierten Tiere stieg mit der Dauer der Exposition und ging nach Beendigung der Exposition und Erholung unter Raumluft sogar geringfügig zurück. In den Lungen der Kontrolltieren zeigte sich altersabhängig ebenfalls eine Vergrößerung des Volumen-gewichteten Alveolarvolumens, jedoch erst mit Verspätung gegenüber den Tieren der Versuchsgruppe. Es zeigt sich hierbei kein gehäuftes Vorkommen von Apoptose und Proliferation.

- 74 -

Durch unsere Versuche konnten wir zwar nachweisen, dass die Exposition mit 10 ppm NO2

zur gehäuften Apoptose von Alveolarepithelzellen führt, jedoch nicht zum Lungenemphysem.

Zudem konnten wir zeigen, dass die strukturellen Veränderungen der Lungenarchitektur auch von der Kontrollgruppe erreicht wurden. So kann nicht ausgeschlossen werden, dass die unter Exposition mit 10 ppm NO2 beobachteten Veränderungen zu einem beschleunigten Wachstums im Sinne einer Adaptation oder sogar zu einem vorzeitigen Alterungsprozess der Lunge geführt haben.

- 75 -

Auerbach O, Stout AP, Hammond EC, Garfinkel L. Smoking habits and age in relation to pulmonary changes. Rupture of alveolar septums, fibrosis and thickening of walls of small arteries and arterioles. N Engl J Med. 1963 Nov 14;269: 1045-54.

Aoshiba K, Yokohori N, Nagai A. Alveolar wall apoptosis causes lung destruction and emphysematous changes. Am J Respir Cell Mol Biol. 2003 May;28(5):555-62.

Bardales RH, Xie SS, Schaefer RF, Hsu SM. Apoptosis is a major pathway responsible for the resolution of type II pneumocytes in acute lung injury. Am J Path 1996Sep;149(3):845-52

Barnes PJ, Karin M. Nuclear factor-kappaB: a pivotal transcription factor in chronic inflammatory diseases. N Engl J Med. 1997 Apr 10; 336(15):1066-71.

Barnes PJ. Mechanisms in COPD: differences from asthma. Chest. 2000a Feb;117(2 Suppl):10S-4S.

Barnes PJ. Chronic obstructive pulmonary disease. N Engl J Med. 2000b Jul 27;343(4):269-80.

Barnes PJ. New concepts in chronic obstructive pulmonary disease. Annu Rev Med.

2003a;54:113-29.

Barnes PJ, Shapiro SD, Pauwels RA. Chronic obstructive pulmonary disease: molecular and cellular mechanisms. Eur Respir J. 2003b Oct;22(4):672-88.

Behera D, Jindal SK. Respiratory symptoms in Indian women using domestic cooking fuels.

Chest. 1991 Aug;100(2):385-8.

Bolender RP, Hyde DM, Dehoff RT. Lung morphometry: a new generation of tools and experiments for organ, tissue, cell, and molecular biology. Am J Physiol. 1993 Dec;265(6 Pt 1):L521-48.

Burri PH. Postnatal development and growth. In The Lung: Scientific Foundations Second Edition, edited by RG Crystal, JB West et al., Lippincott-Raven Publishers, Philadelphia 1997 Burri PH. Structural aspects of postnatal lung development-alveolar formation and growth.

Biol Neonate 2006;89:313-322

- 76 -

Calabrese F, Giacometti C, Beghe B, Rea F, Loy M, Zuin R, Marulli G, Baraldo S, Saetta M, Valente M. Marked alveolar apoptosis/proliferation imbalance in end-stage emphysema.

Respir Res. 2005 Feb 10;6(1):14.

Chrysofakis G, Tzanakis N, Kyriakoy D, Tsoumakidou M, Tsiligianni I, Klimathianaki M, Siafakas NM. Perforin expression and cytotoxic activity of sputum CD8+ lymphocytes in patients with COPD. Chest. 2004 Jan;125(1):71-6.

Chrzanowski P, Keller S, Cerreta J, Mandl I, Turino GM. Elastin content of normal and emphysematous lung parenchyma. Am J Med. 1980 Sep;69(3):351-9.

Churg A, Wright JL. Proteases and emphysema. Curr Opin Pulm Med. 2005 Mar;11(2):153-9.

