• Keine Ergebnisse gefunden

Immunoproteasome deficiency has no influence on NF‐kB activation

4.  Discussion

4.3  Immunoproteasome deficiency has no influence on NF‐kB activation

Two decades of immunoproteasome research solidified the hypothesis of immunoproteasome  particles shaping the immunopeptideome presented on MHC class I molecules (Basler et al.,  2011; Basler et al., 2006; Basler et al., 2004; Kincaid et al., 2012; Osterloh et al., 2006). 

Moreover, it became evident that the immunoproteasome has, apart from antigen processing,  additional immunological functions. Immunoproteasome deficiency or inhibition affects T cells  survival, expansion, and differentiation (Basler et al., 2004; Chen et al., 2001; Kalim et al., 2012; 

Moebius et al., 2010; Muchamuel et al., 2009; Zaiss et al., 2008), cytokine production (Basler  et al., 2011; Basler et al., 2010; Basler et al., 2014; Muchamuel et al., 2009), and progression of  autoimmune conditions (Basler et al., 2015). The impact of the immunoproteasome on various  immunological aspects made this complex to an emerging pharmacolocigal target for various  diseases and raised an even higher interest in understanding its exact cellular role. 

The inherent difficulty of studying the function of immunoproteasome subunits is the fact that  deficiency in one or several subunits can affect assembly of core particles (Bai et al., 2014; De  et al., 2003; Joeris et al., 2012). In order to effectively mature into precursor particles, the  chaperone‐like function of the propeptides of  β‐subunits is required (Ramos et al., 1998; 

Schmidt  et  al.,  1999).  During  full  maturation  of  particles  the  propeptides  are  then  autocatalytically cleaved, which finally activates the catalytic sites of these subunits (Groettrup  et al., 2010). Griffin et al. could show that preparticles containing MECL‐1 and LMP2 need LMP7  for efficient maturation (Griffin et al., 1998). On the other hand, MECL‐1 depends on LMP2 for  incorporation (De et al., 2003). Moreover, LMP7 exerts higher chaperone activity compared to  β5 and hence, has a higher capacity to promote particle maturation (Heink et al., 2005; Joeris  et al., 2012). The combination of subunits present in the particles of knockout cells could affect  various aspects of proteasomal activity. Discrimination between artifacts potentially caused by 

“mixed” proteasomes and effects of immunoproteasome subunit deficiency is crucial yet  difficult to put into practice. Under inflammatory conditions, cells devoid of LMP7 could  furthermore have an overall decreased proteasomal capacity due to less efficient particle  maturation. Decreased capacity and/or compensatory mechanisms to balance decreased  proteasomal capacity could both influence the results obtained with knockout cells. 

The last part of this study was focused on the activation of the transcription factor NF‐κB in  MEFs and pMΦs derived from L7M‐/‐ and LMP2‐/‐. In order to define the proteasomal  composition of these cells, a combined approach of proteasome immunoprecipitation and 2D‐

gel electrophoresis was tested for its  applicability.  The possibility to better assess the  proportion of immunoproteasome expression relative to total proteasome content constitutes  the clear advantage of this technique compared to western blot analysis. Immunorecipitation  of proteasomes proved to be an easy way to rapidly enrich particles, especially if cells to be  analyzed are limited in number. However, the visualization of proteins on 2D‐gels still has to 

be optimized in order to detect all relevant subunits. A fluorescent dye applied to the enriched  proteasomes before the electrophoretic separation could be an approach to be tested in the  future. It would then be interesting to apply this technique for the analysis of proteasome  composition of different mouse and human tissues. 

Expression of different proteasome subunits was also determined by SDS‐PAGE and western  blot. After stimulation with IFN‐γ, both pMΦs and MEFs expressed immunoproteasomes. Still,  expression of constitutive subunits was not completely downregulated indicating a mix of  constitutive and immunoproteasomes present in the cells. Due to the assembly defect in L7M

/‐ cells the particles present are almost exclusively composed of constitutive subunits. In  contrast, LMP2‐/‐ cells seem to express LMP7 but due to the defect in MECL‐1 incorporation  most likely contain constitutive proteasomes as well as mixed particles containing β1, β2, and  LMP7. It would be interesting to further determine the proteasomal activity of the cells to  potentially rule out differences in the overall degradative capacity between the knockout cells.  

