Research Collection
Doctoral Thesis
Charakterisierung der in vitro-Transkription in Zellkernen isoliert aus Concanavalin A stimulierten Lymphozyten
Author(s):
Wächter, Dieter E.
Publication Date:
1979
Permanent Link:
https://doi.org/10.3929/ethz-a-000230289
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ETH Library
CHARAKTERISIERUNG
DER IN VITRO TRANSKRIPTION IN ZELLKERNEN ISOLIERT AUS CONCANAVALIN A STIMULIER¬TEN LYMPHOZYTEN.
ABHANDLUNG
zur
Erlangung
des Titels eines Doktors der Naturwissenschaften derEIDGENOESSISCHEN
TECHNISCHEN HOCHSCHULE ZUERICHvorgelegt
vonDieter E. Wächter
Dipl.
Natw. ETHgeboren
am 22.September
1949von Basel
(Kt. Basel-Stadt)
Angenommen
aufAntrag
vonProf. Dr. K.H.
Winterhalter, Referent
Prof. Dr. G.Semenza,
Korreferent1979
- 3 -
KURZFASSUNG
T-Lymphozyten
differenzieren nachmitogener Stimulierung
mit ConcanavalinA zuLymphoblasten.
Dabeivergrössern
sich dieLymphozyten,
wobei vor allem derZytoplasmaanteil
zunimmt.Die RNA- und
Proteinsyntheserate steigt
schon kurz nach der Stimulation an. Etwa ein bis zweiTage
nach dermitogenen Aktivierung beginnt
dieDNA-Replikation,
welche durch eineMitose
abgeschlossen
wird. Während derLymphozytendifferen- zierung
finden beträchtlicheVeränderungen
in derGenexpres¬
sion statt. T-Zellfaktoren
(Lymphokine)
mit bestimmten Funk¬tionen in der Immunantwort werden neu
synthetisiert.
Ziel dervorliegenden
Arbeit war, ein in vitroSystem
zuentwickeln,
in dem die
Aenderungen
in derGenexpression
während derLym¬
phozytendif ferenzierung
studiert werden können. Es ist be¬kannt,
dass dieGenregulation wenigstens
zum Teil auf dem Ni¬veau der
Transkription
und derReifung
derprimären Transkrip¬
tionsprodukte
stattfindet. Zellkerneeignen
sich für das Stu¬dium der
Transkription
sehrgut,
da sie das Chromatin in nahe¬zu intakter Form enthalten. Bei den üblichen Methoden der Zell¬
kernisolation
besteht dieGefahr,
dassFaktoren,
welche für dieTranskription wichtig sind,
aus den Zellkernenausgewaschen
werden. Um dies zu
verhindern,
wurde eine neue Zellkernisola¬tionsmethode entwickelt. Dabei werden die Zellen auf einen dis¬
kontinuierlichen Saccharosedichtegradienten
überschichtet.Während der
Zentrifugation
der Zellen durch die nächst untere Schicht mitdetergenzhaltiger, hypertonischer Saccharoselösung
werden die Zellen
lysiert.
Die nackten Zellkerne sedimentieren dann auf Grund ihrer höheren Dichte alseinzige
in die untersteSchicht mit
detergenzfreier hypertonischer Saccharoselösung.
Zellkerne,
welche auf diese Art und Weise aus 50 Stunden mit ConcanavalinA stimuliertenLymphozyten
isoliert wordensind, synthetisieren
in einerDNA-abhängigen
Reaktion RNA.Optimale
in vitro
RNA-Synthese
wurde inGegenwart
von lOOmMNaCl,
sowie 4-5mMMgAc2 gefunden.
Die Aktivität der dreiRNA-Polymerasen
wurde durch
differentielle Hemmung
mit a-Amanitinbestimmt.
Es
zeigte sich,
dass etwa 50% der in vitrotranskribierten
RNARNA-Polymerase
II Produktesind.