Coxson HO, Chan IH, Mayo JR, Hlynsky J, Nakano Y, Birmingham CL. Early emphysema in patients with anorexia nervosa. Am J Respir Crit Care Med. 2004 Oct 1;170(7):748-52. 2004 Jul 15.

Crapo JD, Barry BE, Gehr P, Bachofen M, Weibel ER. Cell number and cell characteristics of the normal human lung. Am Rev Respir Dis. 1982 Aug;126(2):332-7.

D'Agostini F, Balansky RM, Izzotti A, Lubet RA, Kelloff GJ, De Flora S. Modulation of apoptosis by cigarette smoke and cancer chemopreventive agents in the respiratory tract of rats. Carcinogenesis 2001 Mar;22(3):375-80

Demedts IK, Demoor T, Bracke KR, Joos GF and Brusselle GG. Role of apoptosis in the pathogenesis of copd and pulmonary emphysema. Respir Res. 2006 Mar 30;7:53.

Dhami R, Gilks B, Xie C, Zay K, Wright JL, Churg A. Related Articles, Links Acute cigarette smoke-induced connective tissue breakdown is mediated by neutrophils and prevented by alpha1-antitrypsin. Am J Respir Cell Mol Biol. 2000 Feb;22(2):244-52.

Diaz PT, King ER, Wewers MD, Gadek JE, Neal D, Drake J, Clanton TL. HIV infection increases susceptibility to smoking-induced emphysema. Chest. 2000 May;117(5 Suppl 1):285S

- 77 -

Di Stefano A, Turato G, Maestrelli P, Mapp CE, Ruggieri MP, Roggeri A, Boschetto P, Fabbri LM, Saetta M. Airflow limitation in chronic bronchitis is associated with T-lymphocyte and macrophage infiltration of the bronchial mucosa. Am J Respir Crit Care Med. 1996 Feb;153(2):629-32.

Di Stefano A, Caramori G, Capelli A, Gnemmi I, Ricciardolo FL, Oates T, Donner CF, Chung KF, Barnes PJ, Adcock IM. STAT4 activation in smokers and patients with chronic obstructive pulmonary disease. Eur Respir J. 2004a Jul;24(1):78-85.

Di Stefano A, Caramori G, Ricciardolo FL, Capelli A, Adcock IM, Donner CF. Cellular and molecular mechanisms in chronic obstructive pulmonary disease: an overview. Clin Exp Allergy. 2004b Aug;34(8):1156-67.

Dorph-Petersen KA, Nyengaard JR, Gundersen HJ. Tissue shrinkage and unbiased stereological estimation of particle number and size. J Microsc. 2001 Dec; 204(Pt 3): 232-46.

Evans MJ, Stephens RJ, Cabral LJ, Freeman G. Cell renewal in the lungs of rats exposed to low levels of NO2. Arch Environ Health. 1972 Mar;24(3):180-8.

Fabbri L, Peters SP, Pavord I, Wenzel SE, Lazarus SC, Macnee W, Lemaire F, Abraham E.

Allergic rhinitis, asthma, airway biology, and chronic obstructive pulmonary disease in AJRCCM in 2004. Am J Respir Crit Care Med. 2005 Apr 1;171(7):686-98.

Fehrenbach A, Ochs M, Wittwer T, Cornelius J, Fehrenbach H, Wahlers T, Richter J.

Stereological estimation of the volume weighted mean volumes of alveoli and acinar pathways in the rat lung to characterise alterations after ischaemia/reperfusion. J Anat. 1999 Jan;194 ( Pt 1):127-35.

Fehrenbach und Ochs 1998, Studying lung ultrastructure in Methods in Pulmonary Research, Uhlig S. and Taylor AE, Birkhäuser Verlag Basel 1998

Fehrenbach H. Animal models of chronic obstructive pulmonary disease: some critical remarks. Pathobiology. 2002-2003;70(5):277-83.

Finkelstein R, Fraser RS, Ghezzo H, Cosio MG. Alveolar inflammation and its relation to emphysema in smokers. Am J Respir Crit Care Med. 1995 Nov;152(5 Pt 1):1666-72.