The literature about the role of the immunoproteasome in NF‐κB activation is controversial. An  early report by Hayashi and Faustman suggested that LMP2 is required for the generation of  p50 from the p105 precursor (Hayashi and Faustman, 1999). This finding could, however, not  be reproduced by two other groups (Kessler et al., 2000; Runnels et al., 2000). Along the same  line, Visekruna et al. proposed enhanced processing of p105 and degradation of IkBα in  cytosolic extracts or purified proteasomes derived from mucosa of patients with Crohn’s  disease or ulcerative colitis, which both differ in the proportion of immunoproteasome  expressed (Visekruna et al., 2006). Unfortunatley, poor experimental setup and missing  controls leave these data impossible to interpret. A follow‐up study by Hayashi and Faustman  found reduced IkBα degradation in LMP2‐/‐ lymphocytes upon stimulation with TNF‐α (Hayashi  and Faustman, 2000). This finding could be confirmed with LPS‐stimulated B cells derived from 

LMP2‐/‐ mice, although the effect observed was rather minor (Hensley et al., 2010). In contrast, 

a recent report by Maldonado and colleagues claimed that activation of the canonical pathway  was not affected in LMP2‐/‐ and L7M‐/‐ cells while the alternative pathway seemed to be 

“aberrant” in LMP2‐/‐ cells (Maldonado et al., 2013). However, data presented in this study is  inconsistent and rather an overinterpretation of minor effects.  

The results presented here clearly argue against an influence of immunoproteasomes on the  canonical pathway of NF‐κB activation. Two different types of primary cells prepared from  LMP2‐/‐, L7M‐/‐, and wild type mice displayed no differences in the extent and kinetic of IκBα  degradation when stimulated with LPS or TNF‐α. Consistent with this finding, the amount of 

active NF‐κB dimers in the nucleus of knockout cells as well as the transactivation activity was  normal. Although generation of p50 from the p105 precursor was not analyzed here, these  results do clearly not indicate a deficit in NF‐κB subunits in the knockout cells. A study  conducted with small molecule inhibitors targeting LMP2 or LMP7 further supports the model  of NF‐κB activation being independent of proteasome composition. Inhibition of LMP2, LMP7,  or even both had no influence on IκBα degradation in cells stimulated with TNF‐α (Jang et al.,  2012). 

Until now, the immunological impact of immunoproteasomes is still not fully understood. It has  been suggested that the immunoproteasome has a higher capacity to clear ubiquitylated  proteins accumulating after stimulation with IFN‐γ (Seifert et al., 2010). However, this finding  could not be reproduced by others (Nathan et al., 2013). Taken together, more research is  needed to  improve  the  mechanistic  understanding  of immunoproteasomes  in immune  regulation. 

References 

Ackerman, A.L., A. Giodini, and P. Cresswell. 2006. A role for the endoplasmic reticulum protein  retrotranslocation machinery during crosspresentation by dendritic cells. Immunity 25:607‐

Allen, M.D., A. Buchberger, and M. Bycroft. 2006. The PUB domain functions as a p97 binding  module in human peptide N‐glycanase. J Biol Chem 281:25502‐25508. 

Amm, I., T. Sommer, and D.H. Wolf. 2014. Protein quality control and elimination of protein waste: 

the role of the ubiquitin‐proteasome system. Biochimica et biophysica acta 1843:182‐196. 

Anderson, D.J., R. Le Moigne, S. Djakovic, B. Kumar, J. Rice, S. Wong, J. Wang, B. Yao, E. Valle, S. Kiss  von Soly, A. Madriaga, F. Soriano, M.K. Menon, Z.Y. Wu, M. Kampmann, Y. Chen, J.S. 

Weissman, B.T. Aftab, F.M. Yakes, L. Shawver, H.J. Zhou, D. Wustrow, and M. Rolfe. 2015. 

