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Grundlagen der Physiologie
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Lithotrophie - Verwertung anorganischer
Elektronendonatoren
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Dogma der biologischen Unfehlbarkeit Was auf biologische Weise gebildet wurde, lässt sich auch biologisch wieder abbauen
Gilt ohne Ausnahme, aber nicht ohne
Vorbedingungen und biologische (!) Umwege
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Lithotrophe Prozesse
Elektronen- Oxidiertes Prozess
donator Endprodukt (Beispiel)
H
2→ H
+Wasserstoffoxidation
(z.B. Knallgasbakterien)
CH
4→→→
*)CO
2Methanoxidation (Oxygenase!)
O
2! (Methylo- spez. Methanotrophe Bakterien)
H
2S →→→ SO
42-Sulfurikation (Thiobacillus oder phototrophe Schwefelbakterien)
Fe
2+→ Fe
3+Eisenoxidation (Gallionella)
N
2→→→ NO
3-unbekannt (nur über Umwege)
NH
4+→→→ NO
3- Nitrifikation durch zwei Bakterien
NH
4+→→→ NO
2-Nitrosomonas (Oxygenase!)
O
2!
NO
2-→ NO
3-Nitrobacter
H
2O → O
2Oxygene Photosynthese
(Cyanobakterien, Chloroplasten)
*)
Mehrere Pfeile deuten auf mehrstufige Prozesse.
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Heterotropher (A) und lithoautotropher Aerobier (B)
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Prinzipien
o Lithotrophie nur bei Prokaryoten
o Je günstiger der Akzeptor einer Atmung ist, desto ungünstiger ist der daraus gebildete Elektronendonator für lithotrophe Prozesse - und umgekehrt!
o Anorganische Elektronendonatoren können mit Hilfe verschiedener Akzeptoren oxidiert werden, solange deren Redoxpotenzial geeignet ist.
o Ausnahmen bei schwer angreifbaren Molekülen (Alkane, Aromaten, NH 3 ): Sauerstoff nicht als terminaler
Elektronenakzeptor, sondern als direkter Reaktant in Oxygenase-Reaktionen.
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Prozesse und
Kreisläufe in
einem
Sediment
Die lithotrophe
Sulfidoxidation
verbraucht
ebenso viel
Sauerstoff wie
die direkte
Oxidation
organischer
Substanzen
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Photosynthese
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Photosynthese
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Photosynthese im Dunkeln ?
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Lichtgetriebene
Protonenpumpe
bei Halobacterium
(einem Archaeon)
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Organotropher (C) und lithotropher (D) anoxygen photropher Organismus
z.B. Rhodospirillum rubrum
Grüne und rote Schwefelbakterien, z.B. Chlorobium
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Photosyntheseapparat eines anoxygen phototrophen Bakteriums und cyclischer
Elektronentransport. (1) Membran, (2) Antennenpigmente (light harvesting
complex) (3) Reaktionszentrum, (4) Chinoncyclus, (5) Cytochrom bc
1-Komplex, (6)
Bacteriochlorophyll a (special pair, P870), (7) Bacteriophaeophytin, (8) Chinon A
und B (nahe FeS-Zentrum), (9) Cytochrom b, (10) FeS-Protein, (11) Cytochrom c
1,
(12) Cytochrom c
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Analyse des Energiestoffwechsels
Aerobe Atmung Oxygene
Photosynthese
Anoxygene Photosynthese Mensch, Tier,
Pflanze...
Cyanobakterien, Pflanzen
Photoorganohetero- trophe Bakterien, Rhodospirillum, Roseobacter
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Nachweis der vektoriellen Protonentranslokation
Messung von steady state- Verhältnissen:
- Kurzfristige Auslenkung
Inkubation unter anoxischen
Bedingungen, kleiner Sauerstoffpuls führt zu kurzfristiger Protonentranslokation und Rücklauf mit negativ exponentieller Kinetik (Prozess 1. Ordnung), Aufhebung des Membranpotenzials (durch Hemm- stoffe wie Valinomycin oder KSCN) verringert Rückflusskraft und -rate Vektorielle Protonentranslokation
Steady state wegen Rückfluss über
die ATP-Synthase
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0 2 4
Time (min)
pH 7.0
7.1
6.9
Licht an Licht aus
Vektorielle Protonentranslokation im Licht
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Contribution of aerobic photoheterotrophic bacteria to the carbon cycle in the ocean
Kolber ZS, Plumley FG, Lang AS, Beatty JT, Blankenship RE, VanDover CL, Vetriani C, Koblizek M, Rathgeber C, Falkowski PG
SCIENCE 292: 2492-2495 (2001)
Abstract:
The vertical distribution of bacteriochlorophyll a, the numbers of infrared fluorescent cells, and the variable fluorescence signal at 880 nanometers wavelength, all indicate that photosynthetically competent anoxygenic phototrophic bacteria are abundant in the upper open ocean and comprise at least 11% of the total microbial community.
These organisms are facultative photoheterotrophs, metabolizing organic carbon when available, but are capable of photosynthetic light utilization when organic carbon is scarce. They are globally distributed in the euphotic zone and represent a hitherto unrecognized
component of the marine microbial community that appears to be critical to the cycling of both organic and inorganic carbon in the ocean.
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Nachweis der ATP-Bildung durch Atmung und Photosynthese
Ansatz 1: N 2 , dunkel Ansatz 2: N 2 , 3 min Licht
Ansatz 3: Luft, 3 min in der Luft geschüttelt, dunkel Ansatz 4: 3 min Licht + Luft
Ansatz 5: 3 min Licht + Luft, mit 50 µM TCS Organismen: Rhodospirillum und/oder Roseobacter
TCS ist ein (giftiges!) Protonophor, macht die Membran für Protonen durchlässig, sollte ATP- Bildung verhindern
mM ATP im Cytoplasma
2.3
4.3
10.8
15.6
2.1
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100
0 50
Zeit (min)
0 5 10
% Luftsättigung
Zusatz von Succinat
3. TCS
2. Licht an
15
Atmungsversuch mit der Sauerstoffelektrode
Gewaschene Zellen von Rhodospirillum und/oder Roseobacter
TCS- Wirkung ('Gang raus nehmen'): kein H + -Gradient mehr Lichtwirkung: erhöht H + -Gradient, erschwert Arbeit
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Oxygen photropher Organismus (Legende auch für die vorherigen Bilder)
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Biologische Reaktionen von molekularem Sauerstoff
• Photosynthetische Wasserspaltung Lichtenergie
2 H
2O → O
2+ 4 [H]
• Oxidase-Reaktionen (O
2reduziert zu Wasser oder Wasserstoffperoxid) Cytochrom-Oxidase
O
2+ 4 [H] → 2 H
2O
• Oxygenase-Reaktionen (O
2eingebaut in schwer angreifbares Molekül, z.B. CH
4, NH
3, Alkane, Aromaten)
Mono-Oxygenase (1 O zu Wasser reduziert, 1 O in Substrat-Molekül) Di-Oxygenase (beide O in Substrat-Molekül)
• Toxische O
2-Spezies
Superoxid-Radikal (O
2-•), Wasserstoff-Peroxid (H
2O
2), Hydroxyl-Radikal (HO
•), gebildet durch Reaktion von O
2mit reduzierenden Verbindungen (unvollständige O
2-Reduktion)
• Entgiftung durch Superoxid-Dismutase, Katalase bzw. chem. Reaktionen [• Ozon (O
3) nicht biologisch produziert, sondern aus Stickoxiden und O
2unter UV-Einwirkung gebildet]
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