- 78 -

Freeman G, Furiosi NJ, Haydon GB. Effects of continuous exposure of 0.8 ppm NO2 on respiration of rats. Arch Environ Health. 1966 Oct;13(4):454-6.

Freeman G, Crane SC, Stephens RJ, Furiosi NJ. Pathogenesis of the nitrogen dioxide-induced lesion in the rat lung: a review and presentation of new observations. Am Rev Respir Dis. 1968 Sep;98(3):429-43.

Frasca JM, Auerbach O, Carter HW, Parks VR. Morphologic alterations induced by short-term cigarette smoking. Am J Pathol. 1983 Apr;111(1):11-20

Gehr P, Bachofen M, Weibel ER. Respir Physiol. 1978 Feb;32(2):121-40.The normal human lung: ultrastructure and morphometric estimation of diffusion capacity. Respir Physiol. 1978 Feb;32(2):121-40.

Gross P, Hatch T. Pulmonary clearance: its mechanism and its relation to pulmonary disease. J Occup Med 1963 Apr; 191-4

Gross P, Babjak MA, Tolker E, Kaschak M. Enzymatically produced pulmonary emphysema;

a preliminary report. J Occup Med 1964; 6:481-484

Glasgow JE, Pietra GG, Abrams WR, Blank J, Oppenheim DM, Neutrophil recruitment and degranulation during induction of emphysema in the rat by nitrogen dioxide. Am Rev Respir Dis. 1987 May;135(5):1129-36.

Gundersen HJG, Jensen EB. Stereological estimation of the volume-weighted mean volume of arbitrary particles observed on random sections. J Microsc. 1985 138, 127-42

Gundersen HJ, Jensen EB. The efficiency of systematic sampling in stereology and its prediction. J Microsc. 1987 Sep;147 ( Pt 3):229-63.

Hackett NA. Proliferation of Lung and Airway Cells induced by Nitrogen Dioxid. Journal Toxicology and Environmental Health 1979 5:917-928

Haies DM, Gil J, Weibel ER. Morphometric study of rat lung cells. Numerical and dimensional characteristics of parenchymal cell population. Am Rev Respir Dis. 1981 May;123(5):533-41

- 79 -

Harkema JR, Mauderly JL, Gregory RE and Pickrell JA. A Comparison of Starvation an Elastase Models of Emphysema in the Rat. Am Rev Respir Dis 1984; 129:584-591

Hautamaki RD, Kobayashi DK, Senior RM, Shapiro SD. Requirement for macrophage elastase for cigarette smoke-induced emphysema in mice. Science. 1997 Sep 26;277(5334):2002-4.

Hoidal JR, Niewoehner DE. Cigarette smoke inhalation potentiates elastase-induced emphysema in hamsters. Am Rev Respir Dis. 1983 Apr;127(4):478-81.

Hoshino Y, Mio T, Nagai S, Miki H, Ito I, Izumi T. Cytotoxic effects of cigarette smoke extract on an alveolar type II cell-derived cell line. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 2001 Aug;281(2):L509-16.

Howard CV et Reed MG. Unbiased Stereology: three-dimensional measurement in microscopy, Bios Scientific Publishers, Springer 1998

Hubbard RC, Fells G, Gadek J, Pacholok S, Humes J, Crystal RG. Neutrophil accumulation in the lung in alpha 1-antitrypsin deficiency. Spontaneous release of leukotriene B4 by alveolar macrophages. J Clin Invest. 1991 Sep;88(3):891-7.

Hughes DA, Haslam PL, Townsend PJ, Turner-Warwick M. Numerical and functional alterations in circulatory lymphocytes in cigarette smokers. Clin Exp Immunol. 1985 Aug;61(2):459-66.

Imai K, Dalal SS, Chen ES, Downey R, Schulman LL, Ginsburg M, D´Armiento J. Human Collagenase (Matrix Metalloproteinase-1) Expression in the Lungs of Patients with Emphysema Am. J. Respir. Crit. Care Med., Volume 163, Number 3, March 2001, 786-791

Imai K, Mercer BA, Schulman LL, Sonett JR, D'Armiento JM. Correlation of lung surface area to apoptosis and proliferation in human emphysema. Eur Respir J. 2005 Feb;25(2):250-8.