Targeting the AAA ATPase p97 as an Approach to Treat Cancer through Disruption of  Protein Homeostasis. Cancer Cell 28:653‐665. 

Anton, L.C., and J.W. Yewdell. 2014. Translating DRiPs: MHC class I immunosurveillance of  pathogens and tumors. Journal of leukocyte biology 95:551‐562. 

Apcher, S., C. Daskalogianni, and R. Fahraeus. 2015. Pioneer translation products as an alternative  source for MHC‐I antigenic peptides. Molecular immunology  

Ardley, H.C., and P.A. Robinson. 2005. E3 ubiquitin ligases. Essays Biochem 41:15‐30. 

Arndt, V., C. Rogon, and J. Hohfeld. 2007. To be, or not to be‐‐molecular chaperones in protein  degradation. Cell Mol Life Sci 64:2525‐2541. 

Auner, H.W., A.M. Moody, T.H. Ward, M. Kraus, E. Milan, P. May, A. Chaidos, C. Driessen, S. Cenci,  F. Dazzi, A. Rahemtulla, J.F. Apperley, A. Karadimitris, and N. Dillon. 2013. Combined  inhibition of p97 and the proteasome causes lethal disruption of the secretory apparatus  in multiple myeloma cells. PLoS One 8:e74415. 

Bai, M., X. Zhao, K. Sahara, Y. Ohte, Y. Hirano, T. Kaneko, H. Yashiroda, and S. Murata. 2014. 

Assembly mechanisms of specialized core particles of the proteasome. Biomolecules 4:662‐

677. 

Balch, W.E., R.I. Morimoto, A. Dillin, and J.W. Kelly. 2008. Adapting proteostasis for disease  intervention. Science 319:916‐919. 

Baldwin, A.S., Jr. 1996. The NF‐kappa B and I kappa B proteins: new discoveries and insights. Annu  Rev Immunol 14:649‐683. 

Ballar, P., and S. Fang. 2008. Regulation of ER‐associated degradation via p97/VCP‐interacting motif. 

Biochemical Society transactions 36:818‐822. 

Banerji, J., J. Sands, J.L. Strominger, and T. Spies. 1990. A gene pair from the human major  histocompatibility complex encodes large proline‐rich proteins with multiple repeated  motifs and a single ubiquitin‐like domain. Proc Natl Acad Sci U S A 87:2374‐2378. 

Barton, L.F.,  M. Cruz, R. Rangwala, G.S. Deepe,  Jr., and J.J.  Monaco. 2002. Regulation of  immunoproteasome subunit expression in vivo following pathogenic fungal infection.  Immunol 169:3046‐3052. 

Basler, M., U. Beck, C.J. Kirk, and M. Groettrup. 2011. The antiviral immune response in mice devoid  of immunoproteasome activity. J Immunol 187:5548‐5557. 

Basler, M., M. Dajee, C. Moll, M. Groettrup, and C.J. Kirk. 2010. Prevention of experimental colitis  by a selective inhibitor of the immunoproteasome. J Immunol 185:634‐641. 

Basler, M., C. Lauer, J. Moebius, R. Weber, M. Przybylski, A.F. Kisselev, C. Tsu, and M. Groettrup. 

2012. Why the structure but not the activity of the immunoproteasome subunit low  molecular mass polypeptide 2 rescues antigen presentation. J Immunol 189:1868‐1877. 

Basler, M., J. Moebius, L. Elenich, M. Groettrup, and J.J. Monaco. 2006. An altered T cell repertoire  in MECL‐1‐deficient mice. J Immunol 176:6665‐6672. 

Basler, M., S. Mundt, A. Bitzer, C. Schmidt, and M. Groettrup. 2015. The immunoproteasome: a  novel drug target for autoimmune diseases. Clin Exp Rheumatol  

Basler, M., S. Mundt, T. Muchamuel, C. Moll, J. Jiang, M. Groettrup, and C.J. Kirk. 2014. Inhibition  of the immunoproteasome ameliorates experimental autoimmune encephalomyelitis. 

EMBO Mol Med 6:226‐238. 