Etwa 15% sindRNA-Polymerase
III
Produkte, der
RestRNA-Polymerase
IProdukte.
Alsnächstes
wurde dieAktivität
derRNA-Polymerasen
inZellkernen
gemessen, welche zuverschiedenen Zeitpunkten
nachConcanavalinA
Stimu¬lation
ausLymphozyten isoliert
worden sind. Eskonnte gezeigt werden,
dass dieRNA-Polymerase
IAktivität
in denisolierten Zellkernen unmittelbar
nach derConcanavalinA Stimulation
derLymphozyten ansteigt
und nach 55Stunden
ein Maximum erreicht.Die
RNA-Polymerase
IIAktivität dagegen verändert
sichwährend
der ersten 30Stunden
derConcanavalinA Stimulation nicht, steigt dann
aber stark an und erreichtebenfalls
nach 55 Stun¬den ein
Maximum.
Im
weiteren konnte
ichzeigen,
dassdurch
dieRNA-Polymerasen
I und II
hochmolekulare
RNAsynthetisiert
wird. Die in vitroSyntheseprodukte
ausZellkernen
vonruhenden Lymphozyten
sind vonhöherem Molekulargewicht
alsdiejenigen
ausZellkernen
von 50
Stunden
mitConcanavalinA stimulierten Lymphozyten.
Dies
deutet darauf hin, dass
inConcanavalinA stimulierten Lym¬
phozyten
dieprimären Transkriptionsprodukte
in vermehrtem Masse in die reifen Produkteabgebaut werden.
Eszeigte sich,
dass die in vitro
synthetisierte
RNA nichtpolyadenyliert
wird und in einem in vitro
Translationssystem
nichtübersetzt
werden kann.- 5 -
ABSTRACT
Quiescent T-lymphocytes
can beinduced
toproliferate by
mi-togenic
Stimulation withConcanavalinA. During
thisactivation significant morphologic
and metabolicchanges
can be observed.RNA- and
protein-synthesis
increaseshortly
after the addi-tion of the
mitogen. DNA-replication begins
after 24 to 48hours, culminating
in mitosis. It isknown,
thatduring lym- phocyte differentiation
considerablechanges
in the gene ex-pression
occurs. T-cell factors(lymphokines) regulating
theimmune response are
synthesized.
At leastpart
of the gene-re-gulation
takesplace
on the level oftranscription
and theprocessing
of theprimary transcripts.
In vitrotranscription experiments using
isolated nuclei can be used tostudy
trans-criptional
modulationsoccuring during lymphocyte
differentia- tion. In order toprevent leakage
ofRNA-polymerase
moleculesor its
regulatory
factors from thenuclei,
a new oneStep
method for the isolation of intact nuclei wasdevelopped.
Cells werelyzed by centrifugation through
a 51%w/v
sucroselayer
con-taining
0.25% NP-40. The released nuclei were sedimentedthrough
a 68.5%w/v
sucroselayer.
Nuclei isolatedby
this me¬thod are
highly
active insynthesizing
RNA in aDNA-dependent
reaction. The
activity
of theRNA-polymerases I,
II and III could be measured.Optimal
ionic conditions for maximum RNA-synthetic activity
were found.The
RNA-polymerase
activities were measured in nuclei isolated atdifferent
times after Stimulation of thelymphocytes
withConcanavalinA. Sequential
activation ofRNA-polymerases
I andII was observed.
RNA-polymerase
Iactivity
increasedshortly
after
Stimulation, reaching
a maximum after 55 hours.RNA-poly¬
merase II
activity
was lowduring
the first 30hours,
increasedafterwards
and reached a maximum 55 hours aftermitogenic
Sti¬mulation. High
molecularweight
RNA wassynthesized
in vitroas shown
by polyacrylamide-gelelectrophoresis
of the isolated RNA after in vitrotranscription.
The in vitrosynthesized
RNAwas not