Junqueira LC, Carniero J, Histologie 4. Auflage, 1996 Springer

Kasahara Y, Tuder RM, Taraseviciene-Stewart L, Le Cras TD, Abman S, Hirth PK, Waltenberger J, Voelkel NF. Inhibition of VEGF receptors causes lung cell apoptosis and emphysema. J Clin Invest. 2000 Dec;106(11):1311-9.

- 80 -

Kasahara Y, Tuder RM, Cool CD, Lynch DA, Flores SC, Voelkel NF. Endothelial cell death and decreased expression of vascular endothelial growth factor and vascular endothelial growth factor receptor 2 in emphysema. Am J Respir Crit Care Med. 2001 Mar;163(3 Pt 1):737-44.

Kauffmann F, Drouet D, Lellouch J, Brille D. Twelve years spirometric changes among Paris area workers. Int J Epidemiol. 1979 Sep;8(3):201-12

Keatings VM, Collins PD, Scott DM, Barnes PJ. Differences in interleukin-8 and tumor necrosis factor-alpha in induced sputum from patients with chronic obstructive pulmonary disease or asthma. Am J Respir Crit Care Med. 1996 Feb;153(2):530-4.

Keatings VM, Barnes PJ. Granulocyte activation markers in induced sputum: comparison between chronic obstructive pulmonary disease, asthma, and normal subjects. Am J Respir Crit Care Med. 1997 Feb;155(2):449-53.

Kleinerman J. Some effects of nitrogen dioxide on the lung. Fed Proc. 1977 Apr;36(5):1714-8.

Kleinerman J, Ip MP. Effects of nitrogen dioxide on elastin and collagen contents of lung.

Arch Environ Health. 1979 Jul-Aug;34(4):228-32.

Kleinerman J, Ip MP, Sorensen J. Nitrogen dioxide exposure and alveolar macrophage elastase in hamsters. Am Rev Respir Dis. 1982 Feb;125(2):203-7.

Kuhn C 3rd, Engleman W, Chraplyvy M, Starcher BC. Degradation of elastin in experimental elastase-induced emphysema measured by a radioimmunoassay for desmosine. Exp Lung Res. 1983 Sep;5(2):115-23.

Ladekarl M. J Microsc. The influence of tissue processing on quantitative histopathology in breast cancer.1994 174:93-100

Lam C, Kattan M, Collins A, Kleinerman J. Long-term sequelae of bronchiolitis induced by nitrogen dioxide in hamsters. Am Rev Respir Dis. 1983 Dec;128(6):1020-3.

- 81 -

Laurell CB et Ericksson S. The electrophoretic globulin pattern of serum in alpha-antitrypsin deficiency. Scand J Clin Invest 1963:15:132-140

Leslie CC, McCormick-Shannon K, Mason RJ, Shannon JM. Proliferation of rat alveolar epithelial cells in low density primary culture. Am J Respir Cell Mol Biol. 1993 Jul;9(1):64-72.

Leuenberger P, Schwartz J, Ackermann-Liebrich U, Blaser K, Bolognini G, Bongard JP, Brandli O, Braun P, Bron C, Brutsche M. Passive smoking exposure in adults and chronic respiratory symptoms (SAPALDIA Study). Swiss Study on Air Pollution and Lung Diseases in Adults, SAPALDIA Team. Am J Respir Crit Care Med. 1994 Nov;150(5 Pt 1):1222-8

Linden MD, Torres FX, Kubus J, Zarbo RJ. Clinical application of morphologic and immunocytochemical assessments of cell proliferation. Am J Clin Patho. 1992 May;97 (5 Suppl 1): S4-13.

Lucey EC, Goldstein RH, Stone PJ, Snider GL. Remodeling of alveolar walls after elastase treatment of hamsters. Results of elastin and collagen mRNA in situ hybridization. Am J Respir Crit Care Med. 1998 Aug;158(2):555-64.

MacNee W. Oxidants/antioxidants and COPD. Chest. 2000 May;117(5 Suppl 1):303S-17S Majo J, Ghezzo H, Cosio MG. Lymphocyte population and apoptosis in the lungs of smokers and their relation to emphysema. Eur Respir J. 2001 May;17(5):946-53

Mason RJ and Shannon JM, Al In the Lung: Scientific Foundations Second Edition, edited by RG Crystal, JB West et al., Lippincott-Raven Publishers, Philadelphia 1997. Alveolar Type II Cells.