Basler,  M.,  N.  Youhnovski,  M.  Van  Den  Broek,  M.  Przybylski,  and  M.  Groettrup.  2004. 

Immunoproteasomes down‐regulate presentation of a subdominant T cell epitope from  lymphocytic choriomeningitis virus. J Immunol 173:3925‐3934. 

Bassani‐Sternberg, M., S. Pletscher‐Frankild, L.J. Jensen, and M. Mann. 2015. Mass spectrometry of  human leukocyte antigen class I peptidomes reveals strong effects of protein abundance  and turnover on antigen presentation. Molecular & cellular proteomics : MCP 14:658‐673. 

Battegay, M., S. Cooper, A. Althage, J. Banziger, H. Hengartner, and R.M. Zinkernagel. 1991. 

Quantification of lymphocytic choriomeningitis virus with an immunological focus assay in  24‐ or 96‐well plates. Journal of virological methods 33:191‐198. 

Bays, N.W., R.G. Gardner, L.P. Seelig, C.A. Joazeiro, and R.Y. Hampton. 2001. Hrd1p/Der3p is a  membrane‐anchored ubiquitin ligase required for ER‐associated degradation. Nat Cell Biol  landscape  of  acute  myeloid  leukemia:  a  targeted  approach  toward  peptide‐based  immunotherapy. Leukemia 29:647‐659. 

Beskow, A., K.B. Grimberg, L.C. Bott, F.A. Salomons, N.P. Dantuma, and P. Young. 2009. A conserved  unfoldase activity for the p97 AAA‐ATPase in proteasomal  degradation.  Journal  of  molecular biology 394:732‐746. 

Beuron, F., I. Dreveny, X. Yuan, V.E. Pye, C. McKeown, L.C. Briggs, M.J. Cliff, Y. Kaneko, R. Wallis, R.L. 

Isaacson, J.E. Ladbury, S.J. Matthews, H. Kondo, X. Zhang, and P.S. Freemont. 2006. 

Conformational changes in the AAA ATPase p97‐p47 adaptor complex. EMBO J 25:1967‐

1976. 

Bourdetsky, D., C.E. Schmelzer, and A. Admon. 2014. The nature and extent of contributions by  defective ribosome products to the HLA peptidome. Proc Natl Acad Sci U S A 111:E1591‐

1599. 

Brandman, O., J. Stewart‐Ornstein, D. Wong, A. Larson, C.C. Williams, G.W. Li, S. Zhou, D. King, P.S. 

Shen, J. Weibezahn, J.G. Dunn, S. Rouskin, T. Inada, A. Frost, and J.S. Weissman. 2012. A  ribosome‐bound quality control complex triggers degradation of nascent peptides and  signals translation stress. Cell 151:1042‐1054. 

Brasier, A.R. 2006. The NF‐kappaB regulatory network. Cardiovasc Toxicol 6:111‐130. 

Brehme, M., C. Voisine, T. Rolland, S. Wachi, J.H. Soper, Y. Zhu, K. Orton, A. Villella, D. Garza, M. 

Vidal, H. Ge, and R.I. Morimoto. 2014. A chaperome subnetwork safeguards proteostasis in  aging and neurodegenerative disease. Cell Rep 9:1135‐1150. 

Briknarova, K., S. Takayama, L. Brive, M.L. Havert, D.A. Knee, J. Velasco, S. Homma, E. Cabezas, J. 

Stuart, D.W. Hoyt, A.C. Satterthwait, M. Llinas, J.C. Reed, and K.R. Ely. 2001. Structural  analysis of BAG1 cochaperone and its interactions with Hsc70 heat shock protein. Nat Struct  Biol 8:349‐352. 

Brown, K., S. Park, T. Kanno, G. Franzoso, and U. Siebenlist. 1993. Mutual regulation of the  transcriptional activator NF‐kappa B and its inhibitor, I kappa B‐alpha. Proc Natl Acad Sci U  S A 90:2532‐2536. 

Bruderer, R.M., C. Brasseur, and H.H. Meyer. 2004. The AAA ATPase p97/VCP interacts with its  alternative  co‐factors,  Ufd1‐Npl4  and  p47,  through  a  common  bipartite  binding  mechanism. J Biol Chem 279:49609‐49616. 

Brunger, A.T., and B. DeLaBarre. 2003. NSF and p97/VCP: similar at first, different at last. FEBS  letters 555:126‐133. 

Buchberger, A. 2010. Control of ubiquitin conjugation by cdc48 and its cofactors. Subcell Biochem  54:17‐30. 

Buchberger, A. 2013. Roles of Cdc48 in regulated protein degradation in yeast. Subcell Biochem  66:195‐222. 

Buchberger, A., B. Bukau, and T. Sommer. 2010. Protein quality control in the cytosol and the  endoplasmic reticulum: brothers in arms. Mol Cell 40:238‐252. 

Buchberger, A., M.J. Howard, M. Proctor, and M. Bycroft. 2001. The UBX domain: a widespread  ubiquitin‐like module. Journal of molecular biology 307:17‐24. 

Buchberger, A., H. Schindelin, and P. Hanzelmann. 2015. Control of p97 function by cofactor  binding. FEBS letters  

Bulik, S., B. Peters, and H.G. Holzhutter. 2005. Quantifying the contribution of defective ribosomal  products  to  antigen  production:  a  model‐based  computational  analysis.  Immunol  175:7957‐7964. 

Bullock, T.N., and L.C. Eisenlohr. 1996. Ribosomal scanning past the primary initiation codon as a  mechanism for expression of CTL epitopes encoded in alternative reading frames. J Exp Med  184:1319‐1329. 

Carvalho, P., V. Goder, and T.A. Rapoport. 2006. Distinct ubiquitin‐ligase complexes define  convergent pathways for the degradation of ER proteins. Cell 126:361‐373. 

Cenci, S., L. Oliva, F. Cerruti, E. Milan, G. Bianchi, M. Raule, A. Mezghrani, E. Pasqualetto, R. Sitia,  and P. Cascio. 2012. Pivotal Advance: Protein synthesis modulates responsiveness of  differentiating and malignant plasma cells to proteasome inhibitors. Journal of leukocyte  biology 92:921‐931. 

Cerundolo, V., A. Benham, V. Braud, S. Mukherjee, K. Gould, B. Macino, J. Neefjes, and A. Townsend. 

1997. The proteasome‐specific inhibitor lactacystin blocks presentation of cytotoxic T  lymphocyte epitopes in human and murine cells. European journal of immunology 27:336‐

Chen, W., C.C. Norbury, Y. Cho, J.W. Yewdell, and J.R. Bennink. 2001. Immunoproteasomes shape  immunodominance hierarchies of antiviral CD8(+) T cells at the levels of T cell repertoire  and presentation of viral antigens. J Exp Med 193:1319‐1326. 

Chou, T.F., S.J. Brown, D. Minond, B.E. Nordin, K. Li, A.C. Jones, P. Chase, P.R. Porubsky, B.M. Stoltz,  F.J. Schoenen, M.P. Patricelli, P. Hodder, H. Rosen, and R.J. Deshaies. 2011. Reversible  inhibitor of p97, DBeQ, impairs both ubiquitin‐dependent and autophagic protein clearance  pathways. Proc Natl Acad Sci U S A 108:4834‐4839. 

Chou, T.F., S.L. Bulfer, C.C. Weihl, K. Li, L.G. Lis, M.A. Walters, F.J. Schoenen, H.J. Lin, R.J. Deshaies,  and  M.R.  Arkin.  2014.  Specific  inhibition  of  p97/VCP  ATPase  and  kinetic  analysis  demonstrate interaction between D1 and D2 ATPase domains. Journal of molecular biology  426:2886‐2899. 

Chou, T.F., K. Li, K.J. Frankowski, F.J. Schoenen, and R.J. Deshaies. 2013. Structure‐Activity  Relationship Study Reveals ML240 and ML241 as Potent and Selective Inhibitors of p97  ATPase. ChemMedChem  

Claessen, J.H.,  S. Sanyal, and  H.L. Ploegh. 2014. The chaperone BAG6  captures dislocated  glycoproteins in the cytosol. PLoS One 9:e90204. 