Mayhew TM. The new stereological methods for interpreting functional morphology from slices of cells and organs. Exp Physiol. 1991 Sep;76(5):639-65.

Mayhew TM, Gundersen HJ. If you assume, you can make an ass out of u and me': a decade of the disector for stereological counting of particles in 3D space. J Anat. 1996 Feb;188 ( Pt 1):1-15.

Mercer RR, Crapo JD. Structural changes in elastic fibers after pancreatic elastase administration in hamsters. J Appl Physiol. 1992 Apr;72(4):1473-9.

- 82 -

Mills PR, Davies RJ, Devalia JL. Airway epithelial cells, cytokines, and pollutants. Am J Respir Crit Care Med. 1999 Nov;160(5 Pt 2):S38-43

Murray CJ, Lopez AD. Global mortality, disability, and the contribution of risk factors: Global Burden of Disease Study. Lancet. 1997 May 17;349(9063):1436-42

NIH, National Heart, Lung, and Blood Institute. Morbidity mortality: chartbook on cardiovascular, lung, and blood diseases. Bethesda, MD: U.S. Departement of Health and Human Services, Public Health Service, National Institute of Health, 1998

Ochs M, Nyengaard JR, Jung A, Knudsen L, Voigt M, Wahlers T, Richter J, Gundersen HJ.

The number of alveoli in the human lung. Am J Respir Crit Care Med. 2004 Jan 1;169(1):120-4. Epub 2003 Sep 25.

Otto-Verberne CJ, Ten Have-Opbroek AA, Willems LN, Franken C, Kramps JA, Dijkman JH.

Lack of type II cells and emphysema in human lungs. Eur Respir J. 1991 Mar;4(3):316-23.

Pauwels RA, Buist AS, Calverley PM, Jenkins CR, Hurd SS; GOLD Scientific Committee.

Global strategy for the diagnosis, management, and prevention of chronic obstructive pulmonary disease. NHLBI/WHO Global Initiative for Chronic Obstructive Lung Disease (GOLD) Workshop summary.Am J Respir Crit Care Med. 2001 Apr;163(5):1256-76

Pauwels RA, Rabe KF. Burden and clinical features of chronic obstructive pulmonary disease (COPD). Lancet. 2004 Aug 14;364(9434):613-20.

Perez-Padilla R, Regalado J, Vedal S, Pare P, Chapela R, Sansores R, Selman M. Exposure to biomass smoke and chronic airway disease in Mexican women. A case-control study. Am J Respir Crit Care Med. 1996 Sep;154(3 Pt 1):701-6

Persinger RL, Blay WM, Heintz NH, Hemenway DR, Janssen-Heininger YM. Nitrogen dioxide induces death in lung epithelial cells in a density-dependent manner. Am J Respir Cell Mol Biol. 2001 May;24(5):583-90.

Petrache I, Natarajan V, Zhen L, Medler TR, Richter AT, Cho C, Hubbard WC, Berdyshev EV, Tuder RM. Ceramide upregulation causes pulmonary cell apoptosis and emphysema-like disease in mice. Nat Med. 2005 May;11(5):491-8. Epub 2005 Apr 24.

- 83 -

Pinkerton KE et Green FHY. Normal aging of the lung. In The lung development, aging and the environment. Edited by Hardiry, Pinkerton and Plopper, Elsevier Oxford/London/San Diego 2004

Ranga V et Kleinermann J. Lung injury and repair in the blotchy mouse. Effects of nitrogen dioxide inhalation. Am Rev Respir Dis. 1981 Jan;123(1):90-97.

Retamales I, Elliott WM, Meshi B, Coxson HO, Pare PD, Sciurba FC, Rogers RM, Hayashi S, Hogg JC. Amplification of inflammation in emphysema and its association with latent adenoviral infection. Am J Respir Crit Care Med. 2001 Aug 1;164(3):469-73.

Saetta M, Shiner RJ, Angus GE, Kim WD, Wang NS, King M, Ghezzo H, Cosio MG.

Destructive index: a measurement of lung parenchymal destruction in smokers. Am Rev Respir Dis. 1985 May;131(5):764-9.