Colbert, J.D., D.J. Farfan‐Arribas, and K.L. Rock. 2013. Substrate‐induced protein stabilization  reveals a predominant contribution from mature proteins to peptides presented on MHC  class I. J Immunol 191:5410‐5419. 

Colon‐Ramos, D.A., P.M. Irusta, E.C. Gan, M.R. Olson, J. Song, R.I. Morimoto, R.M. Elliott, M. 

Lombard, R. Hollingsworth, J.M. Hardwick, G.K. Smith, and S. Kornbluth. 2003. Inhibition of  translation and induction of apoptosis by Bunyaviral nonstructural proteins bearing  sequence similarity to reaper. Mol Biol Cell 14:4162‐4172. 

Cox, J.H., P. Galardy, J.R. Bennink, and J.W. Yewdell. 1995. Presentation of endogenous and  exogenous antigens is not affected by inactivation of E1 ubiquitin‐activating enzyme in  temperature‐sensitive cell lines. J Immunol 154:511‐519. 

Croft, N.P., S.A. Smith, Y.C. Wong, C.T. Tan, N.L. Dudek, I.E. Flesch, L.C. Lin, D.C. Tscharke, and A.W. 

Purcell. 2013. Kinetics of antigen expression and epitope presentation during virus  infection. Plos Pathog 9:e1003129.  protein, an ATPase Co‐purified with IkappaBalpha and 26 S proteasome, in ubiquitin‐

proteasome‐mediated degradation of IkappaBalpha. J Biol Chem 273:3562‐3573. 

Dai, R.M., and C.C. Li. 2001. Valosin‐containing protein is a multi‐ubiquitin chain‐targeting factor  required in ubiquitin‐proteasome degradation. Nat Cell Biol 3:740‐744. 

Dalal, S., M.F. Rosser, D.M. Cyr, and P.I. Hanson. 2004. Distinct roles for the AAA ATPases NSF and  p97 in the secretory pathway. Mol Biol Cell 15:637‐648. 

Davies, J.M., A.T. Brunger, and W.I. Weis. 2008. Improved structures of full‐length p97, an AAA  ATPase: implications for mechanisms of nucleotide‐dependent conformational change. 

Structure 16:715‐726. 

Davies, J.M., H. Tsuruta, A.P. May, and W.I. Weis. 2005. Conformational changes of p97 during  nucleotide hydrolysis determined by small‐angle X‐Ray scattering. Structure 13:183‐195. 

De, M., K. Jayarapu, L. Elenich, J.J. Monaco, R.A. Colbert, and T.A. Griffin. 2003. Beta 2 subunit  propeptides influence cooperative proteasome assembly. J Biol Chem 278:6153‐6159. 

Autophagy creates a CTL epitope that mimics tumor‐associated antigens. PLoS One  7:e47126. 

Desmots, F., H.R. Russell, Y. Lee, K. Boyd, and P.J. McKinnon. 2005. The reaper‐binding protein  scythe modulates apoptosis and proliferation during mammalian development. Mol Cell  Biol 25:10329‐10337. 

Dimitrova, L.N., K. Kuroha, T.  Tatematsu,  and  T. Inada. 2009. Nascent peptide‐dependent  translation arrest leads to Not4p‐mediated protein degradation by the proteasome. Journal 

Driscoll, J., M.G. Brown, D. Finley, and J.J. Monaco. 1993. MHC‐linked LMP gene products  specifically alter peptidase activities of the proteasome. Nature 365:262‐264. 

Dubiel, W., G. Pratt, K. Ferrell, and M. Rechsteiner. 1992. Purification of an 11 S regulator of the  multicatalytic protease. J Biol Chem 267:22369‐22377. 

Duttler, S., S. Pechmann, and J. Frydman. 2013. Principles of cotranslational ubiquitination and  quality control at the ribosome. Mol Cell 50:379‐393. 

Ehlinger, A., and K.J. Walters. 2013. Structural insights into proteasome activation by the 19S  regulatory particle. Biochemistry 52:3618‐3628. 