Saetta M, Di Stefano A, Turato G, Facchini FM, Corbino L, Mapp CE, Maestrelli P, Ciaccia A, Fabbri LM. CD8+ T-lymphocytes in peripheral airways of smokers with chronic obstructive pulmonary disease.Am J Respir Crit Care Med. 1998 Mar;157(3 Pt 1):822-6.

Sagai M, Ichinose T, Kubota K. Studies on the biochemical effects of nitrogen dioxide. IV.

Relation between the change of lipid peroxidation and the antioxidative protective system in rat lungs upon life span exposure to low levels of NO2. Toxicol Appl Pharmacol. 1984 May;73(3):444-56.

Sahebjami H, Wirman JA. Emphysema-like changes in the lungs of starved rats. Am Rev Respir Dis. 1981 Nov;124(5):619-24.

Sahebjami H, Vassallo CL. Effects of starvation and refeeding on lung mechanics and morphometry. Am Rev Respir Dis. 1979 Mar;119(3):443-51.

Samet JM, Marbury MC, Spengler JD. Health effects and sources of indoor air pollution. Part I. Am Rev Respir Dis. 1987 Dec;136(6):1486-508.

Sandberg LB, Soskel NT, Leslie JG. Elastin structure, biosynthesis, and relation to disease states. N Engl J Med. 1981 Mar 5;304(10):566-79.

Scherle W. A simple method for volumetry of organs in quantitative stereology. Mikroskopie.

1970 Jun;26(1):57-60

- 84 -

Schneeberger EE. Alveolar Type I Cells. In the Lung: Scientific Foundations Second Edition, edited by RG Crystal, JB West et al., Lippincott-Raven Publishers, Philadelphia 1997

Segura-Valdez L, Pardo A, Gaxiola M, Uhal BD, Becerril C, Selman M. Upregulation of gelatinases A and B, collagenases 1 and 2, and increased parenchymal cell death in COPD.

Chest. 2000 Mar;117(3):684-94.

Shapiro SD, Goldstein NM, Houghton AM, Kobayashi DK, Kelley D, Belaaouaj A. Neutrophil elastase contributes to cigarette smoke-induced emphysema in mice. Am J Pathol. 2003 Dec;163(6):2329-35.

Shoshani T, Faerman A, Mett I, Zelin E, Tenne T, Gorodin S, Moshel Y, Elbaz S, Budanov A, Chajut A, Kalinski H, Kamer I, Rozen A, Mor O, Keshet E, Leshkowitz D, Einat P, Skaliter R, Feinstein E. Identification of a novel hypoxia-inducible factor 1-responsive gene, RTP801, involved in apoptosis. Mol Cell Biol. 2002 Apr;22(7):2283-93.

Snider GL , Kleinerman J, Thurlbeck WM, Bengali ZH. The definition of emphysema Am Rev Respir Dis 1985 132: 182-185

Snider GL, Lucey EC, Stone PJ. Animal models of emphysema. Am Rev Respir Dis. 1986 Jan;133(1):149-69.

Soriano JB, Maier WC, Egger P, Visick G, Thakrar B, Sykes J, and Pride NB. Recent trends in physician diagnosed COPD in women and men in the UK Thorax, Sep 2000; 55: 789 - 794

Starke Ellen, Dissertation in der klinischen Forschergruppe “Chronische Atemwegserkrankungen” unter der Leitung von Prof. Dr. rer. nat. H. Fehrenbach, stereologische Untersuchungen (u.a. Gesamtalveolaroberfläche) an den gleichen Lungen wie in dieser Dissertation. Dissertation noch nicht eingereicht.

Stavert DM, Archuleta DC, Holland LM, Lehnert BE. Nitrogen dioxide exposure and development of pulmonary emphysema. J Toxicol Environ Health. 1986;17(2-3):249-67.

Stephens RJ, Freeman G, Evans MJ. Early response of lungs to low levels of nitrogen dioxide. Light and electronmicroscopy. Arch Environ Health. 1972 Mar;24(3):160-79

Stockley RA. Neutrophils and protease/antiprotease imbalance. Am J Respir Crit Care Med.

1999 Nov;160(5 Pt 2):S49-52

- 85 -