El Hage, F., V. Stroobant, I. Vergnon, J.F. Baurain, H. Echchakir, V. Lazar, S. Chouaib, P.G. Coulie, and  F.  Mami‐Chouaib.  2008.  Preprocalcitonin  signal  peptide  generates  a  cytotoxic  T  lymphocyte‐defined tumor epitope processed by a proteasome‐independent pathway. 

Proc Natl Acad Sci U S A 105:10119‐10124. 

Eletr, Z.M., and K.D. Wilkinson. 2014. Regulation of proteolysis by human deubiquitinating  enzymes. Biochimica et biophysica acta 1843:114‐128. 

English, L., M. Chemali, J. Duron, C. Rondeau, A. Laplante, D. Gingras, D. Alexander, D. Leib, C. 

Norbury, R. Lippe, and M. Desjardins. 2009. Autophagy enhances the presentation of 

endogenous viral antigens on MHC class I molecules during HSV‐1 infection. Nat Immunol  10:480‐487. 

Erales, J., and P. Coffino. 2014. Ubiquitin‐independent proteasomal degradation. Biochimica et  biophysica acta 1843:216‐221. 

Ernst, R., J.H. Claessen, B. Mueller, S. Sanyal, E. Spooner, A.G. van der Veen, O. Kirak, C.D. Schlieker,  W.A. Weihofen, and H.L. Ploegh. 2011. Enzymatic blockade of the ubiquitin‐proteasome  pathway. PLoS biology 8:e1000605. 

Ernst, R., B. Mueller, H.L. Ploegh, and C. Schlieker. 2009. The otubain YOD1 is a deubiquitinating  enzyme that associates with p97 to facilitate protein dislocation from the ER. Mol Cell  36:28‐38. 

Fang, C.J., L. Gui, X. Zhang, D.R. Moen, K. Li, K.J. Frankowski, H.J. Lin, F.J. Schoenen, and T.F. Chou. 

2015. Evaluating p97 inhibitor analogues for their domain selectivity and potency against  the p97‐p47 complex. ChemMedChem 10:52‐56. 

Farfan‐Arribas, D.J., L.J. Stern, and K.L. Rock. 2012. Using intein catalysis to probe the origin of major  histocompatibility complex class I‐presented peptides. Proc Natl Acad Sci U S A 109:16998‐ Epstein‐Barr virus fail to feed into the MHC class I antigenic pool. European journal of  immunology 42:3167‐3173. 

Fiebiger, E., C. Hirsch, J.M. Vyas, E. Gordon, H.L. Ploegh, and D. Tortorella. 2004. Dissection of the  dislocation pathway for type I membrane proteins with a new small molecule inhibitor,  eeyarestatin. Mol Biol Cell 15:1635‐1646. 

Finley, D. 2009. Recognition and processing of ubiquitin‐protein conjugates by the proteasome. 

Annu Rev Biochem 78:477‐513. 

Finley, D., B. Bartel, and A. Varshavsky. 1989. The tails of ubiquitin precursors are ribosomal  proteins whose fusion to ubiquitin facilitates ribosome biogenesis. Nature 338:394‐401. 

Fredrickson, E.K., J.C. Rosenbaum, M.N. Locke, T.I. Milac, and R.G. Gardner. 2011. Exposed  hydrophobicity is a key determinant of nuclear quality control degradation. Mol Biol Cell 

Garza,  R.M.,  B.K.  Sato,  and  R.Y.  Hampton.  2009.  In  vitro  analysis  of  Hrd1p‐mediated  retrotranslocation of its multispanning membrane substrate 3‐hydroxy‐3‐methylglutaryl  (HMG)‐CoA reductase. J Biol Chem 284:14710‐14722. 

Ghislain, M., R.J. Dohmen, F. Levy, and A. Varshavsky. 1996. Cdc48p interacts with Ufd3p, a WD  repeat protein required for ubiquitin‐mediated proteolysis in Saccharomyces cerevisiae. 

EMBO J 15:4884‐4899.  proteasomal degradation coincides with a reduced need for ubiquitylation. Scientific  reports 5:7615. 

Goebel, S.J., G.P. Johnson, M.E. Perkus, S.W. Davis, J.P. Winslow, and E. Paoletti. 1990. The  complete DNA sequence of vaccinia virus. Virology 179:247‐266, 517‐263. 

Goldberg, A.L. 2003. Protein degradation and protection against misfolded or damaged proteins. 

Nature 426:895‐899. 

Goodenough, E., T.M. Robinson, M.B. Zook, K.M. Flanigan, J.F. Atkins, M.T. Howard, and L.C. 

Eisenlohr. 2014. Cryptic MHC class I‐binding peptides are revealed by aminoglycoside‐

induced stop codon read‐through into the 3' UTR. Proc Natl Acad Sci U S A 111:5670‐5675. 

Granados, D.P., C.M. Laumont, P. Thibault, and C. Perreault. 2015. The nature of self for T cells‐a  systems‐level perspective. Current opinion in immunology 34:1‐8. 

Granados, D.P., W. Yahyaoui, C.M. Laumont, T. Daouda, T.L. Muratore‐Schroeder, C. Cote, J.P. 

Laverdure, S. Lemieux, P. Thibault, and C. Perreault. 2012. MHC I‐associated peptides  preferentially derive from transcripts bearing miRNA response elements. Blood  

Grice, G.L., I.T. Lobb, M.P. Weekes, S.P. Gygi, R. Antrobus, and J.A. Nathan. 2015. The Proteasome  Distinguishes between Heterotypic and Homotypic Lysine‐11‐Linked Polyubiquitin Chains. 

Cell Rep  

Griffin, T.A., D. Nandi, M. Cruz, H.J. Fehling, L.V. Kaer, J.J. Monaco, and R.A. Colbert. 1998. 

Immunoproteasome  assembly: cooperative  incorporation of interferon gamma (IFN‐

gamma)‐inducible subunits. J Exp Med 187:97‐104. 

Groettrup, M., C.J. Kirk, and M. Basler. 2010. Proteasomes in immune cells: more than peptide  producers? Nat Rev Immunol 10:73‐78. 

Groettrup, M., R. Kraft, S. Kostka, S. Standera, R. Stohwasser, and P.M. Kloetzel. 1996. A third  interferon‐gamma‐induced subunit exchange in the 20S proteasome. European journal of  immunology 26:863‐869. 

Grou, C.P., M.P. Pinto, A.V. Mendes, P. Domingues, and J.E. Azevedo. 2015. The de novo synthesis  of ubiquitin: identification of deubiquitinases acting on ubiquitin precursors. Scientific  reports 5:12836. 

Grove, D.E., M.F. Rosser, H.Y. Ren, A.P. Naren, and D.M. Cyr. 2009. Mechanisms for rescue of  correctable folding defects in CFTRDelta F508. Mol Biol Cell 20:4059‐4069. 

Grover, A., and A.A. Izzo. 2012. BAT3 regulates Mycobacterium tuberculosis protein ESAT‐6‐

mediated apoptosis of macrophages. PLoS One 7:e40836. 

Gu, W., M. Cochrane, G.R. Leggatt, E. Payne, A. Choyce, F. Zhou, R. Tindle, and N.A. McMillan. 2009. 

Both treated and untreated tumors are eliminated by short hairpin RNA‐based induction of  target‐specific immune responses. Proc Natl Acad Sci U S A 106:8314‐8319. 

Guillaume, B., J. Chapiro, V. Stroobant, D. Colau, B. Van Holle, G. Parvizi, M.P. Bousquet‐Dubouch,  I. Theate, N. Parmentier, and B.J. Van den Eynde. 2010. Two abundant proteasome  subtypes that uniquely process some antigens presented by HLA class I molecules. Proc Natl 

Guillaume, B., J. Chapiro, V. Stroobant, D. Colau, B. Van Holle, G. Parvizi, M.P. Bousquet‐Dubouch,  I. Theate, N. Parmentier, and B.J. Van den Eynde. 2010. Two abundant proteasome  subtypes that uniquely process some antigens presented by HLA class I molecules. Proc Natl